Beckman Coulter DxH 520 Manuel du propriétaire

Mode d’emploi
DxH 520
Version publiée : v2
Réf. B95008AA
Janvier 2018
Fabriqué par
Beckman Coulter Ireland Inc.
Lismeehan
O’Callaghan’s Mills
Co. Clare, Ireland 353-65-683-1100
DxH 520
Mode d’emploi
Réf. B95008AA (Janvier 2018)
Beckman Coulter, le logo stylisé et les marques de
produits et services Beckman Coulter mentionnés dans le
présent document sont des marques ou des marques
déposées de Beckman Coulter, Inc. aux États-Unis et dans
les autres pays.
Les autres marques, marques de services, produits ou
services, sont des marques ou des marques déposées de
leurs détenteurs respectifs.
Retrouvez-nous sur Internet à l’adresse :
www.beckmancoulter.com
Traduction de la notice originale
Rx uniquement aux États-Unis.
Historique des révisions
Ce document s’applique au dernier logiciel de la liste et aux versions plus récentes. Lorsqu’une nouvelle
version logicielle modifiera les informations de ce document, une nouvelle édition paraîtra sur le site Web
Beckman Coulter. Pour les mises à jour de l’étiquetage, consultez le site www.beckmancoulter.com et
téléchargez la dernière version du manuel ou de l’aide du système de votre instrument.
Édition AA, 1/2018
Version logicielle 2.0
Réf. B95008AA
iii
Historique des révisions
iv
Réf. B95008AA
Avis de sécurité
Lisez tous les manuels de produits et consultez le personnel formé de Beckman Coulter avant
d’utiliser l’instrument. N’essayez pas d’exécuter une procédure avant d’avoir lu attentivement
toutes les instructions. Suivez toujours l’étiquetage du produit et les recommandations du fabricant.
En cas de doute sur ce que vous devez faire dans une situation quelle qu’elle soit, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Beckman Coulter, Inc. incite fortement ses clients à suivre les consignes nationales de santé et de
sécurité telles que l’utilisation d’équipements de protection personnelle. Cela peut inclure, sans y
être limité, le port de lunettes de protection, de gants et d’un vêtement de laboratoire approprié lors
de l’utilisation ou de l’entretien de cet instrument ou de tout autre analyseur automatisé de
laboratoire.
Alertes de type Avertissement et Attention
Dans ce manuel, vous verrez apparaître ces alertes de type Avertissement et Attention :
AVERTISSEMENT
AVERTISSEMENT indique une situation potentiellement dangereuse pouvant
entraîner la mort ou des blessures graves si elle n’est pas évitée. Peut aussi être
utilisé pour indiquer la présence éventuelle de données erronées qui peuvent
entraîner un diagnostic incorrect.
ATTENTION
ATTENTION indique une situation potentiellement dangereuse qui, si elle n’est pas
évitée, peut entraîner des blessures légères. Cette alerte peut aussi être utilisée
pour mettre en garde contre des pratiques peu sûres. Peut aussi être utilisé pour
indiquer la présence éventuelle de données erronées qui peuvent entraîner un
diagnostic incorrect.
Réf. B95008AA
v
Avis de sécurité
Consignes de sécurité
Consignes de sécurité
AVERTISSEMENT
Risque de blessure de l’opérateur et/ou de contamination biologique si :
• Tous les capots, panneaux et portes ne sont pas fermés et fixés solidement
avant et pendant l’utilisation de l’instrument.
• L’intégrité des verrouillages et des capteurs de sécurité n’est pas assurée.
• Les indicateurs et les messages d’erreur de l’instrument ne sont pas pris en
considération et suivis.
• Vous entrez en contact avec des pièces mobiles.
• Vous ne maniez pas avec précaution des pièces cassées.
• Les portes, les capots et les panneaux ne sont pas ouverts, fermés, retirés
et/ou replacés précautionneusement.
• Des outils inadéquats sont utilisés pour le dépannage.
Pour éviter les blessures :
• Gardez tous les capots, panneaux et portes fermés et fixés solidement
pendant l’utilisation de l’instrument.
• Faites usage de toutes les fonctions de sécurité de l’instrument.
• Tenez compte des indicateurs et des messages d’erreur de l’instrument.
• Tenez-vous à distance des parties mobiles.
• Signalez toute pièce endommagée à votre représentant Beckman Coulter.
• Ouvrez/retirez et fermez/replacez les portes, capots et panneaux avec
précaution.
• Utilisez les outils appropriés lors du dépannage.
ATTENTION
L’intégrité du système peut être compromise et des pannes risquent de se
produire si :
• Cet équipement est utilisé d’une manière autre que celle spécifiée. Utilisez cet
instrument selon les instructions des manuels du produit.
• Vous installez un logiciel non autorisé par Beckman Coulter dans votre
ordinateur. N’utilisez l’ordinateur de votre système qu’avec des logiciels
agréés par Beckman Coulter.
• Vous installez un logiciel qui n’est pas une version d’origine protégée par
droits d’auteur. N’utilisez que des logiciels qui sont des versions d’origine
protégées par droits d’auteurs afin d’éviter toute contamination par virus
informatique.
• Vous n’analysez pas le support amovible (clé USB) avant de le connecter à un
ordinateur. Analysez toujours le support amovible.
vi
Réf. B95008AA
Avis de sécurité
Précautions électroniques
ATTENTION
Si vous avez acheté ce produit ailleurs que chez Beckman Coulter ou un
distributeur Beckman Coulter autorisé, et s’il ne fait pas l’objet d’un contrat de
maintenance Beckman Coulter, Beckman Coulter ne peut garantir que le produit a
bénéficié des toutes dernières révisions techniques obligatoires ou que vous
recevrez les bulletins d’information les plus récents concernant le produit. Si vous
avez acheté ce produit à un tiers et souhaitez obtenir d’autres informations à ce
sujet, contactez votre représentant Beckman Coulter.
Précautions électroniques
AVERTISSEMENT
Risque de blessure due à d’un choc électronique. Les composants électroniques
peuvent entraîner des chocs et des blessures. Pour éviter tout risque de choc
et/ou de blessure, n’altérez pas l’instrument. Ne retirez aucun composant (capots,
portes, panneaux, etc.) sauf instruction contraire dans ce document. Si des
conditions créant des charges statiques existent dans votre laboratoire, assurezvous de prendre des mesures antistatiques adéquates avant de toucher
l’instrument.
Informations sur la compatibilité électromagnétique (CEM)
ATTENTION
Cet équipement a été conçu et testé conformément à CISPR 11 Classe A. Dans un
environnement domestique, il peut causer des interférences radio. Dans ce cas, il
sera peut-être nécessaire de prendre des mesures pour limiter les interférences.
Il est recommandé d’évaluer l’environnement électromagnétique avant de faire
fonctionner l’appareil. N’utilisez pas cet appareil à proximité de sources de
rayonnement électromagnétique important (par exemple sources RF
intentionnelles non blindées) car elles pourraient interférer avec un
fonctionnement correct.
Cet équipement de diagnostic in vitro (IVD) est conforme aux exigences d’émissions et d’immunité
décrites dans la norme CEI 61326-2-6.
Réf. B95008AA
vii
Avis de sécurité
Risques biologiques
Risques biologiques
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. Si vous ne vous protégez
pas correctement lors de l’utilisation ou de l’entretien de l’instrument, vous
pourriez vous blesser et/ou être contaminé. Pour éviter tout risque de blessure
et/ou de contamination biologique, vous devez porter un équipement de
protection de laboratoire spécial, comprenant des gants, une blouse de
laboratoire et une protection oculaire.
Prenez des précautions universelles lorsque vous travaillez avec des matières pathogènes. Des
moyens de décontamination de l’instrument et d’élimination des déchets biologiques doivent être
disponibles.
Pièces mobiles
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. L’utilisation de
l’instrument avec des capots et des portes ouverts peut entraîner des blessures.
Lorsque vous utilisez l’instrument, assurez-vous que tous les capots et portes
sont fermés. L’utilisation de l’instrument avec une sonde desserrée ou tordue
peut entraîner des blessures. Si la sonde est desserrée ou tordue, n’utilisez pas
l’instrument.
Risque de contamination biologique
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. La sonde d’aspiration et
ses tuyaux contiennent des matières présentant un risque biologique. Nettoyez
tout déversement accidentel de sang aussi rapidement que possible. Manipulez
avec précaution. Évitez tout contact avec la peau. Nettoyez immédiatement les
déversements accidentels et éliminez tout le matériel de nettoyage contaminé
conformément aux réglementations locales et aux bonnes pratiques du
laboratoire.
viii
Réf. B95008AA
Avis de sécurité
Étiquettes de danger en fonctionnement
Étiquettes de danger en fonctionnement
Les symboles de sécurité vous avertissent de conditions risquant de présenter un danger.
Le symbole s’applique à des procédures spécifiques et apparaît lorsque nécessaire dans ce manuel.
REMARQUE Si les étiquettes ne sont pas claires, contactez votre représentant Beckman Coulter.
Icône
Condition d’avertissement
Action
Risque biologique
Prenez des précautions universelles lorsque vous
travaillez avec des matières pathogènes. Des
moyens doivent être disponibles pour décontaminer
l’instrument et éliminer les déchets biologiques.
Attention ou Avertissement
Voir Alertes de type Avertissement et Attention pour
plus d’informations.
Surface chaude
Présence de surfaces chaudes dans cette zone.
Évitez tout contact avec les surfaces de cette zone
jusqu’à ce qu’elles aient refroidi.
Point de pincement
Point de perforation ou de pincement potentiel dans
cette zone. Faites attention à la sonde en
mouvement et présentez avec précaution
l’échantillon de test pour éviter tout risque de
blessure.
Élimination des instruments électriques
Il est très important de comprendre et de respecter toutes les règlementations en vigueur
concernant la mise au rebut sécurisée et appropriée des instruments électriques.
Le produit doit comporter une étiquette avec le symbole représentant une poubelle barrée
conformément à la directive de l’Union européenne relative aux déchets d’équipements électriques
et électroniques (DEEE). La présence de ce symbole sur le produit indique que :
1. L’appareil a été mis sur le marché européen après le 13 août 2005, et
2. Le dispositif ne doit pas être éliminé en décharge municipale dans aucun des États membres de
l’Union européenne.
Réf. B95008AA
ix
Avis de sécurité
Avertissement sur l’élimination des déchets
Pour les produits soumis aux exigences de la directive DEEE, veuillez contacter votre revendeur ou
votre bureau local Beckman Coulter pour connaître les informations de décontamination correcte
et le programme de reprise qui facilite la collecte, le traitement, la récupération, le recyclage et
l’élimination corrects et sûrs de votre appareil.
Avertissement sur l’élimination des déchets
AVERTISSEMENT
Risque de contamination biologique. Il existe un risque de contamination
biologique par contact avec le récipient à déchets et les tubes qui y sont associés
s’ils ne sont pas manipulés avec soin. Vérifiez la connexion du tube et
l’emplacement du réservoir régulièrement. Portez un équipement de protection
individuel. Évitez tout contact avec la peau. Nettoyez immédiatement les
déversements accidentels. Éliminez le contenu du récipient à déchets
conformément aux réglementations locales et aux bonnes pratiques du
laboratoire.
Veillez à éliminer les déchets conformément aux règlements locaux de protection de
l’environnement.
La longueur maximale de la ligne de déchets est de 1,50 m (5 pi). Le tuyau de vidange des déchets
fourni avec le système peut être raccordé de la manière suivante :
• À une canalisation ouverte adaptée aux déchets biologiques à une hauteur inférieure à 76 cm
(30 in) au-dessus du niveau du sol.
• Un récipient à déchets ayant une capacité minimale de 2 000 mL (0,53 gal). Mettez au rebut
l’ancien récipient conformément aux normes de votre laboratoire en matière de matériel
présentant un risque biologique.
AVERTISSEMENT
Risque de contamination biologique. Soyez prudent lors de la vidange des déchets
directement dans une canalisation ouverte. Assurez-vous que la ligne des déchets
est fixée mécaniquement dans la canalisation de sorte sur le tuyau ne puisse pas
se détacher accidentellement. Si vous utilisez cette méthode d’évacuation des
déchets, Beckman Coulter recommande de programmer un entretien de routine
des tuyaux de vidange du laboratoire. La longueur de la ligne des déchets ne doit
pas excéder 1,50 m (5 pi).
x
Réf. B95008AA
Avis de sécurité
Marquage CE
Marquage CE
Un marquage « CE » indique qu’un produit a été évalué avant d’être commercialisé, et qu’il réponde
aux exigences de santé, de sécurité et/ou de protection de l’environnement de l’Union européenne.
Avis RoHS
Ces étiquettes et ce tableau de déclaration des matériaux (Tableau des noms et des concentrations
des produits dangereux) répondent aux exigences de la norme de l’industrie électronique de la
République populaire de Chine SJ/T11364-2006 « Marquage destiné au contrôle de la pollution
causée par les produits informatiques ».
Étiquette de précaution RoHS Chine
Cette étiquette indique que le produit électronique contient des substances toxiques ou
dangereuses. Le numéro au centre correspond à la période d’utilisation dans le respect de
l’environnement (EFUP — Environmentally Friendly Use Period), et indique le nombre de jours
calendaires où le produit peut être utilisé. À la péremption de l’EFUP, le produit doit être
immédiatement recyclé. Les cercles fléchés indiquent que le produit est recyclable. Le code de date
figurant sur l’étiquette ou sur le produit est la date de fabrication du produit.
Étiquette environnementale RoHS Chine
Cette étiquette indique que le produit électronique ne contient aucune substance toxique ou
dangereuse. Le « e » au centre indique que le produit est sans danger pour l’environnement et qu’il
n’a pas de période d’utilisation dans le respect de l’environnement (EFUP). Il peut donc être utilisé
en tout sécurité indéfiniment. Les cercles fléchés indiquent que le produit est recyclable. Le code de
date figurant sur l’étiquette ou sur le produit est la date de fabrication du produit.
Réf. B95008AA
xi
Avis de sécurité
Proposition 65 de Californie
Proposition 65 de Californie
AVERTISSEMENT
Ce produit peut contenir des substances chimiques connues de l’État de Californie
comme pouvant causer des cancers et des malformations congénitales ou
d’autres dommages liés à l’appareil reproducteur.
xii
Réf. B95008AA
Table des matières
Historique des révisions, iii
Avis de sécurité, v
Alertes de type Avertissement et Attention, v
Consignes de sécurité, vi
Précautions électroniques, vii
Informations sur la compatibilité électromagnétique (CEM), vii
Risques biologiques, viii
Pièces mobiles, viii
Risque de contamination biologique, viii
Étiquettes de danger en fonctionnement, ix
Élimination des instruments électriques, ix
Avertissement sur l’élimination des déchets, x
Marquage CE, xi
Avis RoHS, xi
Étiquette de précaution RoHS Chine, xi
Étiquette environnementale RoHS Chine, xi
Proposition 65 de Californie, xii
Introduction, xxv
Comment utiliser vos manuels, xxv
À propos de ce manuel, xxv
Conventions, xxvii
Graphiques, xxvii
CHAPITRE 1:
Présentation du système, 1-1
Utilisation prévue, 1-1
Paramètres NFS/DIFF, 1-1
Vues de l’instrument, 1-2
Matériel, 1-5
Dimensions, poids et dégagement de l’instrument, 1-6
Exigences d’alimentation, 1-6
Consommation électrique, 1-7
Bruit acoustique, 1-7
Température de fonctionnement, 1-7
Température de stockage, 1-7
xiii
Table des matières
Humidité, 1-8
Transport, 1-8
Altitude, 1-8
Stockage externe — USB, 1-8
SIL, 1-8
Imprimante — En option, 1-8
Scanner de codes-barres, 1-9
Consommables, 1-10
Réactifs, 1-10
Diluant de série DxH 500, 1-10
Agent de lyse de série DxH 500, 1-10
Agent de nettoyage de série DxH 500, 1-10
Contrôles et calibrateurs, 1-10
Contrôle de série DxH 500, 1-10
Calibrateur de série DxH 500, 1-10
Tubes de spécimen, 1-11
Étiquettes codes-barres, 1-11
Fiches signalétiques (SDS), 1-11
Stockage des données, 1-11
Logiciel, 1-12
Icônes du menu principal, 1-12
Menu Fonctions, 1-13
Icônes globales et de navigation, 1-14
Indicateurs d’erreur et d’avertissement, 1-15
Vue Écran, 1-16
Clavier, 1-16
Performances, 1-17
Anticoagulants, 1-17
Aspiration, 1-18
Comparaison des méthodes — Sang total, 1-18
Spécifications de comparaison de méthodes — Diff — Sang total —
DxH 520 par rapport à différentiel manuel, 1-19
Spécifications de comparaison des méthodes — Sang total par
rapport à sang prédilué, 1-19
Répétabilité, 1-20
Reproductibilité, 1-22
Plages de mesure analytique, de fonctionnement et linéarité, 1-23
Contamination inter-échantillons, 1-24
Limites des valeurs résiduelles, 1-24
Débit, 1-25
Intervalle de référence, 1-25
Stabilité des échantillons et stockage — Sang total, 1-27
Stabilité des échantillons et stockage — Sang total prédilué, 1-28
Sensibilité et spécificité cliniques, 1-29
Limites, 1-29
xiv
Table des matières
CHAPITRE 2:
Principes de fonctionnement, 2-1
Historique de la méthode, 2-1
Historique du principe Coulter, 2-1
Principe Coulter, 2-2
Analyse NFS, 2-2
Préparation des spécimens, 2-3
Numération/Détermination de la taille, 2-3
Correction de coïncidence, 2-3
Mise à l’échelle, 2-4
Rejet et moyenne, 2-4
Calcul et arrondissement des résultats, 2-4
Hémoglobinométrie, 2-4
Histogrammes, 2-4
Différentiel NGB et scattergramme différentiel (Diff), 2-5
Mesure, dérivation et calcul des paramètres, 2-6
CHAPITRE 3:
Démarrage et contrôles journaliers, 3-1
Démarrage, 3-1
Connexion/déconnexion, 3-1
Utilisation du scanner de codes-barres, 3-2
Contrôles journaliers, 3-3
Exécution des contrôles journaliers, 3-3
Affichage de l’historique des contrôles journaliers, 3-4
Impression des contrôles journaliers, 3-4
Exportation des contrôles journaliers, 3-4
Exécuter un comptage résiduel, 3-5
CHAPITRE 4:
Contrôle de qualité, 4-1
Vue d’ensemble du contrôle de qualité, 4-1
Principes du contrôle de qualité, 4-1
Contrôles journaliers, 4-2
Contrôles commerciaux, 4-2
Contrôle de qualité étendu, 4-2
Analyse XB, 4-2
Analyse XM, 4-2
Programme d’assurance qualité interlaboratoire (IQAP), 4-3
Contrôles, 4-3
Analyse des contrôles commerciaux, 4-3
Si un contrôle est hors plage, 4-4
Affichage des fichiers témoins, 4-5
Affichage des graphiques de fichier témoin, 4-7
Affichage d’un graphique de Levey-Jennings étendu, 4-8
Affichage des détails d’une analyse de témoin, 4-9
Transmission des fichiers témoins, 4-10
Impression des fichiers témoins, 4-11
xv
Table des matières
Exportation des fichiers témoins, 4-11
Suppression des fichiers témoins, 4-12
Révision de l’analyse XB, 4-13
Écran Révision des moyennes de la série XB, 4-13
Écran Révision des détails de la série XB, 4-14
Affichage des graphiques des moyennes de la série XB, 4-15
Impression des rapports de série XB, 4-16
Exportation des résultats XB, 4-16
Suppression d’une série XB, 4-17
Révision de l’analyse XM, 4-17
Écran Révision des moyennes de la série XM, 4-18
Écran Révision des détails de la série XM, 4-18
Affichage des graphiques des moyennes de la série XM, 4-19
Afficher un graphique de moyenne de la série XM étendu, 4-20
Impression des rapports de la série XM, 4-20
Exportation des résultats XM, 4-21
Suppression d’une série XM, 4-21
Téléchargement vers IQAP, 4-22
CHAPITRE 5:
Analyse des échantillons, 5-1
Collecte des spécimens, 5-1
Apposition d’une étiquette de code-barres sur un tube, 5-1
Identification des échantillons patient, 5-2
Création d’une liste de travaux, 5-3
Utilisation du scanner de codes-barres portatif, 5-3
Exécution d’une analyse des échantillons, 5-3
Analyse d’échantillons de sang total en mode Tube fermé, 5-5
Analyse d’échantillons de sang total en mode Tube ouvert, 5-8
Exécuter des échantillons de sang prédilué, 5-11
CHAPITRE 6:
Consultation résultats, 6-1
Résultats de patient, 6-1
Indicateurs, 6-2
Codes, 6-2
Messages affichés, 6-3
Limites de seuil d’histogramme PLT, 6-3
Zones d’indicateur du scattergramme différentiel, 6-4
Messages, 6-5
Messages définitifs, 6-7
Révision des résultats de patient, 6-7
Recherche de résultats de patient, 6-8
xvi
Table des matières
Affichage des résultats de patient, 6-9
Réexécution des échantillons patient, 6-9
Édition des résultats de patient, 6-10
Suppression des résultats de patient, 6-11
Transmission des résultats de patient, 6-11
Impression des résultats de patient, 6-12
Exportation des résultats de patient, 6-12
Exportation des fichiers de données brutes, 6-13
CHAPITRE 7:
Liste de travaux, 7-1
Aperçu de la liste de travaux, 7-1
Configuration d’une demande de test, 7-1
Éditer une demande de test, 7-3
Suppression d’une demande de test, 7-4
Correspondance des ID spécimen (SID), 7-4
CHAPITRE 8:
Arrêt, 8-1
Effectuer un arrêt, 8-1
Arrêt d’urgence et mise hors tension/coupure de l’alimentation, 8-2
Arrêt d’urgence, 8-2
Arrêt en cours, 8-2
Coupure de l’alimentation, 8-2
CHAPITRE 9:
Configuration, 9-1
Configuration du système, 9-1
Configuration de l’accès sécurisé, 9-1
Configuration de la déconnexion automatique, 9-2
Configuration de la date et l’heure, 9-3
Configuration automatique du démarrage et des contrôles
journaliers, et la fréquence des cycles d’auto-nettoyage., 9-3
Configuration du spécimen suivant, 9-4
Configuration des options de l’imprimante, 9-4
Configuration des intervalles de référence, 9-5
Configuration des messages définitifs, 9-7
Configuration du SIL, 9-7
Exécution d’une sauvegarde ou d’une restauration, 9-8
Mise à jour du logiciel, 9-10
Configuration de l’imprimante administrateur, 9-10
Réactifs, 9-12
Configuration ou remplacement des réactifs, 9-12
Vérification des cycles, 9-15
xvii
Table des matières
Configuration et édition des contrôles, 9-15
Configuration ou remplacement du rejet des déchets, 9-16
Configuration des rapports, 9-18
Configuration des informations d’en-tête, 9-18
Configuration des options d’impression de rapport, 9-19
Configuration des unités des paramètres, 9-19
Configuration de XB, 9-20
Configuration de XM, 9-20
Configuration du CQ étendu, 9-21
Configuration des informations IQAP, 9-22
Impression d’un rapport de configuration, 9-22
CHAPITRE 10:
Dépannage, 10-1
Précautions/dangers, 10-1
Dépannage général, 10-1
Dépannage individuel, 10-4
Vérification de la version du logiciel, 10-4
Affichage des journaux, 10-4
Exportation des journaux, 10-5
Dépannage de l’assurance qualité, 10-6
Messages d’événement, 10-7
Diagnostics, 10-12
Réinitialisation du matériel, 10-12
Nettoyer les bacs, 10-13
Nettoyer par contre-pression les orifices, 10-13
Cycle d’eau de Javel, 10-13
Réinitialisation du diluteur, 10-13
Préparation pour expédition, 10-13
Vérifier les capteurs, 10-15
Entretien, 10-15
Vidanger les bacs, 10-15
Rincer les bacs (Cycle de rinçage), 10-16
Position du lubrifiant (lubrifiant des pistons de la seringue), 10-16
Distribution du diluant, 10-18
Immobiliser la seringue, 10-18
Vérifications des vannes, 10-19
CHAPITRE 11: Assurance qualité, 11-1
Vue d’ensemble, 11-1
Calibration, 11-1
Quand vérifier la calibration, 11-1
Quand effectuer la calibration, 11-2
xviii
Table des matières
Calibration à l’aide du calibrateur de série DxH 500, 11-2
Configuration de la calibration, 11-2
Exécution du test de répétabilité, 11-6
Exécution d’un test de contamination inter-échantillons, 11-8
CHAPITRE 12: Procédures de nettoyage, 12-1
Quand, pourquoi et comment exécuter chaque procédure de nettoyage, 12-1
Nettoyage de l’instrument, 12-2
Nettoyage des bacs, 12-2
Exécution d’un cycle d’eau de Javel, 12-3
Préparation de la solution d’eau de Javel, 12-5
Nettoyez le filtre du bac NGB., 12-5
Nettoyage du support de tubes et du compartiment du support de tubes, 12-9
Vidange des bacs, 12-9
Nettoyage par contre-pression des orifices, 12-10
Nettoyage du scanner de codes-barres, 12-10
CHAPITRE 13: Procédures de remplacement/réglage, 13-1
Quand, pourquoi et comment exécuter chaque procédure de
remplacement/réglage, 13-1
Remplacement du joint torique de la tête de rinçage, 13-2
Remplacement du scanner de codes-barres, 13-4
Remplacement de la sonde d’aspiration, 13-4
Retrait et remplacement du support de tubes, 13-9
ANNEXE A:
Niveaux d’accès et rapports, A-1
Niveaux d’accès, A-1
Rapports, A-4
ANNEXE B:
Codes-barres, B-1
Spécifications des étiquettes de codes-barres, B-1
ANNEXE C:
Liste de vérification de formation, C-1
Liste de vérification de formation, C-1
ANNEXE D:
Liste de vérification de mise en œuvre, D-1
Liste de vérification des performances, D-1
xix
Table des matières
Abréviations et acronymes
Glossaire
Références
Accord de licence pour le client utilisateur final
Beckman Coulter, Inc.
Documents associés
xx
Illustrations
Illustrations
1.1
Vue de face du DxH 520, 1-2
1.2
Vue arrière du DxH 520, 1-3
1.3
Vue latérale gauche du DxH 520, 1-3
1.4
Vue latérale gauche du DxH 520 derrière la porte du
compartiment des réactifs, 1-4
1.5
Vue latérale droite du DxH 520, 1-4
1.6
Vue latérale droite du DxH 520 derrière la porte du diluteur, 1-5
1.7
Scanner de codes-barres, 1-9
1.8
Menu principal, 1-12
1.9
Clavier visuel, 1-16
2.1
Principe Coulter, 2-2
2.2
Population de globules rouges, 2-4
2.3
Population de cellules PLT, 2-5
2.4
Scattergramme DIFF, 2-5
5.1
Positionnement correct/incorrect de l’étiquette sur le
flacon, 5-2
6.1
Limites de seuil d’histogramme PLT, 6-3
6.2
Régions d’indicateur du scattergramme différentiel, 6-4
A.1
Résultats de patient — NFS, sang total — Format 1, A-5
A.2
Résultats de patient — CD, sang total — Format 2, A-6
A.3
Résultats de patient — CD, sang prédilué — Format 1, A-7
xxi
Tableaux
Tableaux
xxii
1.1
Paramètres, 1-1
1.2
Dimensions, poids et dégagement de l’instrument, 1-6
1.3
Icônes du menu principal, 1-12
1.4
Menu Fonctions, 1-14
1.5
Icônes globales, 1-14
1.6
Icônes de navigation, 1-14
1.7
Indicateurs d’erreur et d’avertissement, 1-15
1.8
Touches du clavier système, 1-17
1.9
Spécifications de comparaison des méthodes — Sang total, 1-18
1.10
Spécifications de comparaison de méthodes — Diff — Sang
total — DxH 520 par rapport à différentiel manuel, 1-19
1.11
Spécifications de comparaison des méthodes — Sang total par
rapport à sang prédilué, 1-19
1.12
Limites de répétabilité, 1-20
1.13
Limites d’imprécision (reproductibilité), 1-22
1.14
Plages de fonctionnement et de mesure du sang total et limites
de linéarité, 1-23
1.15
Limites des valeurs résiduelles, 1-24
1.16
Intervalles de référence du sang total — Tous les
échantillons, 1-25
1.17
Intervalles de référence du sang total — Hommes, 1-26
1.18
Intervalles de référence du sang total — Femmes, 1-26
1.19
Stabilité des échantillons et stockage, 1-28
1.20
Limites, 1-29
2.1
Mesure, dérivation et calcul des paramètres, 2-6
6.1
Indicateurs et positions, 6-2
6.2
Codes, 6-3
6.3
Messages, 6-5
6.4
Messages définitifs, 6-7
10.1
Dépannage général, 10-1
10.2
Dépannage — Assurance qualité, 10-6
10.3
Messages d’événement, 10-7
12.1
Matrice de fréquence des procédures de nettoyage, 12-1
13.1
Matrice de fréquence des procédures de remplacement., 13-1
A.1
Niveaux d’accès sécurisé, A-1
B.1
Spécifications des paramètres d’impression, B-1
Tableaux
C.1
Liste de vérification de formation, C-1
D.1
Liste de vérification des performances, D-1
xxiii
Tableaux
xxiv
Introduction
Comment utiliser vos manuels
Utilisez ce mode d’emploi pour le fonctionnement quotidien de votre système.
Ce manuel comprend :
• Des consignes de sécurité
• Des spécifications et caractéristiques
• Des principes de fonctionnement
• Des informations détaillées pour le fonctionnement quotidien
• Des informations de maintenance et de dépannage
• Liste de vérification de formation
• Liste de vérification des performances
Utilisez le Host Transmission Manual (Manuel sur la transmission à l’informatique centrale) pour
trouver les informations nécessaires à la programmation de l’interface de transmission entre le
système et l’ordinateur hôte de votre laboratoire.
Pour déterminer quel manuel contient les informations dont vous avez besoin, reportez-vous à
Documents associés.
À propos de ce manuel
REMARQUE Les écrans et le matériel illustrés dans ce manuel peuvent différer légèrement des écrans et du
matériel de votre configuration système.
Les informations de votre mode d’emploi sont organisées comme suit :
CHAPITRE 1, Présentation du système
Décrit l’utilisation prévue de l’instrument, les contrôles et les indicateurs à utiliser, les informations
sur la performance, et les informations d’utilisation du logiciel du système.
CHAPITRE 2, Principes de fonctionnement
Contient une description de la méthode Coulter, la dilution standard des échantillons, la
numération et la détermination de la taille.
CHAPITRE 3, Démarrage et contrôles journaliers
Fournit des informations sur la connexion, la déconnexion et comment effectuer et réviser les
contrôles journaliers.
Réf. B95008AA
xxv
Introduction
À propos de ce manuel
CHAPITRE 4, Contrôle de qualité
Fournit des informations sur la façon d’analyser le matériau de contrôle de qualité.
CHAPITRE 5, Analyse des échantillons
Fournit des informations sur la collecte des spécimens, la méthode adéquate pour apposer une
étiquette de code-barres sur un tube d’échantillon, et l’exécution d’un spécimen.
CHAPITRE 6, Consultation résultats
Fournit des informations sur le passage en revue et l’interprétation des résultats des échantillons, y
compris les résultats signalés par un indicateur.
CHAPITRE 7, Liste de travaux
Fournit des informations pour les demandes de test en attente, les demandes sans correspondance
et les résultats des analyses des échantillons.
CHAPITRE 8, Arrêt
Fournit des informations sur l’arrêt.
CHAPITRE 9, Configuration
Fournit des informations sur la configuration du système, notamment les consommables, les
opérateurs et les rôles, la génération d’indicateurs, les rapports, les données démographiques des
patients, et le contrôle de qualité.
CHAPITRE 10, Dépannage
Décrit les consignes de sécurité, les dangers en fonctionnement, les informations de dépannage et
les messages système.
CHAPITRE 11, Assurance qualité
Indique quand vérifier et ajuster la calibration, fournit des instructions sur les procédures de
répétabilité, test de contamination inter-échantillons et calibration.
CHAPITRE 12, Procédures de nettoyage
Décrit pourquoi, comment et quand effectuer les procédures de nettoyage.
CHAPITRE 13, Procédures de remplacement/réglage
Décrit pourquoi, comment et quand effectuer les procédures de remplacement.
ANNEXE A, Niveaux d’accès et rapports
Contient un tableau des niveaux d’accès sécurisé ainsi que des exemples de rapports.
ANNEXE B, Codes-barres
Contient les spécifications des paramètres d’impression pour le scanner de codes-barres portatif.
ANNEXE C, Liste de vérification de formation
Contient une liste de vérification de formation à suivre. Assurez-vous d’avoir lu ce manuel et
compris comment utiliser le DxH 520 avant d’essayer d’utiliser l’instrument.
ANNEXE D, Liste de vérification de mise en œuvre
Contient une liste de vérification des performances à suivre pour vérifier que l’instrument est
correctement configuré.
Ce manuel comprend également une liste de références, d’abréviations et d’acronymes, un glossaire
et les informations relatives à la garantie.
xxvi
Réf. B95008AA
Introduction
À propos de ce manuel
Conventions
Le présent manuel utilise les conventions suivantes :
• La police en gras indique les sélections sur les écrans.
• La police en italique indique le texte à l’écran affiché par le système.
• Le terme Sélectionner indique de toucher l’écran avec le doigt.
IMPORTANT IMPORTANT est utilisé pour les commentaires apportant une valeur ajoutée à l’étape ou à la
procédure en cours d’exécution. Suivre les conseils de type IMPORTANT permet de mieux tirer parti des
performances d’un équipement ou d’un processus.
REMARQUE REMARQUE est utilisé pour attirer l’attention sur des informations qui doivent être suivies lors
de l’utilisation ou de l’entretien de cet équipement.
Graphiques
Tous les graphiques, y compris les écrans et les sorties imprimées ne sont donnés qu’à titre indicatif
et ne doivent pas être utilisés autrement.
Réf. B95008AA
xxvii
Introduction
À propos de ce manuel
xxviii
Réf. B95008AA
CHAPITRE 1
Présentation du système
Utilisation prévue
Le DxH 520 est un analyseur d’hématologie automatisé quantitatif, multi-paramètres, pour une
utilisation diagnostique in vitro dans les laboratoires cliniques, notamment les hôpitaux, les
laboratoires de référence et médicaux. Il est utilisé pour distinguer entre les patients normaux
présentant des paramètres normaux générés par le système et les patients présentant des
paramètres anormaux et/ou des indicateurs nécessitant des examens complémentaires.
Le DxH 520 identifie et énumère les paramètres suivants : NGB, NGR, HB, HCT, VMC, TCMH, CCMH,
RDW, RDW-SD, PLT, VMP, LY%, Nb_LY, MO%, Nb_MO, NE%, Nb_NE, EO%, Nb_EO, BA% et Nb_BA dans
les échantillons de sang total (veineux et capillaire) collectés avec des anticoagulants K2EDTA et
K3EDTA, et de sang total prédilué.
Paramètres NFS/DIFF
Tableau 1.1 Paramètres
Réf. B95008AA
Paramètre
Substance analysée
Globule blanc
NGB
Globule rouge
NGR
Hémoglobine
HB
Hématocrite
HCT
Volume moyen cellulaire
VMC
Taux cellulaire moyen en hémoglobine
TCMH
Concentration cellulaire moyenne en hémoglobine
CCMH
Indice de distribution des globules rouges
RDW
Indice de distribution des globules rouges — SD
RDW-SD
Plaquette sanguine
PLT
Volume moyen de plaquettes sanguines
VMP
Pourcentage de lymphocytes
LY
Valeur absolue de lymphocytes
Nb_LY
Pourcentage de monocytes
MO
Valeur absolue de monocytes
Nb_MO
Pourcentage de neutrophiles
NE
Valeur absolue de neutrophiles
Nb_NE
1-1
Présentation du système
Vues de l’instrument
Tableau 1.1 Paramètres (Suite)
Paramètre
Substance analysée
Pourcentage d’éosinophiles
EO
Valeur absolue d’éosinophiles
Nb_EO
Pourcentage de basophiles
BA
Valeur absolue de basophiles
Nb_BA
Vues de l’instrument
Figure 1.1 Vue de face du DxH 520
b
c
d
e
f
Nombre
Description
Nombre
Description
1
Écran tactile
4
Porte échantillon
2
Bouton d’alimentation et indicateur
DEL d’état
5
Port USB avant
3
Sonde d’aspiration
(visible dans le mode Tube ouvert)
1-2
Réf. B95008AA
Présentation du système
Vues de l’instrument
Figure 1.2 Vue arrière du DxH 520
Nombre
Description
Nombre
Description
1
Ports USB arrière
5
Connecteur de l’alimentation électrique
2
Port Ethernet
6
Connecteur de ligne de diluant
3
Connecteur EIA-232 D
7
Connecteur de ligne de déchets
4
Port USB D
Figure 1.3 Vue latérale gauche du DxH 520
Réf. B95008AA
Nombre
Description
1
Verrou de la porte du compartiment des réactifs
1-3
1
Présentation du système
Vues de l’instrument
Figure 1.4 Vue latérale gauche du DxH 520 derrière la porte du compartiment des réactifs
Nombre
Description
1
Agent de nettoyage
2
Lyse
Figure 1.5 Vue latérale droite du DxH 520
1-4
Nombre
Description
1
Porte du diluteur
Réf. B95008AA
Présentation du système
Matériel
Figure 1.6 Vue latérale droite du DxH 520 derrière la porte du diluteur
Nombre
Description
Nombre
Description
1
Collecteur de l’électrovanne
(électrovannes à 2 et 3 voies)
8
Bac NGB/Diff
2
Ensemble d’entraînement de la
seringue
9
Bac NGR
3
Piston de la seringue de
prélèvement
10
Sonde d’aspiration
4
Banc optique
11
Ensemble de l’agitateur
5
Collecteur de numération
12
Tête de rinçage (dans cette zone)
6
Électrovannes de vidange/mélange
13
Support de tubes
7
Zone de numération
14
Porte échantillon
Matériel
Cette section contient des informations sur les composants de l’instrument et les exigences s’y
rapportant.
Réf. B95008AA
1-5
1
Présentation du système
Matériel
Dimensions, poids et dégagement de l’instrument
ATTENTION
Ce dispositif est destiné à une utilisation en intérieur uniquement. Les fonctions
de sécurité peuvent être altérées si le dispositif n’est pas utilisé conformément
aux instructions du fabricant.
Tableau 1.2 Dimensions, poids et dégagement de l’instrument
DxH 520
Dimensions/Poids/Dégagement
Profondeur
43,0 cm (16,9 po)
Largeur
27,0 cm (10,6 po)
Hauteur
40,6 cm (16,0 po)
Poids
11,4 kg (25,1 lb)
Dégagement derrière l’instrument pour les
connexions
10,1 cm (4,0 po)
Dégagement du côté gauche pour le chargement
des réactifs
22,9 cm (9,0 po)
Dégagement du côté droit pour le dépannage
30,5 cm (12 po)
Exigences d’alimentation
ATTENTION
Risque de résultats erronés. N’utilisez pas de rallonge pour brancher l’instrument
à une prise électrique. L’utilisation d’une rallonge peut augmenter les
interférences électriques susceptibles d’affecter les résultats de l’instrument.
Placez l’instrument à proximité suffisante d’une prise électrique afin de ne pas
devoir utiliser de rallonge.
L’instrument requiert les éléments suivants :
• 100–240 V c.a.
• 50–60 Hz
• Monophasé avec terre
• La mise à la terre est obtenue par un troisième conducteur de mise à la terre qui peut transférer
tout le courant du circuit
• Le circuit est indépendant et protégé
• Alimentation électrique externe (fournie avec l’instrument) :
— Tension de sortie : 24 V
— Intensité : 6,25 A
1-6
Réf. B95008AA
Présentation du système
Matériel
• Afin de réduire les risques de chocs électriques ou d’électrocution, l’instrument est pourvu d’un
cordon électrique et d’une fiche trifilaire qui assurent sa mise à la terre (masse). Lors du
remplacement du cordon d’alimentation, respectez les caractéristiques nominales suivantes :
— Cordon États-Unis :
·
Type de fiche : 498 G, 15 A, 125 V
·
Type de connecteur : C13, 10 A, 250 V
·
Caractéristiques du cordon : 10 A, 125 V
— Cordon Europe :
·
Type de fiche : VIIG, 16 A, 250 V
·
Type de connecteur : C13, 10 A, 250 V
·
Caractéristiques du cordon : 10 A, 250 V
NE PAS utiliser d’adaptateur trifilaire-bifilaire.
Consommation électrique
Inférieure à 120 W
Bruit acoustique
L’instrument produit un niveau de pression sonore maximum inférieur à 80 dBa.
Température de fonctionnement
L’instrument configuré avec les consommables DxH 520 répond aux spécifications de performance
lorsqu’il est utilisé à une température comprise entre +18 et 32 °C (64,4 et 89,6 °F).
Si la température ambiante moyenne fluctue de plus de 6 °C ou 10 °F par rapport à la température
pour laquelle l’instrument NFS a été calibré, vérifiez le calibrage et recalibrez si nécessaire pour
garantir une performance optimale.
ATTENTION
Risque de résultats erronés pour le différentiel. Des résultats de différentiel
erronés sont possibles lorsque la température varie de plus de 9 °C (16 °F).
Effectuez un test de répétabilité pour déterminer si le différentiel est stable.
Contactez votre représentant local Beckman Coulter si une panne survient.
Température de stockage
L’instrument, sans réactifs, peut être conservé à une température comprise entre -10 et +50 °C (14 et
122 °F).
Réf. B95008AA
1-7
1
Présentation du système
Matériel
Humidité
L’instrument est conforme aux déclarations relatives aux performances lorsqu’il est utilisé à une
humidité relative maximum de 80 % (sans condensation) à 32 °C (89,6 °F).
Transport
L’emballage de l’instrument est conforme aux normes d’emballage ISTA 2A.
Altitude
L’instrument peut être utilisé à deux plages d’altitude différentes :
• Normale — Jusqu’à 1 500 m (4 921 pi)
• Élevée — 1 501 à 3 000 m (4 925 à 9 843 pi)
La plage d’altitude appropriée est configurée lors du processus d’installation.
Stockage externe — USB
L’instrument :
• Prend en charge USB 2.0.
• Est équipé d’un port USB à l’avant pour le transfert des données depuis et vers une clé USB.
• La clé USB doit être formatée en FAT32 avant d’être utilisée sur l’instrument. Utilisez les options
de formatage standard disponibles sur un ordinateur Windows.
• Dispose de quatre ports USB à l’arrière pour le transfert des données et/ou les périphériques.
SIL
L’instrument prend en charge les communications série (RS-232) et Ethernet pour la transmission
des données vers un SIL. Reportez-vous au Manuel Host Transmission (Transmission à
l’informatique centrale) répertorié dans les Documents associés pour de plus amples informations.
Imprimante — En option
Les pilotes des imprimantes USB en option disponibles avec cet instrument sont préinstallés sur le
système. Utilisez le pilote correspondant à votre imprimante.
1-8
Réf. B95008AA
Présentation du système
Matériel
Scanner de codes-barres
Un scanner de codes-barres portatif, compatible USB, est inclus avec l’instrument pour saisir :
• Les numéros de lot des réactifs et leurs dates de péremption
• Les numéros de lot des calibrateurs et contrôles, leurs dates de péremption, les valeurs cibles et
les limites
• ID spécimen
Figure 1.7 Scanner de codes-barres
Nombre
Description
1
Voyant
2
Fenêtre de balayage
3
Déclenchement
Les symbologies de codes-barres suivantes sont prises en charge :
• Code 128
• Codabar
• Code 39
• Interleaved 2 of 5
• ISBT 128 (ID donneur uniquement)
• NW 7
Voir Spécifications des étiquettes de codes-barres dans l’ANNEXE B, Codes-barres pour plus
d’informations.
Réf. B95008AA
1-9
1
Présentation du système
Consommables
Consommables
Les consommables recommandés sont indiqués dans cette section.
Réactifs
Diluant de série DxH 500
Le diluant de série DxH 500 est une solution isotonique tamponnée à faible teneur en formaldéhyde
améliorée. Le diluant de série DxH 500 dilue le spécimen et est utilisé pour rincer les composants du
module entre les analyses d’échantillons.
Agent de lyse de série DxH 500
L’agent de lyse de série DxH 500 est un réactif de lyse sans cyanure qui lyse les globules rouges pour :
• La numération des globules blancs (NGB)
• La classification des sous-populations NGB
• La mesure de l’hémoglobine (HB)
Agent de nettoyage de série DxH 500
L’agent de nettoyage de série DxH 500 est une solution nettoyante biodégradable, sans
formaldéhyde et sans azoture qui contient un enzyme protéolytique qui permet de supprimer
l’accumulation de protéines.
Contrôles et calibrateurs
Contrôle de série DxH 500
Le contrôle de série DxH 500 est un contrôle à trois niveaux intégré qui permet de surveiller les
performances du système et l’état de la calibration pour tous les paramètres DIFF et NFS.
Calibrateur de série DxH 500
Le calibrateur de série DxH 500 est conforme aux méthodes de référence et il est recommandé pour
déterminer le réglage des paramètres NFS mesurés directement. L’état de la calibration doit être
surveillé avec les contrôles Beckman Coulter.
1-10
Réf. B95008AA
Présentation du système
Fiches signalétiques (SDS)
Tubes de spécimen
Le DxH 520 peut traiter différents tubes de spécimen. Un support de tube en option est également
disponible pour le traitement des tubes spécifiques.
Le volume d’échantillon minimum requis pour les tests comprend à la fois le volume d’aspiration et
le volume mort du tube et varie selon le fabricant du tube. Pour obtenir plus d’informations, voir les
Documents associés.
ATTENTION
Risque de résultats erronés et/ou de fuite du tube d’échantillon. L’utilisation de
tubes d’échantillon non recommandés peut entraîner des résultats erronés et des
fuites du tube. Suivez les informations de la liste des tubes d’hématologie (voir
Documents associés).
Étiquettes codes-barres
Voir l’ANNEXE B, Codes-barres pour plus d’informations sur les codes-barres.
Fiches signalétiques (SDS)
Pour obtenir une SDS pour les réactifs Beckman Coulter utilisés sur l’instrument :
• Par Internet, consultez www.beckmancoulter.com
— Sélectionnez Fiches signalétiques (SDS/MSDS) dans le menu Assistance.
— Suivez les instructions qui apparaissent à l’écran.
• Sinon, contactez votre représentant Beckman Coulter.
Stockage des données
L’instrument stocke les données des patients (résultats, indicateurs et données démographiques),
les contrôles CQ et les graphiques, les informations sur les contrôles journaliers, les journaux
d’événements et les résultats de calibration.
Le logiciel de l’instrument stocke un maximum de 30 000 résultats de patient, notamment les
graphiques, indicateurs, codes et messages. Lorsque la base de données contenant les résultats des
patients est pleine, le logiciel supprime automatiquement les résultats, en commençant par les plus
anciens.
Le logiciel peut également stocker jusqu’à 12 fichiers de contrôle, ayant chacun une capacité
maximum de 150 analyses individuelles.
Réf. B95008AA
1-11
1
Présentation du système
Logiciel
Logiciel
Le logiciel du système affiche des icônes système, des icônes de navigation et des indicateurs
d’avertissement et possède un clavier visuel.
Icônes du menu principal
Les icônes du menu principal s’affichent sur le côté gauche et en haut à droite de l’écran, comme le
montre la Figure 1.8, Menu principal.
Figure 1.8 Menu principal
Tableau 1.3 Icônes du menu principal
Icône
1-12
Nom
Description
Aff / Exéc
Retourne à l’écran précédent ou à l’écran principal.
Afficher/
Exécuter
Affiche l’écran Analyse des échantillons — Résultats de patient, où vous pouvez analyser
des spécimens et des contrôles.
Résultats
Affiche l’écran Résultats de patient où vous pouvez rechercher, afficher, réexécuter,
éditer, faire correspondre et supprimer des résultats pour les spécimens traités.
Liste de Trav.
Affiche l’écran Liste de travaux où vous pouvez voir une liste des demandes de test, créer
et supprimer des demandes.
Réf. B95008AA
Présentation du système
Logiciel
Tableau 1.3 Icônes du menu principal (Suite)
Icône
Nom
Description
Contrôles Jour. Affiche l’écran Contrôles Journaliers où vous pouvez exécuter des contrôles journaliers,
effectuer un comptage résiduel ou effectuer un arrêt.
CQ/AQ
Affiche l’écran Contrôle de qualité (Visualisation des données) où vous pouvez accéder
aux écrans AQ, XB et XM. Vous pouvez également télécharger les informations IQAP, voir
les graphiques, voir les analyses CQ individuelles, faire des commentaires, et supprimer
des fichiers de cet écran.
Réactifs
Affiche l’écran Réactifs associé au chargement et à l’amorçage des réactifs, à la gestion
des déchets, à l’affichage du journal des réactifs et à l’affichage du compteur de cycles.
Journaux
Affiche l’écran Journaux où vous pouvez voir et exporter les journaux d’événements.
Configurer
Affiche l’écran Configurer où vous pouvez configurer le système, notamment l’assurance
qualité, les contrôles qualité, les rapports, les imprimantes et d’autres options du
système.
Diagnostics
Affiche le menu Diagnostics où vous pouvez effectuer les procédures de nettoyage et
dépanner l’instrument.
Fonctions
Fournit les fonctions d’impression, de transmission, et d’exportation pour l’écran affiché.
Voir Menu Fonctions pour plus d’informations.
Déconnex
Vous déconnecte du système.
Menu Fonctions
Sélectionnez
pour accéder aux options dans le tableau suivant.
REMARQUE Les options du menu Fonctions peuvent varier selon l’écran affiché et ne sont pas accessibles
dans le menu Principal.
Réf. B95008AA
1-13
1
Présentation du système
Logiciel
Tableau 1.4 Menu Fonctions
Icône
Nom
Description
Transmettre
Transmet un résultat en particulier ou tous les résultats
Imprimer
Imprime un résultat en particulier ou tous les résultats
Exporter
Exporte un résultat en particulier ou tous les résultats
Quitter
Quitte le menu Fonctions
Icônes globales et de navigation
Tableau 1.5 Icônes globales
Icône
Nom
Description
OK
Permet d’accepter les informations que vous avez saisies ou modifiées,
ou d’accuser réception d’un message.
Quitter
Permet de quitter l’écran sans accepter les informations nouvelles ou
modifiées.
Rechercher
Permet de rechercher des informations en fonction des critères saisis.
Tableau 1.6 Icônes de navigation
Icône
1-14
Nom
Description
Accéder au système
Permet d’accéder à l’écran suivant après la connexion (disponible sur
l’écran de connexion uniquement).
Flèche Retour
Retourne à l’écran précédent ou à l’écran principal.
Réf. B95008AA
Présentation du système
Logiciel
Tableau 1.6 Icônes de navigation (Suite)
Icône
Nom
Description
Aller tout en haut
Va en haut d’un tableau.
Aller vers le haut
Monte d’une page.
Aller vers le bas
Descend d’une page.
Aller tout en bas
Va en bas d’un tableau.
Aller au début
Va au début (tout à gauche) d’un tableau.
Aller vers la gauche
Va d’une page vers la gauche.
Aller vers la droite
Va d’une page vers la droite.
Aller à la fin
Va à la fin (tout à droite) d’un tableau.
Indicateurs d’erreur et d’avertissement
Tableau 1.7 Indicateurs d’erreur et d’avertissement
Icône
Réf. B95008AA
Nom
Description
Avertissement
Affiché en haut d’une icône affectée par un événement d’avertissement.
1-15
1
Présentation du système
Logiciel
Tableau 1.7 Indicateurs d’erreur et d’avertissement (Suite)
Icône
Nom
Description
Erreur
Affiché en haut d’une icône affectée par un événement d’erreur.
Erreur CQ/AQ
Affiché avec une icône, selon les cas, pour indiquer la ou les sources
d’une condition CQ ou AQ hors limites.
— CQ hors limites
— XB hors limites
— XM hors limites
— CQ étendu (EQC) hors limites
Vue Écran
Pour une vue agrandie d’un élément, sélectionnez celui-ci (graphique, histogramme, données
démographiques, scattergramme, indicateur ou message) pour l’agrandir. Pour quitter l’écran,
sélectionnez
.
Clavier
Le système affiche un clavier visuel, comme le montre l’exemple de la Figure 1.9, Clavier visuel.
Figure 1.9 Clavier visuel
La plupart des touches fonctionnent comme un clavier standard. Les fonctions comprennent :
1-16
Réf. B95008AA
Présentation du système
Performances
Tableau 1.8 Touches du clavier système
Icône
Nom
Description
Onglet
Déplace le curseur d’un champ à l’autre.
Retour arrière
Déplace le curseur vers l’arrière d’un espace et supprime le caractère
saisi.
Plus
Entre le caractère +
REMARQUE Cette touche s’affiche et est active uniquement sur
l’écran d’entrée Réactifs.
Tiret
Entre le caractère -
Point
Entre le caractère .
Sélection de la langue Vous permet de sélectionner un clavier visuel pour la langue voulue.
du clavier
Un clavier exclusivement numérique est disponible. Un clavier USB en option est également
disponible.
REMARQUE Les caractères correspondant à des lettres saisis en utilisant le clavier visuel s’affichent
exclusivement en majuscules. Les caractères correspondant à des lettres saisis en utilisant le clavier
facultatif s’affichent en majuscules ou en minuscules, selon ce qui est saisi. Le système n’est pas sensible
à la casse. Par exemple, l’ID spécimen abcd sera équivalent à une demande de test portant l’ID spécimen
ABCD.
Performances
Anticoagulants
REMARQUE Toutes les indications de performance indiquées dans ce manuel sont basées sur des données
de spécimens prélevés dans les anticoagulants donnés ci-dessous.
Les anticoagulants recommandés sont l’EDTA K2 ou K3.
Réf. B95008AA
1-17
1
Présentation du système
Performances
Aspiration
Le volume de sang total aspiré est d’environ 16,7 μL de sang total dans un tube fermé ou dans le
mode d’analyse du sang total dans un tube ouvert.
L’analyse des échantillons prédilués requiert une dilution de 20 μL de sang total dans 300 μL de
diluant. Le volume d’aspiration d’un mélange d’échantillon prédilué est de 180 μL.
Comparaison des méthodes — Sang total
L’exactitude a été établie en utilisant un minimum de 40 échantillons morphologiquement normaux
collectés dans du K2 ou du K3 EDTA, stockés à température de fonctionnement (voir Température de
fonctionnement) et analysés dans les 8 heures après le prélèvement sur le système DxH 520 et un
comparateur. Les résultats comportant des messages système ont été exclus. La différence moyenne
a été calculée conformément à CLSI EP09-A323. Les résultats de la différence moyenne doivent se
situer dans les limites définies ci-dessous.
Tableau 1.9 Spécifications de comparaison des méthodes — Sang total
Paramètre de
sang total
Unités
Plage de mesure
Différence ou % de différence
(valeur la plus grande prise en compte)
NGB
x 103 cellules/μL
0,20 à 100,00
± 0,30 ou ± 5,00 %
NGR
x 106 cellules/μL
0,20 à 8,00
± 0,07 ou ± 3,00 %
HB
g/dL
0,20 à 25,00
± 0,30 ou ± 3,00 %
HCT
%
0,0 à 85,0
± 1,0 ou ± 4,0 %
VMC
fL
50,0 à 150,0
± 2,5 ou ± 3,0 %
TCMH
pg
0,0 à 99,9
± 5,0 %
CCMH
g/dL
0,0 à 99,9
± 5,0 %
RDW
%
10,0 à 40,0
± 2,0 ou ± 10,0 %
RDW-SD
fL
15,0 à 150,0
± 7,5 ou ± 10,0 %
PLT
x 103 cellules/μL
7,0 à 2 000,0
± 10,0 ou ± 10,0 %
VMP
fL
5,00 à 25,00
± 1,00 ou ± 10,00 %
LY
%
0,00 à 100,00
± 3,00 ou ± 10,00 %
MO
%
0,00 à 100,00
± 2,00 ou ± 10,00 %
NE
%
0,00 à 100,00
± 3,00 ou ± 10,00 %
EO
%
0,00 à 100,00
± 1,50 ou ± 10,00 %
BA
%
0,00 à 100,00
± 1,00 ou ± 10,00 %
Nb_LY
x 103 cellules/μL
0,00 à 100,00
± 0,20 ou ± 10,00 %
Nb_MO
x 103 cellules/μL
0,00 à 100,00
± 0,20 ou ± 10,00 %
Nb_NE
x 103 cellules/μL
0,00 à 100,00
± 0,30 ou ± 10,00 %
Nb_EO
x 103 cellules/μL
0,00 à 100,00
± 0,15 ou ± 10,00 %
Nb_BA
x 103 cellules/μL
0,00 à 100,00
± 0,10 ou ± 10,00 %
1-18
Réf. B95008AA
Présentation du système
Performances
Spécifications de comparaison de méthodes — Diff — Sang total — DxH 520 par
rapport à différentiel manuel
L’exactitude a été évalué en comparant les résultats de l’instrument DxH 520 et d’un instrument de
comparaison à ceux d’un différentiel manuel à 400 cellules conformément CLSI H20-A230. Les
résultats comportant des messages système ont été exclus.
Tableau 1.10 Spécifications de comparaison de méthodes — Diff — Sang total — DxH 520 par rapport à différentiel manuel
Paramètre de
sang total
Unités
Plage de mesure
Écart ou % d’écart
LY
%
0,00 à 100,00
± 3,00 ou ± 10,00 %
MO
%
0,00 à 100,00
± 3,00 ou ± 10,00 %
NE
%
0,00 à 100,00
± 3,00 ou ± 10,00 %
EO
%
0,00 à 100,00
± 1,50 ou ± 10,00 %
BA
%
0,00 à 100,00
± 1,00 ou ± 10,00 %
Spécifications de comparaison des méthodes — Sang total par rapport à sang
prédilué
Les échantillons dilués doivent être analysés dans les 15 minutes qui suivent leur préparation. Les
résultats comportant des messages système doivent être exclus. Les résultats comparés entre les
échantillons de sang total et les échantillons prédilués sur le DxH 520 doivent être conformes aux
limites définies dans le Tableau 1.11, Spécifications de comparaison des méthodes — Sang total par
rapport à sang prédilué.
Tableau 1.11 Spécifications de comparaison des méthodes — Sang total par rapport à sang prédilué
Paramètre de
sang total
Unités
Plage de mesure
Différence ou % de différence
(valeur la plus grande prise en compte)
NGB
x103 cellules/μL
0,20 à 100,00
± 0,60 ou ± 10,00 %
NGR
x106 cellules/μL
0,20 à 8,00
± 0,10 ou ± 10,00 %
HB
g/dL
0,20 à 25,00
± 0,40 ou ± 6,00 %
HCT
%
0,0 à 85,0
± 1,0 ou ± 5,0 %
VMC
fL
50,0 à 150,0
± 4,0 %
TCMH
p/g
0,0 à 99,9
± 5,0 %
CCMH
g/dL
0,0 à 99,9
± 5,0 %
RDW
%
10,0 à 40,0
± 2,0 ou ± 5,0 %
RDW-SD
fL
15,0 à 150,0
± 7,5 ou ± 10,0 %
PLT
x103 cellules/μL
7,0 à 2 000,0
± 20,0 ou ± 15,0 %
VMP
fL
5,00 à 25,00
± 1,50 ou ± 8,00 %
LY
%
0,00 à 100,00
± 3,00 ou ± 10,00 %
MO
%
0,00 à 100,00
± 3,00 ou ± 10,00 %
Réf. B95008AA
1-19
1
Présentation du système
Performances
Tableau 1.11 Spécifications de comparaison des méthodes — Sang total par rapport à sang prédilué (Suite)
Paramètre de
sang total
Unités
Plage de mesure
Différence ou % de différence
(valeur la plus grande prise en compte)
NE
%
0,00 à 100,00
± 3,00 ou ± 10,00 %
EO
%
0,00 à 100,00
± 1,50 ou ± 10,00 %
BA
%
0,00 à 100,00
± 1,50 ou ± 10,00 %
Nb_LY
x103 cellules/μL
0,00 à 100,00
± 0,30 ou ± 10,00 %
Nb_MO
x103 cellules/μL
0,00 à 100,00
± 0,30 ou ± 10,00 %
Nb_NE
x103 cellules/μL
0,00 à 100,00
± 0,30 ou ± 10,00 %
Nb_EO
x103 cellules/μL
0,00 à 100,00
± 0,20 ou ± 10,00 %
Nb_BA
x103 cellules/μL
0,00 à 100,00
± 0,10 ou ± 10,00 %
Répétabilité
Les résultats de répétabilité (N = 10, précision intra-analyse) doivent respecter les limites et les
plages indiquées dans le Tableau 1.12, Limites de répétabilité pour avoir des échantillons exempts
d’alertes, de codes ou de messages invitant à les passer en revue.31
Tableau 1.12 Limites de répétabilité
Paramètre
Unités
Plage*
Limites de répétabilité : Limites de répétabilité :
Sang total
Sang total prédilué
NGB
x103 cellules/μL
0,20 à < 1,00
≤ 0,15 SD
≤ 0,17 SD
1,00 à < 3,00
≤ 0,17 SD
≤ 0,17 SD
3,00 à 5,00
≤ 5,00 % CV
≤ 7,00 % CV
> 5,00 à 7,00
≤ 4,00 % CV
≤ 6,00 % CV
> 7,00 à 100,00
≤ 3,00 % CV
≤ 5,00 % CV
1,00 à < 3,50
≤ 3,00 % CV
≤ 5,00 % CV
3,50 à 8,00
≤ 2,00 % CV
≤ 4,00 % CV
3,00 à < 5,00
≤ 4,00 % CV
≤ 5,00 % CV
5,00 à < 11,00
≤ 2,00 % CV
≤ 3,00 % CV
 11,00
≤ 1,50 % CV
≤ 3,00 % CV
NGR
HB
x106 cellules/μL
g/dL
HCT
%
10,0 à 85,0
≤ 3,00 % CV
≤ 4,00 % CV
VMC
fL
50,0 à 150,0
≤ 1,00 % CV
≤ 2,00 % CV
TCMH
p/g
10,0 à 45,0
≤ 3,00 % CV
≤ 4,00 % CV
CCMH
g/dL
26,0 à 38,0
≤ 4,00 % CV
≤ 5,00 % CV
RDW
%
10,0 à 40,0
≤ 3,50 % CV
≤ 5,00 % CV
RDW-SD
fL
15,0 à 50,0
≤ 3,50 % CV
≤ 5,00 % CV
1-20
Réf. B95008AA
Présentation du système
Performances
Tableau 1.12 Limites de répétabilité (Suite)
Paramètre
Unités
Plage*
Limites de répétabilité : Limites de répétabilité :
Sang total
Sang total prédilué
PLT
x103 cellules/μL
7,0 à < 25,0
≤ 20,00 % CV
≤ 25,00 % CV
25,0 à 50,0
≤ 15,00 % CV
≤ 20,00 % CV
> 50,0 à < 100,0
≤ 10,00 % CV
≤ 15,00 % CV
100,0 à 200,0
≤ 7,50 % CV
≤ 12,00 % CV
> 200,00 à 2 000,0
≤ 5,00 % CV
≤ 12,00 % CV
5,00 à < 8,00
≤ 2,00 % CV
≤ 7,00 % CV
 8,00
≤ 3,00 % CV
≤ 5,00 % CV
1,00 à < 5,00
≤ 0,50 SD
≤ 0,70 SD
5,00 à < 15,00
≤ 12,00 % CV
≤ 15,00 % CV
15,00 à < 25,00
≤ 10,00 % CV
≤ 12,00 % CV
25,00 à 50,00
≤ 7,00 % CV
≤ 10,00 % CV
> 50,00
≤ 5,00 % CV
≤ 7,00 % CV
1,00 à < 5,00
≤ 1,00 SD
≤ 1,20 SD
5,00 à 10,00
≤ 15,00 % CV
≤ 17,00 % CV
> 10,00
≤ 10,00 % CV
≤ 12,00 % CV
5,00 à < 10,00
≤ 20,00 % CV
≤ 20,00 % CV
10,00 à < 15,00
≤ 12,00 % CV
≤ 15,00 % CV
15,00 à 50,00
≤ 7,00 % CV
≤ 10,00 % CV
> 50,00
≤ 5,00 % CV
≤ 7,00 % CV
1,00 à ≤ 4,99
≤ 0,75 SD
≤ 1,00 SD
5,00 à 10,00
≤ 15,00 % CV
≤ 17,00 % CV
> 10,00
≤ 12,00 % CV
≤ 15,00 % CV
VMP
LY
MO
NE
EO
fL
%
%
%
%
BA
%
 0,01
≤ 1,00 SD
≤ 1,50 SD
Nb_LY
x103 cellules/μL
0,20 à < 5,00
≤ 0,50 SD
≤ 0,70 SD
5,00 à < 10,00
≤ 10,00 % CV
≤ 12,00 % CV
10,00 à 100,00
≤ 7,00 % CV
≤ 10,00 % CV
0,30 à 3,00
≤ 0,20 SD
≤ 0,30 SD
> 3,00
≤ 7,00 % CV
≤ 10,00 % CV
0,20 à < 3,00
≤ 0,17 SD
≤ 0,20 SD
3,00 à 7,00
≤ 4,00 % CV
≤ 6,00 % CV
> 7,00 à 100,00
≤ 3,00 % CV
≤ 5,00 % CV
0,10 à 5,00
≤ 0,75 SD
≤ 1,00 SD
> 5,00
≤ 1,00 SD
≤ 1,50 SD
Nb_MO
x103 cellules/μL
Nb_NE
x103 cellules/μL
Nb_EO
Réf. B95008AA
x103 cellules/μL
1-21
1
Présentation du système
Performances
Tableau 1.12 Limites de répétabilité (Suite)
Paramètre
Unités
Plage*
Limites de répétabilité : Limites de répétabilité :
Sang total
Sang total prédilué
Nb_BA
x103 cellules/μL
 0,01
≤ 1,00 SD
≤ 1,50 SD
*Les paramètres VMP s’appliquent tous à PLT > 100,0 x 103 cellules/μL. Les paramètres différentiels s’appliquent tous à
NGB > 4,00 x 103 cellules/μL.
Reproductibilité
Les résultats de reproductibilité doivent respecter les limites indiquées lorsque trois niveaux de
contrôles sont analysés en trois exemplaires par une analyse répétée deux fois par jour pendant
cinq jours. Les valeurs de contrôle avec des indicateurs, codes ou messages indiquant la nécessité
d’une révision ne doivent pas être utilisées pour les tests de reproductibilité.38
Tableau 1.13 Limites d’imprécision (reproductibilité)
Paramètre
Unités
Plage*
Limites de reproductibilité sang total
NGB
x103 cellules/μL
0,20 à < 3,00
≤ 0,20 SD
 3,00
≤ 6,00 % CV
1,00 à < 3,50
≤ 5,00 % CV
3,50 à 8,00
≤ 3,00 % CV
3,00 à < 11,00
≤ 4,00 % CV
11,00 à 25,00
≤ 2,00 % CV
NGR
HB
x106 cellules/μL
g/dL
HCT
%
10,0 à 85,0
≤ 3,00 % CV
VMC
fL
50,0 à 150,0
≤ 2,00 % CV
TCMH
p/g
10,0 à 45,0
≤ 3,00 % CV
CCMH
g/dL
26,0 à 38,0
≤ 4,00 % CV
RDW
%
10,0 à 40,0
≤ 4,00 % CV
RDW-SD
fL
15,0 à 50,0
≤ 8,00 % CV
PLT
x103 cellules/μL
7,0 à < 100,0
≤ 20,00 % CV
100,0 à 2 000,0
≤ 10,00 % CV
VMP
fL
8,00 à 25,00
≤ 5,00 % CV
LY
%
5,00 à < 25,00
≤ 12,00 % CV
 25,00
≤ 10,00 % CV
MO
%
0,10 à 10,00
≤ 1,00 SD
NE
%
5,00 à < 25,00
≤ 12,00 % CV
25,00 à 50,00
≤ 10,00 % CV
> 50,00
≤ 7,00 % CV
1,00 à 10,00
≤ 1,00 SD
> 10,00
≤ 1,50 SD
EO
1-22
%
Réf. B95008AA
Présentation du système
Performances
Tableau 1.13 Limites d’imprécision (reproductibilité) (Suite)
Paramètre
Unités
Plage*
Limites de reproductibilité sang total
BA
%
 0,01
≤ 1,50 SD
Nb_LY
x103 cellules/μL
0,20 à 3,00
≤ 0,50 SD
Nb_MO
x103 cellules/μL
 0,01
≤ 0,20 SD
Nb_NE
x103 cellules/μL
0,20 à 3,00
≤ 0,20 SD
> 3,00 à 7,00
≤ 6,00 % CV
> 7,00 à 100,00
≤ 5,00 % CV
Nb_EO
x103 cellules/μL
0,10 à 3,00
≤ 0,75 SD
Nb_BA
x103 cellules/μL
 0,01
≤ 1,00 SD
*Les paramètres VMP s’appliquent tous à PLT > 100,0 x 103 cellules/μL. Les paramètres différentiels s’appliquent tous à
NGB > 4,00 x 103 cellules/μL.
Plages de mesure analytique, de fonctionnement et linéarité
La plage de mesure est définie comme l’ensemble des valeurs de quantité de même nature qui
peuvent être mesurées par un instrument ou système de mesure donné avec une incertitude de
mesure de l’instrument spécifiée dans certaines conditions bien définies. Les plages de mesures sont
affichées dans le Tableau 1.14, Plages de fonctionnement et de mesure du sang total et limites de
linéarité.
La plage de fonctionnement est la plage sur laquelle le système, y compris la fonction de prédilution,
communique, affiche, imprime, exporte et/ou transmet les résultats. Les valeurs situées entre la
plage de mesure et la plage de fonctionnement sont signalées par un indicateur.
La linéarité désigne la capacité à fournir des résultats qui sont directement proportionnels à la
concentration de la substance analysée dans l’échantillon analysé. La linéarité peut être évaluée en
testant les niveaux d’une substance à analyser connue par sa formule ou à l’aide de matériaux
disponibles dans le commerce pouvant être utilisés sur le système DxH 520 ou conformément au
CLSI EP06-A22.
Les plages de mesure et de fonctionnement s’appliquent aux échantillons de sang total et de sang
prédilué. Les limites de linéarité s’appliquent uniquement au sang total.
Tableau 1.14 Plages de fonctionnement et de mesure du sang total et limites de linéarité
Paramètre de
sang total
Unités
Plage de mesure
Plage de
fonctionnement
Limites de linéarité (r2)
NGB
x103 cellules/μL
0,20 à 100,00
0,00 à 150,00
r2 > 0,95
NGR
x106 cellules/μL
0,20 à 8,00
0,00 à 12,00
r2 > 0,95
HB
g/dL
0,20 à 25,00
0,00 à 25,00
r2 > 0,95
HCT
%
0,0 à 85,0
0,0 à 85,0
s/o
VMC
fL
50,0 à 150,0
50,0 à 150,0
s/o
Réf. B95008AA
1-23
1
Présentation du système
Performances
Tableau 1.14 Plages de fonctionnement et de mesure du sang total et limites de linéarité (Suite)
Paramètre de
sang total
Unités
Plage de mesure
Plage de
fonctionnement
Limites de linéarité (r2)
TCMH
pg
0,0 à 99,9
0,0 à 99,9
s/o
CCMH
g/dL
0,0 à 99,9
0,0 à 99,9
s/o
RDW
%
10,0 à 40,0
0,0 à 70,0
s/o
RDW-SD
fL
15,0 à 150,0
0,0 à 220,0
s/o
PLT
x103 cellules/μL
7,0 à 2 000,0
0,0 à 4 000,0
r2 > 0,95
VMP
fL
5,00 à 25,00
0,00 à 25,00
s/o
LY
%
0,00 à 100,00
0,00 à 100,00
s/o
MO
%
0,00 à 100,00
0,00 à 100,00
s/o
NE
%
0,00 à 100,00
0,00 à 100,00
s/o
EO
%
0,00 à 100,00
0,00 à 100,00
s/o
BA
%
0,00 à 100,00
0,00 à 100,00
s/o
Nb_LY
x103 cellules/μL
0,00 à 100,00
0,00 à 150,00
s/o
Nb_MO
x103 cellules/μL
0,00 à 100,00
0,00 à 150,00
s/o
Nb_NE
x103 cellules/μL
0,00 à 100,00
0,00 à 150,00
s/o
Nb_EO
x103 cellules/μL
0,00 à 100,00
0,00 à 150,00
s/o
Nb_BA
x103 cellules/μL
0,00 à 100,00
0,00 à 150,00
s/o
Contamination inter-échantillons
La contamination inter-échantillons peut être évaluée en utilisant le mode de test de contamination
inter-échantillons de l’instrument selon CLSI H26-A231. Trois exemplaires de sang associés à des
valeurs d’analyse élevées sont suivis de trois exemplaires de diluant. Une contamination interéchantillons inférieure ou égale à 1,00 % pour NGB, NGR, HB, PLT, et le différentiel, lorsque la
contamination inter-échantillons NGB se trouve dans la limite définie, est jugée acceptable. Voir
Exécution d’un test de contamination inter-échantillons dans le CHAPITRE 11, Assurance qualité.
Limites des valeurs résiduelles
REMARQUE En raison de la technologie utilisée, la valeur résiduelle DIFF est évaluée par la valeur résiduelle
NGB. Si la valeur résiduelle NGB se trouve dans la limite définie, la mesure FIFF est jugée acceptable.
Tableau 1.15 Limites des valeurs résiduelles
Paramètre
Unités
Limites des valeurs résiduelles
NGB et Diff
x103 cellules/μL
≤ 0,20
NGR
x106 cellules/μL
≤ 0,03
HB
g/dL
≤ 0,10
PLT
x103 cellules/μL
≤ 7,0
1-24
Réf. B95008AA
Présentation du système
Performances
Débit
Le débit est de 60 échantillons par heure pour le traitement Tube ouvert et de 55 échantillons pour
le traitement Tube fermé.
Intervalle de référence
Une étude sur les intervalles de référence chez les adultes a été réalisée pour évaluer les intervalles
de référence pour le DxH 520. Des échantillons de sang total ont été collectés auprès d’au moins
240 donneurs adultes apparemment en bonne santé, âgés de 22 à 65 ans (hommes et femmes). Les
donneurs ont été sélectionnés conformément à CLSI EP28-A3c24. Ces intervalles sont utilisés comme
les limites de l’intervalle de référence pour les adultes par défaut. Les intervalles pour la population
de patients de votre laboratoire peuvent être différents.
Ces intervalles de référence sont appelés plages de référence sur les écrans de l’instrument.
Tableau 1.16 Intervalles de référence du sang total — Tous les échantillons
Paramètre
Unités
Tous les échantillons
Moyenne
Intervalle de confiance à Intervalle de confiance à
95 %
95 %
NGB
x103 cellules/μL
6,53
3,71
10,67
NGR
x106 cellules/μL
4,65
3,87
5,68
HB
g/dL
14,09
12,00
16,75
HCT
%
41,3
35,1
48,7
VMC
fL
88,9
78,4
97,6
TCMH
pg
30,4
26,5
33,5
CCMH
g/dL
34,1
32,9
35,4
RDW
%
13,9
12,7
15,6
RDW-SD
fL
43,9
38,9
49,0
PLT
x103 cellules/μL
250,1
150,5
366,8
VMP
fL
8,86
7,42
10,77
LY
%
31,98
18,94
46,71
MO
%
7,87
4,88
12,81
NE
%
57,06
40,62
71,65
EO
%
2,83
0,74
6,73
BA
%
0,25
0,05
0,48
Nb_LY
x103 cellules/μL
2,05
1,15
3,52
Nb_MO
x103 cellules/μL
0,51
0,25
0,99
Nb_NE
x103 cellules/μL
3,77
1,85
6,72
Nb_EO
x103 cellules/μL
0,18
0,04
0,48
Nb_BA
x103 cellules/μL
0,02
0,00
0,03
Réf. B95008AA
1-25
1
Présentation du système
Performances
Tableau 1.17 Intervalles de référence du sang total — Hommes
Paramètre
Unités
Homme
Moyenne
Intervalle de confiance à Intervalle de confiance à
95 %
95 %
NGB
x103 cellules/μL
6,29
3,53
9,52
NGR
x106 cellules/μL
4,98
4,33
5,72
HB
g/dL
14,99
12,55
16,99
HCT
%
43,7
38,3
49,3
VMC
fL
88,0
78,3
95,5
TCMH
pg
30,2
25,9
33,2
CCMH
g/dL
34,3
33,0
35,3
RDW
%
13,9
12,9
15,5
RDW-SD
fL
43,4
39,0
48,3
PLT
x103 cellules/μL
232,1
146,5
351,5
VMP
fL
8,76
7,42
10,65
LY
%
31,63
20,23
43,53
MO
%
8,37
5,23
13,22
NE
%
56,39
40,62
70,51
EO
%
3,34
0,84
7,67
BA
%
0,26
0,11
0,53
Nb_LY
x103 cellules/μL
1,95
1,15
3,13
Nb_MO
x103 cellules/μL
0,53
0,25
1,06
Nb_NE
x103 cellules/μL
3,59
1,85
5,94
Nb_EO
x103 cellules/μL
0,21
0,05
0,50
Nb_BA
x103 cellules/μL
0,02
0,01
0,04
Tableau 1.18 Intervalles de référence du sang total — Femmes
Paramètre
Unités
Femme
Moyenne
Intervalle de confiance à Intervalle de confiance à
95 %
95 %
NGB
x103 cellules/μL
6,73
3,77
11,03
NGR
x106 cellules/μL
4,39
3,83
5,06
HB
g/dL
13,35
11,59
15,11
HCT
%
39,3
34,6
44,1
VMC
fL
89,7
80,0
98,0
TCMH
pg
30,5
26,6
33,5
1-26
Réf. B95008AA
Présentation du système
Performances
Tableau 1.18 Intervalles de référence du sang total — Femmes (Suite)
Paramètre
Unités
Femme
Moyenne
Intervalle de confiance à Intervalle de confiance à
95 %
95 %
CCMH
g/dL
34,0
32,9
35,4
RDW
%
13,9
12,6
15,6
RDW-SD
fL
44,3
38,9
50,6
PLT
x103 cellules/μL
264,8
169,1
368,3
VMP
fL
8,93
7,45
10,84
LY
%
32,27
18,51
48,98
MO
%
7,46
4,72
11,35
NE
%
57,62
41,35
72,27
EO
%
2,42
0,71
6,09
BA
%
0,24
0,05
0,47
Nb_LY
x103 cellules/μL
2,14
1,16
3,78
Nb_MO
x103 cellules/μL
0,49
0,28
0,83
Nb_NE
x103 cellules/μL
3,92
2,03
7,67
Nb_EO
x103 cellules/μL
0,16
0,04
0,42
Nb_BA
x103 cellules/μL
0,02
0,00
0,03
Stabilité des échantillons et stockage — Sang total
Les échantillons conservés à ≤ 19 °C (66 °F) pendant plus de deux heures peuvent générer davantage
de messages d’interférence cellulaire.
La stabilité des échantillons peut être mesurée en comparant la moyenne de plusieurs échantillons
analysés dans les deux heures et à 24 heures à une température comprise entre 18 et 26 °C (64 et
79 °F). Pour une température de réfrigération comprise entre 2 et 8 °C (35,6 et 46,4 °F), les
échantillons peuvent être analysés dans les 8 heures pour NGB et les paramètres différentiels, et
dans les 24 heures pour les paramètres restants. Les résultats moyens doivent être compris dans la
différence ou la différence en pourcentage, en prenant en compte la valeur la plus élevée. Voir le
Tableau 1.19, Stabilité des échantillons et stockage.
Les échantillons conservés à des températures de réfrigération sont sortis, mélangés par inversion
20 fois, laissés à température ambiante pendant 30 minutes, puis remélangés par inversion 20 fois
avant d’être analysés.
IMPORTANT Beckman Coulter recommande d’analyser les échantillons de sang total réfrigérés et non
réfrigérés dans les huit heures.
Réf. B95008AA
1-27
1
Présentation du système
Performances
Tableau 1.19 Stabilité des échantillons et stockage
Paramètre
Limites
Température ambiante
contrôlée
18 à 26 °C (64 à 79 °F)
Température de
réfrigération
2 à 8 °C (35,6 à 46,4 °F)
Heures
Heures
NGB (x103 cellules/uL)
± 0,50 ou ± 10,00 %
24
8
NGR (x106 cellules/uL)
± 0,07 ou ± 3,00 %
24
24
HB (g/dL)
± 0,30 ou ± 2,00 %
24
24
HCT (%)
± 1,1 ou ± 5,0 %
24
24
VMC (fL)
± 2,5 ou ± 3,0 %
24
24
TCMH (pg)
± 0,5 ou ± 6,0 %
24
24
CCMH (g/dL)
± 0,6 ou ± 6,0 %
24
24
RDW (%)
± 1,5 ou ± 10,0 %
24
24
RDW-SD (fL)
± 6,0 ou ± 15,0 %
24
24
PLT (x103 cellules/uL)
± 10,0 ou ± 7,0 %
24
24
VMP (fL)
± 1,00 ou ± 10,00 %
24
24
LY (%)
± 5,00 ou ± 15,00 %
24
8
MO (%)
± 3,00 ou ± 10,00 %
24
8
NE (%)
± 5,00 ou ± 12,00 %
24
8
EO (%)
± 1,50 ou ± 10,00 %
24
8
BA (%)
± 1,00
24
8
Nb_LY (x103 cellules/uL)
± 0,35 ou ± 25,00 %
24
8
Nb_MO (x103 cellules/uL)
± 0,20 ou ± 10,00 %
24
8
Nb_NE (x103 cellules/uL)
± 0,35 ou ± 20,00 %
24
8
Nb_EO (x103 cellules/uL)
± 0,50 ou ± 10,00 %
24
8
Nb_BA (x103 cellules/uL)
± 1,00
24
8
Stabilité des échantillons et stockage — Sang total prédilué
Les échantillons prédilués doivent être analysés dans les 15 minutes suivant la préparation. Le sang
total et le diluant doivent être à température ambiante avant de préparer la dilution. Les résultats
des échantillons prédilués doivent concorder avec les résultats des échantillons de sang total
comme le montre le Tableau 1.11, Spécifications de comparaison des méthodes — Sang total par
rapport à sang prédilué.
1-28
Réf. B95008AA
Présentation du système
Performances
Sensibilité et spécificité cliniques
La sensibilité et la spécificité cliniques des performances en génération d’indicateurs du différentiel
NGB peuvent être influencées par des facteurs liés à la technologie de l’instrument, la fréquence
cellulaire, l’incertitude dans la détermination de la référence d’un positif et la population
d’échantillon évaluée.
Beckman Coulter recommande d’effectuer des études de sensibilité et de spécificité à l’aide de votre
population d’échantillons et des paramètres de votre laboratoire. Voir CLSI H20-A230.
Limites
ATTENTION
Risque de résultats erronés. Il est possible que la présence d’une cellule
d’événement rare ne déclenche pas de message de suspicion. Beckman Coulter
recommande une revue conformément au protocole de votre laboratoire.
Une substance interférente est décrite comme un composant de l’échantillon, autre que la
substance testée, qui provoque un écart dans la concentration mesurée pour la substance testée.33
Tableau 1.20 Limites
Paramètre
limite
Tous les spécimens Des résultats erronés peuvent se produire :
• Si le spécimen n’est pas correctement collecté, conservé ou transporté.
Beckman Coulter recommande de suivre les procédures CLSI GP 44-A427 ou des
procédures équivalentes pour garantir la collecte, le stockage et le transport
appropriés des spécimens. Respectez toujours les recommandations du fabricant
lorsque vous utilisez des dispositifs de micro-prélèvement pour la collecte des
spécimens capillaires.
• Si le spécimen contient des caillots. Utilisez toujours de bonnes pratiques de
laboratoire pour l’inspection des spécimens à la recherche de caillots et pour la
vérification des résultats.
• Si le spécimen n’est pas correctement mélangé. Utilisez toujours de bonnes
pratiques de laboratoire pour vous assurer que les spécimens sont mélangés
correctement.
• Les algorithmes du système identifient les chevauchements de population qui
nécessiteraient l’examen des résultats et qui sont indiqués par des indicateurs et
des messages spécifiques. Voir le Tableau 6.2, Codes dans le CHAPITRE 6,
Consultation résultats.
• Le tableau suivant représente les informations obtenues lors des essais de
validation. D’autres restrictions peuvent exister.36, 37
Réf. B95008AA
NGB
NGR non lysés, NGRN, cryoglobuline, cryofibrinogène, agrégats PLT, PLT géantes et
globules blancs agglutinés37
Diff #
Voir NGB
1-29
1
Présentation du système
Performances
Tableau 1.20 Limites (Suite)
Paramètre
limite
NGR
Globules rouges agglutinés, NGR non lysés et NGB élevés
Si l’hémolyse apparaît in vivo, le NGB de l’instrument peut être repéré comme bas,
reflétant ainsi les cellules circulant réellement. Cependant, si l’hémolyse apparaît in
vitro, le spécimen peut donner des résultats NGB erronément bas. Les numérations
de cellules dues à une hémolyse in vitro ne représentent pas le nombre de globules
rouges en circulation.37
1-30
HB
Lipides > 62,5 mg/dL (lipémie)37
HCT
Voir VMC
VMC
Voir NGR37
TCMH
Voir HB et NGR37
CCMH
Voir HB et VMC37
RDW, RDW-SD
Voir NGR37
PLT
Plaquettes géantes, agrégats plaquettaires, NGR microcytaire, cryoglobuline et
fragments de globules rouges ou blancs 36
VMP
Voir PLT
Réf. B95008AA
CHAPITRE 2
Principes de fonctionnement
Historique de la méthode
Ce chapitre comprend des informations sur l’historique du principe Coulter, de la méthode Coulter,
et comment ils se rapportent à cet instrument.
Historique du principe Coulter
W.H. Coulter (1956) a décrit le Principe Coulter1 comme suit :
« On fait passer une suspension de cellules sanguines à travers (sic) une petite ouverture en même
temps qu’un courant électrique. Le passage des cellules sanguines à travers l’ouverture introduit
une modification de l’impédance dans l’ouverture, déterminée par la taille de la cellule. Le système
compte les cellules et donne une distribution de leur taille. Le nombre de cellules comptées par
échantillon est environ 100 fois plus important que dans la numération par microscope habituelle,
ce qui réduit l’erreur statistique d’un facteur d’environ 10 fois. »
Cette amélioration considérable de la précision par rapport aux méthodes antérieures a permis
d’établir que la numération des érythrocytes était un indicateur sensible de la dyscrasie
érythropoïétique, particulièrement lorsqu’elle est associée aux mesures de l’hématocrite et de
l’hémoglobine.2
L’analyseur COULTER COUNTER Model S a été le premier instrument à automatiser des mesures
simultanées de paramètres multiples dans le sang. Brittin et al., Gottmann et Hamilton et Davidson
ont étudié les performances et la valeur clinique du Model S.3, 4, 5
Des perfectionnements apportés à l’analyseur COULTER COUNTER afin d’obtenir des données
exactes de distribution de la taille (volume) ont conduit à un regain d’intérêt pathologique dans la
distribution de la taille des érythrocytes, intérêt relancé tout d’abord par Price-Jones.6, 7
La méthode Coulter de numération et de calibration offrait entre autres avantages la possibilité de
dériver une mesure exacte de l’hématocrite par addition des amplitudes volumétriques des
érythrocytes. England et al. ont avancé l’hypothèse que les mesures électroniques de l’hématocrite
n’intégraient pas l’erreur plasma intercellulaire des mesures d’hématocrite centrifugé.8
Bull et al. ont décrit l’utilisation d’un analyseur COULTER COUNTER pour la numération des
thrombocytes.9 Cette méthode, aussi utile était-elle, dépendait de la préparation de plasma riche en
thrombocytes pour éviter de compter les érythrocytes comme des thrombocytes. Mundschenk et
al. et Schulz et Thom ont examiné la possibilité de compter les thrombocytes en présence
d’érythrocytes et de les classifier par taille.10, 11 Des perfectionnements électroniques apportés au
Model S-PLUS ont permis d’améliorer la précision de la méthode hydrodynamique.
Von Behrens et Paulus ont aussi cité la possibilité de compter les thrombocytes avec la méthode
Coulter.12, 13
Réf. B95008AA
2-1
Principes de fonctionnement
Historique de la méthode
Principe Coulter
Le principe Coulter compte exactement les cellules et les calibre par la détection et la mesure des
modifications de la résistance électrique lorsqu’une particule (une cellule) contenue dans un liquide
conducteur passe à travers une petite ouverture, comme illustré sur la figure suivante.
Figure 2.1 Principe Coulter
Nombre
Description
Nombre
Description
1
Courant d’ouverture
6
Tube à ouverture
2
Vide
7
Ouverture
3
Électrode interne
8
Bécher à échantillon
4
Suspension de cellules sanguines
9
Électrode externe
5
Détail de l’ouverture
Chaque cellule en suspension dans un liquide conducteur (le diluant) se conduit comme un
isolateur. Lors du passage de chaque cellule à travers l’ouverture, elle augmente momentanément
la résistance du passage électrique entre les électrodes submergées des deux côtés de l’ouverture.
Cela produit une impulsion électronique mesurable. Pour la numération, le vide utilisé pour tirer la
suspension diluée de cellules à travers l’ouverture doit présenter un volume régulé.14, 15, 16, 17 Le
nombre d’impulsions indique le nombre de particules, tandis que sa taille est proportionnelle au
volume de la cellule.
Analyse NFS
En hématologie, la NFS est l’analyse fondamentale qui évalue les trois principaux composants
cellulaires : les globules blancs, les globules rouges et les plaquettes sanguines. L’analyse NFS du
DxH 520 est basée sur le Principe Coulter.
2-2
Réf. B95008AA
Principes de fonctionnement
Historique de la méthode
Préparation des spécimens
L’opérateur insère un tube fermé de sang dans le support de tube et sélectionne l’icône Exéc. sur
l’écran. La porte échantillon se ferme et l’instrument commence le cycle. La seringue d’aspiration
perce le bouchon pour l’évacuation. La sonde se déplace, est rincée et puis perce une seconde fois
pour aspirer 16,7 μL d’échantillon dans la sonde échantillon.
La sonde échantillon se rétracte et les surfaces externes sont rincées avec du diluant pour retirer
l’excès de sang. La sonde échantillon se déplace vers le bac NGB. 2,7 μL de sang sont éjectés et la
surface externe de la sonde échantillon est de nouveau rincée.
Le bac NGB est vidangé vers le réservoir à déchets et 1,25 mL de diluant sont distribués dans le bac
NGB nettoyé et vidé via le raccord d’entrée de diluant de bac. 0,5 mL de diluant supplémentaire sont
distribués à travers la sonde échantillon poussant les 14 μL d’échantillon dans le bac et créant la
dilution NGB initiale de 1:125 (Sang:Diluant).
La sonde échantillon aspire 306 μL de la dilution NGB. Cet échantillon aspiré est transporté jusqu’à
la valve où 25 μL sont segmentés pour être utilisé pour la dilution NGR.
Dans le même temps, 0,66 mL de Lyse sont distribués dans le bac NGB pour la dilution NGB finale de
1:182. La dilution finale est mélangée à l’air en vue de l’analyse. L’agent de lyse détruit les
membranes NGR pour libérer l’hémoglobine contenue tout en conservant les globules blancs. La
dilution NGB est utilisée pour la numération et la différentiation des NGB et la mesure de
l’hémoglobine.
Pour la dilution NGR, les 25 μL segmentés à partir de la dilution NGB initiale sont distribués dans un
bac NGR nettoyé et vidé avec 2,0 mL de diluant. Cela crée la dilution NGR finale de 1:10125. La
dilution est mélangée et préparée pour la numération et la détermination de la taille des globules
rouges et des plaquettes.
Après la numération, les bacs sont vidangés et rincés. La sonde est rincée et l’instrument est prêt
pour un nouvel échantillon. La dilution NGB initiale est mélangée à l’aide de bulles d’air pour assurer
une distribution homogène de l’échantillon.
Numération/Détermination de la taille
Le DxH 520 effectue une numération initiale des paramètres NFS (NGR/PLT/NGB) pendant
3 secondes, puis effectue une seconde mesure de NFS + DIFF pendant 7 secondes. Les numérations
NGR, NGB et PLT sont déterminées à l’aide du Principe Coulter pour une numération et une
détermination de la taille des cellules efficaces. Le différentiel NGB est déterminé en utilisant une
combinaison des données d’impédance NGB et des données de mesure optique directes obtenues à
l’aide d’un voyant lumineux bleu centré à travers l’orifice NGB. Cet instrument a deux périodes de
numération (trois secondes et sept secondes).
Correction de coïncidence
Il arrive que plus d’une cellule passe à travers l’ouverture à un moment donné. Lorsque les cellules
coïncident, une seule impulsion combinée est comptée. Comme la fréquence de coïncidence est
proportionnelle à la numération réelle, le système corrige automatiquement la coïncidence dans les
résultats.
Réf. B95008AA
2-3
2
Principes de fonctionnement
Historique de la méthode
Mise à l’échelle
La mise à l’échelle tient compte de la calibration et du format communicable.
Rejet et moyenne
Le système rejette des données pour NGB, NGR, VMC, RDW, PLT et VMP pour éviter les erreurs de
données dues à des valeurs statistiques hors normes, des obstructions qui pourraient bloquer un
orifice, et pour vérifier que ces données sont dans la plage statistique spécifique. Les données
rejetées sont moyennées pour le rapport.
Calcul et arrondissement des résultats
Les valeurs sont envoyées au module de calcul du logiciel. Les résultats sont arrondis en fonction du
nombre de chiffres pouvant être affichés et imprimés, à l’aide d’une logique d’arrondissement
mathématique traditionnelle.
Hémoglobinométrie
L’hémoglobine est convertie en oxyhémoglobine stable par le réactif de Lyse. L’absorbance du
pigment de la solution est proportionnelle à la concentration en hémoglobine de l’échantillon.
L’hémoglobine est mesurée en utilisant une source lumineuse LED à 545 nm.
Histogrammes
Les histogrammes montrent la taille (axe des X) en fonction de la fréquence cellulaire relative (axe
des Y). Les histogrammes fournissent des informations sur la fréquence des globules rouges et des
plaquettes et offrent un moyen de comparer les tailles des cellules d’un patient avec les populations
normales.
IMPORTANT Ils ne montrent que le nombre relatif de cellules pour chaque plage de cellules, et non le
nombre réel. N’estimez pas le nombre de cellules à partir des histogrammes.
La sélection d’un histogramme affiche une vue plus grande dudit histogramme. Chaque
histogramme est gris avec un fond blanc. Chaque population cellulaire est de la couleur suivante :
Les NGR sont en rouge clair et les PLT en vert clair.
Figure 2.2 Population de globules rouges
2-4
Réf. B95008AA
Principes de fonctionnement
Historique de la méthode
Figure 2.3 Population de cellules PLT
Différentiel NGB et scattergramme différentiel (Diff)
Les données du différentiel NGB sont affichées dans le graphique du différentiel.
Les informations numériques obtenues à partir de l’analyse NGB sont traitées par l’algorithme du
différentiel NGB. Ces informations sont représentées sur un scattergramme 2D avec le volume
cellulaire représenté sur l’axe des Y et la perte de lumière axiale (ALL) représentée sur l’axe des X.
Le DxH 520 utilise des mesures simultanées de volume et de perte de lumière axiale dans l’orifice
NGB pour compter et déterminer la taille des lymphocytes, des monocytes, des neutrophiles, des
éosinophiles et des basophiles. La DEL dans l’ensemble projette une lumière bleue à travers l’orifice
sur un capteur qui détecte la perte de lumière axiale lorsque les cellules qui passent interrompent
le chemin optique. La quantité de lumière reçue par le capteur varie selon la structure de la cellule.
L’algorithme du DxH 520 génère le différentiel NGB, les indicateurs et les messages. Un
scattergramme à deux dimensions est créé avec le volume sur l’axe des Y et la perte de lumière
axiale sur l’axe des X. Les données du différentiel NGB sont affichées dans le graphique de
différentiel. Les sous-populations NGB sont identifiées par couleur et intensité (concentration) sur
le graphique diff. comme suit :
Figure 2.4 Scattergramme DIFF
Réf. B95008AA
Nombre
Sous-population NGB
Couleur
1
Lymphocyte
Bleu
2
Monocyte
Vert
3
Neutrophile
Violet
4
Éosinophile
Orange
2-5
2
Principes de fonctionnement
Mesure, dérivation et calcul des paramètres
Nombre
Sous-population NGB
Couleur
5
Basophile
Blanc
6
Non globule blanc
Bleu-vert ou gris
Voir Zones d’indicateur du scattergramme différentiel dans le CHAPITRE 6, Consultation résultats.
Mesure, dérivation et calcul des paramètres
Tableau 2.1 Mesure, dérivation et calcul des paramètres
Paramètre (format US-1)
Méthode
Description (en utilisant les unités de résultats US-1)
NGB
Principe Coulter
Numération des globules blancs ou numération
leucocytaire
Mesuré directement, multiplié par le facteur de
calibration
NGR
Principe Coulter
Numération des globules rouges ou numération des
érythrocytes
Mesuré directement, multiplié par le facteur de
calibration
HB
Mesure photométrique
Hémoglobine ou concentration en hémoglobine
• Transmission de la lumière à 545 nm à travers une
solution lysée de NGB dans le bac NGB, comparée à
la transmission de la même lumière à travers un
réactif vide. Le système convertit ce rapport en
valeur de l’hémoglobine à l’aide d’un facteur de
calibration.
• Le poids (masse) de HB est déterminé à partir du
degré d’absorbance trouvé dans la transmission du
courant photo exprimé en g/dL
HCT
Calculé
Hématocrite
• Le volume relatif d’érythrocytes dans le sang total
• Le HCT est calculé à l’aide de NGR et VMC
• HCT (%) = (NGR X VMC) / 10
VMC
TCMH
Dérivé de
l’histogramme NGR
Volume cellulaire moyen
Calculé
Taux cellulaire moyen en hémoglobine
• Le volume moyen des érythrocytes dérivé de
l’histogramme NGR, multiplié par un facteur
d’étalonnage.
• Exprimé en fL
• Le poids de HB dans l’érythrocyte moyen
• TCMH (pg) = (HB/NGR) x 10
2-6
Réf. B95008AA
Principes de fonctionnement
Mesure, dérivation et calcul des paramètres
Tableau 2.1 Mesure, dérivation et calcul des paramètres (Suite)
Paramètre (format US-1)
Méthode
Description (en utilisant les unités de résultats US-1)
CCMH
Calculé
Concentration cellulaire moyenne en hémoglobine
• Le poids moyen de HB dans une dilution mesurée
• CCMH (g/dL) = (HB/HCT) x 100
RDW
RDW-SD
PLT
Dérivé de
l’histogramme NGR
Indice de distribution des globules rouges
Dérivé de
l’histogramme NGR
Indice de distribution des globules rouges — SD
Principe Coulter
Numération des plaquettes sanguines ou numération
des thrombocytes
• La distribution en volume de la population
d’érythrocytes dérivée de l’histogramme NGR
• Exprimé en coefficient de variation (%)
• La distribution en volume de la population
d’érythrocytes dérivée de l’histogramme NGR
• Exprimé sous la forme d’un écart-type en fL
• Le nombre de plaquettes dérivé de l’histogramme
PLT, multiplié par un facteur de calibration
VMP
LY
Dérivé de
l’histogramme PLT
Volume moyen de plaquettes sanguines
Optique/impédance
Pourcentage de lymphocytes
• Le volume moyen des plaquettes dérivé de
l’histogramme PLT, multiplié par un facteur
d’étalonnage.
• Exprimé en fL
• [événements LY/(événements NE+LY+MO+EO+BA)]
x 100
• Exprimé en pourcentage (%)
MO
Optique/impédance
Pourcentage de monocytes
• [événements MO/(événements
NE+LY+MO+EO+BA)] x 100
• Exprimé en pourcentage (%)
NE
Optique/impédance
Pourcentage de neutrophiles
• [événements NE/(événements
NE+LY+MO+EO+BA)] x 100
• Exprimé en pourcentage (%)
EO
Optique/impédance
Pourcentage d’éosinophiles
• [événements EO/(événements
NE+LY+MO+EO+BA)] x 100
• Exprimé en pourcentage (%)
BA
Optique/impédance
Pourcentage de basophiles
• [événements BA/(événements
NE+LY+MO+EO+BA)] x 100
• Exprimé en pourcentage (%)
Réf. B95008AA
2-7
2
Principes de fonctionnement
Mesure, dérivation et calcul des paramètres
Tableau 2.1 Mesure, dérivation et calcul des paramètres (Suite)
Paramètre (format US-1)
Méthode
Description (en utilisant les unités de résultats US-1)
Nb_LY
Calculé
Nombre absolu de lymphocytes
Nb_LY (103/μL) = (LY/100) x NGB
Nb_MO
Calculé
Nombre absolu de monocytes
Nb_MO (103/μL) = (MO/100) x NGB
Nb_NE
Calculé
Nombre absolu de neutrophiles
Nb_NE (103/μL) = (NE/100) x NGB
Nb_EO
Calculé
Nombre absolu d’éosinophiles
Nb_EO (103/μL) = (EO/100) x NGB
Nb_BA
Calculé
Nombre absolu de basophiles
Nb_BA (103/μL) = (BA/100) x NGB
2-8
Réf. B95008AA
CHAPITRE 3
Démarrage et contrôles journaliers
Démarrage
Utiliser votre ID opérateur et votre mot de passe pour vous connecter au système. Si vous avez
oublié votre mot de passe, contactez votre administrateur.
Connexion/déconnexion
1
Si l’instrument n’est pas sous tension, appuyez sur le bouton d’alimentation situé à l’avant de
l’instrument. Le bouton devient rouge et l’écran de connexion s’affiche après environ
30 secondes. Le voyant devient vert lorsque l’instrument est prêt.
2
Sur l’écran initial du DxH 520, sélectionnez le champ ID opérateur. Lorsque le clavier s’affiche à
l’écran, saisissez votre ID opérateur (deux caractères minimum, huit caractères maximum).
3
Dans le champ Mot de passe, saisissez un mot de passe alphanumérique à six chiffres et
sélectionnez une langue, si besoin, dans la liste déroulante Langue.
REMARQUE Le système conserve par défaut la dernière langue sélectionnée.
Réf. B95008AA
3-1
Démarrage et contrôles journaliers
Démarrage
4
Sélectionnez
5
Si le système détermine que le réservoir à déchets est plein, un message s’affiche. Sélectionnez
.
pour accuser réception du message. Pour vider le réservoirs à déchets et le remplacer,
voir Configuration ou remplacement du rejet des déchets dans le CHAPITRE 9, Configuration.
REMARQUE Lors de la première configuration de l’instrument, le récipient à déchets est configuré sur
plein (100 %) par défaut. Voir Configuration ou remplacement du rejet des déchets dans le
CHAPITRE 9, Configuration pour configurer l’élimination des déchets.
6
Si le système détermine que les réactifs doivent être remplacés, un message s’affiche.
Sélectionnez
pour accuser réception du message. Pour remplacer les réactifs, voir
Configuration ou remplacement des réactifs dans le CHAPITRE 9, Configuration.
7
Exécutez les contrôles journaliers. Voir Exécution des contrôles journaliers.
8
Pour vous déconnecter, sélectionnez
.
Utilisation du scanner de codes-barres
Utiliser le scanner de codes-barres pour :
• Lire les étiquettes des emballages pour la configuration des réactifs. Voir Configuration ou
remplacement des réactifs dans le CHAPITRE 9, Configuration.
• Lire les feuilles de test et les étiquettes des contrôles et calibrateurs. Voir Configuration et
édition des contrôles dans le CHAPITRE 9, Configuration.
• Lire les informations sur le patient sur les étiquettes des tubes de spécimen. Voir Utilisation du
scanner de codes-barres portatif dans le CHAPITRE 5, Analyse des échantillons.
Le scanner de codes-barres est déjà programmé pour lire vos étiquettes. Voir Scanner de codesbarres dans le CHAPITRE 1, Présentation du système pour connaître les symbologies de codes-barres
prises en charge.
ATTENTION
Risque de mauvaise identification. Beckman Coulter vous recommande d’activer
la somme de contrôle pour les étiquettes à codes-barres.
3-2
Réf. B95008AA
Démarrage et contrôles journaliers
Contrôles journaliers
Contrôles journaliers
L’exécution des contrôles journaliers permet de s’assurer que l’instrument fonctionne
correctement et qu’il est prêt à traiter les échantillons. Les contrôles journaliers doivent être
exécutées toutes les 24 heures, soit après un arrêt du système ou au début de la journée, avant de
commencer à traiter les spécimens.
Configurez les contrôles journaliers pour qu’ils s’exécutent aux jours et heures indiquées. Voir
Configuration automatique du démarrage et des contrôles journaliers, et la fréquence des cycles
d’auto-nettoyage. dans le CHAPITRE 9, Configuration pour plus d’informations.
Vous pouvez consulter les journaux des contrôles journaliers contenant des informations sur les
événements. Voir Affichage de l’historique des contrôles journaliers pour plus d’informations.
Exécution des contrôles journaliers
1
Dans le menu principal, sélectionnez
2
Sur l’écran Contrôles Jour., sélectionnez
3
Sélectionnez
.
.
à l’invite à exécuter les contrôles journaliers.
REMARQUE Le coin en bas à gauche sur l’écran affiche Contrôles Jour. et le bouton d’alimentation est
rouge lorsque les contrôles journaliers sont en cours d’exécution.
4
Attendez que les contrôles journaliers soient terminés.
5
Vérifiez que tous les indicateurs d’état affichent Succès et vérifiez les analyses de réactifs
restants. Si les analyses de réactifs restantes sont inférieures à 10, l’arrière-plan est jaune. S’il
ne reste aucune analyse, l’arrière-plan est rouge. Remplacez le réactif si nécessaire.
Si Échec s’affiche, sélectionnez une des options dans la fenêtre d’avertissement, puis
sélectionnez
pour confirmer votre sélection. Si les contrôles journaliers échouent, voir
Dépannage général dans le CHAPITRE 10, Dépannage.
Réf. B95008AA
3-3
3
Démarrage et contrôles journaliers
Contrôles journaliers
Affichage de l’historique des contrôles journaliers
Le journal des contrôles journaliers peut conserver jusqu’à 50 résultats de contrôles journaliers.
Lorsque le journal est plein, les données de contrôles journaliers les plus anciennes sont
automatiquement supprimées. Le journal est :
• Utile pour résoudre les problèmes relatifs à l’instrument
• Disponible à des fins de visualisation, d’impression et d’exportation
1
Sélectionnez
>
pour consulter les journaux des contrôles journaliers.
Impression des contrôles journaliers
Si l’impression automatique a été configurée, le rapport des contrôles journaliers est
automatiquement imprimé à la fin du processus des contrôles journaliers. Voir Configuration des
options de l’imprimante au CHAPITRE 9, Configuration. Pour imprimer manuellement :
1
Dans le menu principal, sélectionnez
2
Sélectionnez
3
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez Contrôles journaliers courants ou Tous les
contrôles journaliers.
4
Sélectionnez
>
.
pour imprimer les résultats des contrôles journaliers.
pour confirmer votre sélection.
Exportation des contrôles journaliers
3-4
1
Insérez une clé USB dans le port USB à l’avant de l’instrument.
2
Sélectionnez
>
>
pour exporter tous les fichiers vers la clé USB.
Réf. B95008AA
Démarrage et contrôles journaliers
Contrôles journaliers
3
Sélectionnez
4
Retirez la clé USB du port USB.
à l’invite à exporter les fichiers.
Exécuter un comptage résiduel
Les contrôles journaliers incluent des comptages résiduels. Un comptage résiduel peut également
être effectué indépendamment des contrôles journaliers.
1
Dans le menu principal, sélectionnez
2
Sélectionnez
3
Sélectionnez
à l’invite à effectuer un comptage résiduel. Le système vérifie les valeurs
par rapport à des limites définies. Voir Limites des valeurs résiduelles au CHAPITRE 1,
Présentation du système.
.
.
REMARQUE Le coin en bas à gauche sur l’écran affiche Comptage résiduel et le bouton d’alimentation
est rouge pendant le cycle.
4
Attendez la fin du comptage résiduel et vérifiez que tous les indicateurs d’état affichent Succès.
Si le comptage résiduel échoue, voir Dépannage général au CHAPITRE 10, Dépannage. Si les
valeurs sont inadéquates, l’échec du bruit de fond est enregistré dans les journaux.
Réf. B95008AA
3-5
3
Démarrage et contrôles journaliers
Contrôles journaliers
3-6
Réf. B95008AA
CHAPITRE 4
Contrôle de qualité
Vue d’ensemble du contrôle de qualité
Le contrôle de qualité est le contrôle de routine des performances à l’aide de contrôles
commerciaux. Les contrôles présentent des caractéristiques connues lorsqu’ils sont analysés sur un
système donné et sont analysés périodiquement de la même manière que les spécimens de patient.
Les résultats des contrôles analysés sont comparés aux caractéristiques connues à l’aide de
méthodes statistiques. Cette comparaison permet de détecter les modifications des performances
du système. Si les modifications détectées sont importantes, vous pouvez prendre des mesures pour
améliorer les performances du système.
Le système DxH 520 permet d’utiliser plusieurs techniques de contrôle de qualité expliquées dans
les grandes lignes dans ce chapitre. Beckman Coulter recommande que les vérifications de contrôle
de qualité soient effectuées en utilisant des contrôles commerciaux selon les intervalles établis par
votre laboratoire. Lors de l’utilisation d’un contrôle commercial, consultez le mode d’emploi. Si vous
n’obtenez pas des valeurs de contrôle dans les limites attendues par votre laboratoire, ou s’il
apparaît des décalages ou des tendances inexpliqués dans une des méthodes de présentation, il faut
en rechercher les causes. Si les problèmes de contrôle ne peuvent pas être résolus, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Les résultats de patient obtenus entre la dernière analyse acceptable et une analyse de contrôle
inacceptable doivent être réévalués pour déterminer si les résultats du test patient ont été altérés.
Prenez des mesures correctrices, si nécessaire.
La surveillance du contrôle de qualité comprend des fonctions de notification et de récupération
continues au sein du système. Le suivi de l’état du matériel et du capteur de l’instrument par des
notifications d’événement est effectué via les icônes, les indicateurs et le journal d’événements. Les
événements seront pris en compte au fur et à mesure.
REMARQUE Pour plus d’informations sur les contrôles recommandés de Beckman Coulter, voir Contrôles et
calibrateurs dans le CHAPITRE 1, Présentation du système.
Principes du contrôle de qualité
L’objectif du contrôle de qualité est de surveiller différents aspects de la performance de
l’instrument. L’assurance qualité comprend l’entretien et la maintenance nécessaires, ainsi que
l’utilisation des contrôles et calibrateurs. La combinaison de ces méthodes garantit un contrôle
complet de la qualité ; elles doivent être appliquées ensemble ou séparément conformément aux
exigences de votre laboratoire et de son agrément.
Le contrôle de routine est également une méthode de contrôle de qualité importante.
Réf. B95008AA
4-1
Contrôle de qualité
Principes du contrôle de qualité
Contrôles journaliers
Les contrôles journaliers lancent une série de vérifications de contrôle de qualité qui détermineront
si le système DxH 520 fonctionne correctement. Vous pouvez passer en revue les résultats des
contrôles journaliers sur l’écran Contrôles journaliers. Pour plus d’informations sur l’exécution et
l’examen des contrôles journaliers, voir Contrôles journaliers dans le CHAPITRE 3, Démarrage et
contrôles journaliers.
Contrôles commerciaux
Analysez les contrôles commerciaux en fonction des besoins pour vérifier la performance du
système DxH 520. Voir Analyse des contrôles commerciaux pour plus d’informations sur l’exécution
des contrôles.
Contrôle de qualité étendu
Les règles de contrôle de qualité étendu sont dérivées des directives allemandes pour laboratoires
médicaux appelées en Allemagne Rili-BÄK. Les directives Rili-BÄK (Directives de la Chambre
fédérale des médecins) ont été publiées pour la première fois en 1987 puis amendées en 1990
et 1993. Ces directives couvrent la chimie clinique, l’immunochimie et d’autres tests, mais pas
l’hématologie. En 2003, les directives ont été étendues pour inclure l’hématologie, et mises à jour
en 2008.
Analyse XB
Dennis B. Dorsey, MD, a proposé en 1963 d’utiliser les indices relativement constants des globules
rouges pour suivre la performance des instruments d’hématologie.19 Brian Bull, MD, a amélioré la
technique appelée Analyse XB.20
L’analyse XB utilise une « moyenne mobile pondérée » des résultats de l’échantillon du patient car
Koepke et Protextor avaient déclaré que les matériaux de CQ « devraient idéalement être similaires
en structure et en réactivité aux constituants du patient analysés. Des échantillons sanguins
fraîchement prélevés chez le patient semblent donc être [le matériau de CQ] le mieux adapté. » 21
Bull explique que « L’analyseur (sic) est considéré être ’sous contrôle’ lorsque les moyennes VMC,
TCMH et CCMH déterminées sur une série de 20 patients à l’aide de l’algorithme XB sont à
maximum 3 % des indices moyens de la population. »20
Pour plus d’informations sur la configuration et l’activation de XB, voir Configuration de XB dans le
CHAPITRE 9, Configuration.
Analyse XM
L’analyse XM est une méthode de contrôle de qualité qui utilise une moyenne mobile à pondération
exponentielle (EWMA) de NFS et Diff. Elle les compare à des valeurs cibles connues pour surveiller
les performances de l’instrument. L’analyse XB a été la première forme d’analyse statistique à
moyenne mobile en hématologie.
Pour plus d’informations sur la configuration et l’activation de XM, voir Configuration de XM dans
le CHAPITRE 9, Configuration.
4-2
Réf. B95008AA
Contrôle de qualité
Contrôles
Programme d’assurance qualité interlaboratoire (IQAP)
Le Programme d’assurance qualité interlaboratoire (IQAP) est un programme Beckman Coulter à
votre disposition après inscription qui complète et améliore le contrôle de qualité de votre
laboratoire. IQAP vous permet principalement d’envoyer vos données de restitution du contrôle à
Beckman Coulter. En retour, vous recevez un rapport personnalisé qui résume vos résultats et les
compare aux résultats de votre groupe de pairs (pool). Voir Téléchargement vers IQAP.
Pour plus d’informations, consultez www.beckmancoulter.com/iqap ou contactez votre
représentant Beckman Coulter local.
Contrôles
Voir Configuration et édition des contrôles dans le CHAPITRE 9, Configuration pour plus
d’informations sur la configuration des contrôles, la configuration automatique et l’impression,
ainsi que la transmission.
Analyse des contrôles commerciaux
Le mode par défaut pour le système DxH 520 est de traiter les échantillons en mode Tube fermé. Le
contrôle de qualité peut aussi être traité en mode Tube ouvert. Voir Analyse d’échantillons de sang
total en mode Tube ouvert dans le CHAPITRE 5, Analyse des échantillons.
1
Préparez le contrôle conformément au mode d’emploi disponible sur
www.beckmancoulter.com.
2
Sélectionnez
pour afficher l’écran Analyse des échantillons — Résultats de patient.
La porte s’ouvre automatiquement.
REMARQUE La porte ne s’ouvre pas automatiquement si la Liste de travaux contient des demandes.
Accusez réception du message affiché pour ouvrir la porte.
3
Utilisez le scanner de codes-barres pour lire le code-barres du contrôle OU sélectionnez
, utilisez le clavier visuel pour saisir manuellement le numéro de lot du flacon de
contrôle dans le champ ID spécimen, et sélectionnez
informations saisies.
à l’invite pour confirmer les
REMARQUE Si vous avez configuré l’incrémentation automatique, le champ ID spécimen est
automatiquement renseigné.
Réf. B95008AA
4-3
4
Contrôle de qualité
Contrôles
4
Mélangez le contrôle conformément au mode d’emploi du contrôle.
5
Insérez complètement le contrôle dans le support de tubes et sélectionnez
se ferme automatiquement pour commencer l’analyse.
. La porte
IMPORTANT Si vous fermez manuellement la porte, aucun cycle n’est commencé. Pour ré-ouvrir la porte,
sélectionnez
.
6
Retirez le contrôle lorsque la porte s’ouvre et que le contrôle est terminé.
7
Conservez le contrôle conformément au mode d’emploi.
Si un contrôle est hors plage
Si un contrôle est en dehors de la plage configurée pour le test, le contrôle est considéré hors plage
et est indiqué par
. Les valeurs qui sont hors plage, sont signalées comme bas (L ; low) ou haut
(H ; high) sur l’écran Analyse des échantillons — Résultats de patient. Sur l’écran Contrôle de qualité
(visualisation des données), les valeurs hors plage sont mises en surbrillance en rouge et signalées
par L ou H.
Avant de repasser le contrôle :
4-4
1
Assurez-vous que le sang est correctement mélangé conformément au mode d’emploi.
2
Assurez-vous que les informations d’identification sont correctement saisies. Si vous utilisez un
scanner de codes-barres, vérifiez que les étiquettes de codes-barres sont propres et
correctement positionnées.
3
Assurez-vous que les informations de configuration pour les valeurs cibles et les intervalles de
confiance correspondent au tableau des valeurs cibles pour le contrôle ou aux valeurs établies
par votre laboratoire. Si ce n’est pas le cas, modifiez les informations du contrôle afin qu’elles y
correspondent.
4
Vérifiez qu’il n’y a pas d’erreur pendant le cycle.
Réf. B95008AA
Contrôle de qualité
Contrôles
5
Repassez le contrôle. Si le contrôle échoue de nouveau, essayer d’analyser un nouveau tube du
même niveau de contrôle (ou un autre niveau de contrôle, si souhaité).
6
Si l’échec de recouvrement du contrôle continue, contactez votre représentant
Beckman Coulter.
7
Pour accepter des résultats hors plage et retirer l’indicateur d’erreur, sélectionnez
>
pour accepter toutes les conditions CQ/EQC hors plage. Les résultats acceptés sont
affichés en bleu.
8
Pour retirer les analyses HORS PLAGE des données analysées, cochez la case Exclure.
Affichage des fichiers témoins
Pour afficher les fichiers témoins sur l’écran Contrôle de qualité (Visualisation des données), suivez
ces étapes. Pour afficher les détails de l’analyse du contrôle, voir Affichage des détails d’une analyse
de témoin.
Réf. B95008AA
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez le N° de lot dans la liste déroulante.
3
Révisez les informations à l’écran :
pour afficher l’écran Contrôle de qualité (Visualisation des données).
Champ
Description
N
Nombre d’analyses de contrôle incluses dans le fichier
Contrôle
Nom du contrôle
Fichier
Numéro de fichier pour le fichier de contrôle sélectionné, de 1 à 12
N° de lot
Numéro de lot du contrôle sélectionné
Date de
péremption
Date de péremption du fichier de contrôle sélectionné
Niveau
Niveau du matériel de contrôle pour le fichier sélectionné
(anormal bas, normal, anormal haut)
4-5
4
Contrôle de qualité
Contrôles
Champ
Description
Source
Type de contrôle (BEC ou autre)
N°
Numéro de l’analyse de contrôle (la plus récente est en haut de la liste)
Exclue
Une analyse, indiquée par un X, qui est exclue des calculs statistiques
ID op.
Opérateur qui est connecté lors de l’analyse du contrôle
Date/Heure
Date et heure d’analyse du contrôle
Paramètre
Paramètres de NGB à VMC et les autres paramètres affichés en faisant défiler l’écran
vers la droite. Les flèches gauche et droite permettent de basculer entre les
paramètres TCMH et différentiel. Les résultats qui excèdent l’intervalle de confiance
du contrôle (mis en surbrillance en rouge et contenant un H (valeur haute) ou un L
(valeur basse) en fonction d’une récupération de résultats).
Moyenne
Moyenne calculée des points inclus.
2SD
Écart type calculé des points inclus multiplié par 2
%CV
Coefficient de variation calculé des points inclus
REMARQUE Si le contrôle de qualité étendu est activé et que ses limites ont été
configurées, et si la valeur CV est supérieure à la limite d’erreur aléatoire, le CV
en % sera surligné en jaune pour ce paramètre si N > 2 et N < 15, ou en rouge
si N  15.
Cible
Cible attribuée du paramètre utilisée dans votre laboratoire au moment de l’analyse
du contrôle
Limite
Limite attendue du paramètre utilisée dans votre laboratoire au moment de l’analyse
du contrôle
Delta Diff
Différence entre la moyenne calculée et la cible attribuée du paramètre.
REMARQUE Si le contrôle de qualité étendu est activé et que ses limites ont été
configurées, et si le Delta Diff absolu est supérieur à la limite d’erreur
systématique, le Delta Diff sera surligné en jaune pour ce paramètre si N > 2 et
N < 15, ou en rouge si N  15.
RMSE
L’erreur quadratique moyenne s’affiche lorsque le contrôle de qualité étendu est
activé. La RMSE est une erreur de mesure unique. Si la valeur dépasse la limite de
l’erreur de mesure unique pour un paramètre, la valeur RMSE est surligné en jaune
pour ce paramètre si N > 2 et N < 15, ou en rouge si N  15.
Observations
Observations ajoutés pour l’analyse du contrôle sélectionnée
Opérateur
ID de l’opérateur connecté (affiché en bas de l’écran)
Date et Heure
Heure et date actuelles (affichées en bas de l’écran)
4
4-6
Sélectionnez l’icône applicable pour consulter ces informations ou pour effectuer une action :
Réf. B95008AA
Contrôle de qualité
Contrôles
Icône
Nom
Description
XB
Affiche l’écran Moyennes de la série XB
XM
Affiche l’écran Moyennes de la série XM
IQAP
Affiche l’écran Télécharger vers IQAP
AQ
Affiche le menu AQ
Accepter
CQ/EQC
Actif seulement quand CQ et/ou ECQ sont hors plage. Voir Si un contrôle
est hors plage.
Graphes
Affiche les graphiques CQ pour le fichier CQ sélectionné
Afficher
Affiche les résultats pour l’analyse de contrôle sélectionnée
Observations
Vous permet d’ajouter un commentaire pour les résultats du témoin
sélectionné
Supprimer
Supprime tous les résultats CQ dans le fichier témoin. Voir Suppression
des fichiers témoins.
Affichage des graphiques de fichier témoin
Réf. B95008AA
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez le N° de lot dans la liste déroulante.
3
Sélectionnez
.
.
4-7
4
Contrôle de qualité
Contrôles
4
Sélectionnez NFS ou Diff, et utilisez les flèches pour afficher les graphiques applicables.
5
Vérifiez que le bon numéro de lot est sélectionné et examinez les graphiques :
• Les graphiques des données de contrôle sont de type Levey-Jennings.
• Les données sont représentées en tant que valeur du résultat par rapport aux limites +/- du
paramètre.
• Les graphiques affichent la ligne de valeur cible en bleu, et les limites haute et basse en tant
que lignes rouges.
• Le point le plus récent est représenté tout à droite et est indiqué par une ligne verticale
(bleue).
• La ligne verticale n’est pas ancrée sur le graphique de Levey-Jennings étendu et peut être
déplacée pour visualiser les résultats du contrôle dans le fichier.
• Si les points de données sont en dehors des limites haute et basse, la valeur sur le graphique
est représentée en tant que triangle rouge plein.
• Si les résultats sont exclus, ils sont représentés en tant que cercles noirs vides.
• Si les résultats sont dans la plage attendue, ils sont représentés en tant que cercle noir plein.
• Sélectionnez l’un des graphiques affichés sur les écrans NFS et Diff pour afficher un
graphique étendu du paramètre sélectionné.
6
Sélectionnez
pour revenir à l’écran Contrôle de qualité (Visualisation des données).
Affichage d’un graphique de Levey-Jennings étendu
Le graphique de Levey-Jennings étendu sur l’écran Contrôle de qualité (Vue graphique) affiche
jusqu’à 150 résultats pour un paramètre sélectionné dans le fichier témoin.
4-8
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez le N° de lot dans la liste déroulante.
3
Sélectionnez
.
.
Réf. B95008AA
Contrôle de qualité
Contrôles
4
Sélectionnez le graphique de paramètre applicable parmi les graphiques disponibles sur l’écran
Contrôle de qualité (Vue graphique) pour afficher un résumé et une vue étendue du graphique.
5
Sélectionnez l’icône applicable pour consulter ces informations ou pour effectuer une action :
Icône
Nom
Description
Voir données
Affiche l’écran Contrôle de qualité (Visualisation des données)
Suivant
Affiche le résultat de contrôle suivant dans le fichier, un résultat
à la fois
Précédent
Affiche le résultat de contrôle précédent dans le fichier, un résultat
à la fois
Quitter
Quitte le graphique de paramètre étendu
Affichage des détails d’une analyse de témoin
Réf. B95008AA
1
Sélectionnez
2
Mettez en surbrillance une analyse, puis sélectionnez
3
Révisez les informations sur l’écran Détails de la fonction CQ :
.
.
Champ
Description
N° de lot
Numéro d’identification du contrôle
Fichier
Numéro de fichier (1 à 12) pour un fichier de contrôle sélectionné
Source
Source ou type de contrôle (BEC/Autre)
Date de péremption
Date de péremption du fichier de contrôle sélectionné
Niveau
Niveau du matériel de contrôle pour le fichier sélectionné
(anormal bas, normal, anormal haut)
Date/heure de l’analyse
Date et heure d’analyse du spécimen sélectionné
4-9
4
Contrôle de qualité
Contrôles
Champ
Description
ID opérateur
Opérateur qui est connecté lors de l’analyse du contrôle
Séquence
Numéro de séquence pour l’analyse du contrôle sélectionnée. Le
Séquence de cycle inclut toutes les exécutions de cycle (NGB, Contrôles
journaliers, CQ, etc.) et il augmente de un à chaque fois qu’un cycle est
exécuté.
Observations
Observations (si ajoutées) pour le résultat du contrôle sélectionné
Résultats du paramètre
Résultats du paramètre
Scattergramme des NGB 5PD Un graphique différentiel NGB 5PD agrandi lorsque sélectionné.
Histogramme NGR
Un histogramme NGR agrandi lorsque sélectionné
Histogramme plaquettes
Une vue agrandie de l’histogramme de PLT lorsque sélectionné
Indicateurs et messages
Une vue agrandie des indicateurs et messages lorsque sélectionné
4
Faites défiler l’écran, si nécessaire, pour voir les autres analyses dans le fichier de contrôle.
Transmission des fichiers témoins
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez le N° de lot dans la liste déroulante.
3
Sélectionnez
.
>
.
REMARQUE Si vous avez configuré la transmission automatique des fichiers témoins, les résultats sont
automatiquement transmis à la fin de l’analyse du contrôle. Voir Configuration et édition des
contrôles dans le CHAPITRE 9, Configuration.
4-10
4
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez Résultat sélectionné ou Tous les résultats du
fichier.
5
Sélectionnez
à l’invite pour confirmer votre sélection.
Réf. B95008AA
Contrôle de qualité
Contrôles
Impression des fichiers témoins
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez le N° de lot dans la liste déroulante.
3
Sélectionnez
.
>
.
REMARQUE Si vous avez configuré l’impression automatique des fichiers témoins, les résultats sont
automatiquement imprimés à la fin de l’analyse du contrôle. Voir Configuration et édition des
contrôles dans le CHAPITRE 9, Configuration.
4
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez l’une des options suivantes :
• Résultat sélectionné
• Tous les résultats avec graphiques
• Tous les résultats
5
Sélectionnez
à l’invite pour confirmer votre sélection.
Exportation des fichiers témoins
Réf. B95008AA
1
Insérez une clé USB dans le port USB à l’avant de l’instrument.
2
Sélectionnez
3
Sélectionnez le N° de lot dans la liste déroulante.
4
Sélectionnez
.
>
.
4-11
4
Contrôle de qualité
Contrôles
5
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez Résultat sélectionné ou Tous les résultats du
fichier.
6
Sélectionnez
7
Retirez la clé USB du port USB.
à l’invite pour confirmer votre sélection.
Suppression des fichiers témoins
Vous pouvez supprimer des enregistrements de fichier témoin à partir de l’écran Contrôle de
qualité (Visualisation des données).
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez le N° de lot dans la liste déroulante.
.
ATTENTION
Risque de perte d’informations. Lorsque des données de fichier témoin sont
supprimées, elles ne peuvent pas être récupérées. Beckman Coulter recommande
de sauvegarder une copie de vos données de fichier témoin sous forme
électronique ou papier. Envoyez vos données à IQAP avant de supprimer des
données de fichier témoin.
4-12
3
Sélectionnez
4
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez
fichier sélectionné.
.
pour supprimer tous les résultats pour le
Réf. B95008AA
Contrôle de qualité
Révision de l’analyse XB
5
Sélectionnez
>
et sélectionnez
, mettez en surbrillance la ligne de fichier de contrôle existante,
>
pour supprimer le fichier de contrôle.
Révision de l’analyse XB
Révisez les résultats d’analyse XB depuis l’écran Contrôle de qualité (Visualisation des donnée). Si
une moyenne de série est en dehors des limites XB configurées pour le test, la série est considérée
hors plage et est signalée par
sur le menu principal et
(Visualisation des données). L’indicateur d’erreur est retiré lorsque
l’écran Moyennes de la série XB.
sur l’écran Contrôle de qualité
est sélectionné sur
Écran Révision des moyennes de la série XB
L’écran Moyennes de la série XB combine les données statistiques et les graphiques de LeveyJennings en vignette pour VMC, TCMH et CCMH pour toutes les séries XB terminées. Les moyennes
de série et les différences en pourcentage hors plage pour VMC, TCMH et CCMH sont affichées en
rouge.
La série en cours d’accumulation est affichée tout en haut. L’écran affiche les données limitées
suivantes jusqu’à ce que la série soit terminée :
• Numéro de série
• N
• Date/heure début
Réf. B95008AA
1
Sélectionnez
2
Révisez les résultats.
>
.
4-13
4
Contrôle de qualité
Écran Révision des moyennes de la série XB
3
Sélectionnez le bouton applicable pour consulter ces informations ou pour effectuer une
action :
Icône
Nom
Description
Graphes
Affiche les graphiques CQ pour les moyennes de la série XB
Détails
Affiche les détails de la série XB pour la série sélectionnée
Supprimer
Supprime les résultats de la série XB. Voir Suppression d’une série XB.
Accepter XB
Actif seulement quand une série XB est hors plage.
Affiche un message d’avertissement pour accepter les conditions XB
hors plage. Voir Révision de l’analyse XB.
Écran Révision des détails de la série XB
L’écran Détails de la série XB affiche les résultats des spécimens accumulés dans une série et utilisés
pour déterminer les moyennes de la série XB. Les moyennes de série et les différences en
pourcentage ne sont pas disponibles avant la fin de l’analyse d’une série. Si la moyenne de la série
et les différences en pourcentage sont hors limites, les valeurs sont affichées en rouge.
1
Sélectionnez
2
Mettez en surbrillance la série souhaitée, puis sélectionnez
>
.
.
REMARQUE Pour exclure une analyse des calculs statistiques, sélectionnez Exclure. Cinq analyses
maximum peuvent être exclues de chaque série.
4-14
Réf. B95008AA
Contrôle de qualité
Écran Révision des moyennes de la série XB
Affichage des graphiques des moyennes de la série XB
L’écran Moyennes de la série XB offre une représentation des données sur un graphique de type
Levey-Jennings pour VMC, TCMH et CCMH pour les 20 dernières moyennes de série de chaque
groupe. La valeur cible de chaque paramètre est affichée en tant que ligne bleue. Les limites haute
et basse sont affichées en tant que lignes rouges.
1
Sélectionnez
2
Mettez en surbrillance la série souhaitée, puis sélectionnez
>
.
>
.
La série la plus récente est représentée du côté le plus à droite de chaque graphique, comme
suit :
• Les points dans la plage sont affichés en tant que cercles noirs pleins.
• Les points au-dessus ou en dessous des limites sont affichés en tant que triangles rouges
pleins.
• Un point avec l’indicateur vertical affiche la série sélectionnée avec les valeurs du champ
Résumé affichées. Il peut être déplacé à l’aide des flèches.
3
Sélectionnez l’icône applicable pour consulter ces informations ou pour effectuer une action :
Icône
Nom
Description
Voir données
Affiche l’écran Moyennes de la série XB
Suivant
Affiche le point de données de moyenne de la série suivant
Précédent
Affiche le point de données de moyenne de la série précédent
Supprimer
Supprime les résultats de moyenne de la série XB pour :
• La série sélectionnée
• Toutes les séries
Réf. B95008AA
4-15
4
Contrôle de qualité
Impression des rapports de série XB
Impression des rapports de série XB
Suivez ces étapes pour imprimer manuellement les rapports des séries XB. Pour configurer
l’impression automatique, voir Configuration de XB dans le CHAPITRE 9, Configuration.
1
Sélectionnez
>
.
2
Sélectionnez
>
.
3
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez l’une des options suivantes :
• Dans un tableau
• Dans un graphique
• Dans un tableau et un graphique
4
Sélectionnez
pour confirmer votre sélection.
Exportation des résultats XB
4-16
1
Insérez une clé USB dans le port USB à l’avant de l’instrument.
2
Sélectionnez
>
.
3
Sélectionnez
>
.
4
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez Série sélectionnée ou Toutes les séries.
Réf. B95008AA
Contrôle de qualité
Suppression d’une série XB
5
Sélectionnez
6
Retirez la clé USB du port USB.
pour confirmer votre sélection.
Suppression d’une série XB
1
Sélectionnez
2
Dans l’écran Moyennes de la série XB, sélectionnez
3
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez l’une des options suivantes :
>
.
.
• Série actuelle (série en cours d’analyse)
• La série sélectionnée
• Toutes les séries
4
Sélectionnez
pour confirmer votre sélection.
Révision de l’analyse XM
Révisez les résultats d’analyse XM depuis l’écran Contrôle de qualité (Visualisation des données). Si
une moyenne de série est en dehors des limites XM configurées pour le test, la série est considérée
hors plage et est signalée par
sur le menu principal et
sur l’écran Contrôle de
qualité (Visualisation des données). L’indicateur d’erreur est retiré lorsque
sur l’écran Moyennes de la série XM.
Réf. B95008AA
est sélectionné
4-17
4
Contrôle de qualité
Écran Révision des moyennes de la série XM
Écran Révision des moyennes de la série XM
Les données XM sont affichées en groupes de paramètres NFS ou DIFF.
La série en cours d’accumulation est affichée tout en haut. L’écran affiche les données limitées
suivantes jusqu’à ce que la série soit terminée :
• Numéro de série
• N
• Date/heure début
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez NFS ou DIFF dans la liste déroulante et révisez les résultats.
3
Sélectionnez le bouton applicable pour consulter ces informations ou pour effectuer une
action :
Icône
>
.
Nom
Description
Graphes
Affiche les graphiques CQ pour les moyennes de la série XM
Détails
Affiche les détails de la série XM pour la série sélectionnée
Supprimer
Supprime les résultats de la série XM. Voir Suppression d’une série XM.
Accepter XM
Actif seulement si une série XM est hors plage.
Affiche un message d’avertissement pour accepter les conditions XM
hors plage. Voir Révision de l’analyse XM.
Écran Révision des détails de la série XM
L’écran Détails de la série XM affiche les résultats des spécimens accumulés dans une série et utilisés
pour déterminer les moyennes de la série XM. Voir Révision de l’analyse XM.
4-18
Réf. B95008AA
Contrôle de qualité
Écran Révision des moyennes de la série XM
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez NFS ou DIFF dans la liste déroulante.
3
Mettez en surbrillance la série souhaitée, puis sélectionnez
>
.
.
Affichage des graphiques des moyennes de la série XM
L’écran Moyennes de la série XM offre une représentation des données sur un graphique de type
Levey-Jennings pour les 20 dernières moyennes de série de chaque groupe. La valeur cible de chaque
paramètre est affichée en tant que ligne bleue. Les limites haute et basse sont affichées en tant que
lignes rouges.
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez NFS ou DIFF dans la liste déroulante.
3
Mettez en surbrillance la série souhaitée, puis sélectionnez
>
.
.
REMARQUE Pour afficher l’écran Détails des moyennes de la série XM, sélectionnez
.
Points
La série la plus récente est représentée du côté le plus à droite de chaque graphique, comme
suit :
• Les points dans la plage sont affichés en tant que cercles noirs pleins.
• Les points au-dessus ou en dessous des limites sont affichés en tant que triangles rouges
pleins.
• Un point avec l’indicateur vertical affiche les dates de début et de fin de la série.
Réf. B95008AA
4-19
4
Contrôle de qualité
Impression des rapports de la série XM
Afficher un graphique de moyenne de la série XM étendu
1
Sélectionnez un graphique de paramètre applicable parmi les graphiques disponibles sur
l’écran Graphiques de moyennes de la série XM.
2
Affichez le résumé et la vue étendue du graphique.
3
Sélectionnez l’icône applicable pour consulter ces informations ou pour effectuer une action :
Icône
Nom
Description
Voir données
Affiche l’écran Moyennes de la série XM
Suivant
Affiche le point de données de moyenne de la série suivant, un
résultat à la fois
Précédent
Affiche le point de données de moyenne de la série précédent, un
résultat à la fois
Quitter
Quitte le graphique de paramètre étendu
Impression des rapports de la série XM
Suivez ces étapes pour imprimer manuellement les rapports des séries XM. Pour configurer
l’impression automatique, voir Configuration de XM dans le CHAPITRE 9, Configuration.
4-20
1
Sélectionnez
>
.
2
Sélectionnez
>
.
Réf. B95008AA
Contrôle de qualité
Exportation des résultats XM
3
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez l’une des options suivantes :
• Dans un tableau
• Dans un graphique
• Dans un tableau et un graphique
4
Sélectionnez
pour confirmer votre sélection.
Exportation des résultats XM
1
Insérez une clé USB dans le port USB à l’avant de l’instrument.
2
Sélectionnez
>
.
3
Sélectionnez
>
.
4
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez Série sélectionnée ou Toutes les séries.
5
Sélectionnez
6
Retirez la clé USB du port USB.
pour confirmer votre sélection.
Suppression d’une série XM
Réf. B95008AA
1
Sélectionnez
2
Dans l’écran Moyennes de la série XM, sélectionnez
>
.
.
4-21
4
Contrôle de qualité
Téléchargement vers IQAP
3
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez l’une des options suivantes :
• Série actuelle (série en cours d’analyse)
• La série sélectionnée
• Toutes les séries
4
Sélectionnez
pour confirmer votre sélection.
Téléchargement vers IQAP
4-22
1
Assurez-vous que votre numéro de participant IQAP a été correctement saisi. Voir
Configuration des informations IQAP dans le CHAPITRE 9, Configuration.
2
Assurez-vous d’avoir révisé les fichiers de contrôles, le nombre d’analyses, la moyenne et le 2SD.
Vérifiez que le bon contrôle a été analysé dans le bon fichier. Voir Affichage des fichiers
témoins.
3
Imprimez le fichier témoin, si nécessaire. Voir Impression des fichiers témoins.
4
Insérez la clé USB dans le port USB de l’instrument.
5
Sélectionnez
6
Sélectionnez les fichiers à télécharger et sélectionnez
7
Sélectionnez
8
À la fin du téléchargement, retirez la clé USB.
>
.
.
pour télécharger les fichiers.
Réf. B95008AA
CHAPITRE 5
Analyse des échantillons
Collecte des spécimens
Prélever les échantillons de sang total dans de l’EDTA conformément aux instructions du fabricant
de tubes et aux procédures du CLSI GP41-A625 pour les ponctions veineuses et du CLSI GP42-A626 pour
les ponctions capillaires. Inspecter avec soin tous les dispositifs de collecte avant utilisation. Suivre
les recommandations pour le stockage et le mélange indiquées dans Stabilité des échantillons et
stockage — Sang total dans le CHAPITRE 1, Présentation du système.
Vous êtes prêt à analyser des échantillons lorsque vous avez sélectionné le bon mode d’analyse et
vérifié l’identification des échantillons.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. L’analyse d’un échantillon en utilisant un mode
d’analyse incorrect peut entraîner des résultats erronés. Analysez un échantillon
de sang total uniquement en mode de sang total. Analysez un échantillon de sang
prédilué uniquement en mode prédilué.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. Suivez la procédure recommandée par le fabricant de
tubes pour une bonne collecte des spécimens.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. L’utilisation d’anticoagulants non recommandés peut
entraîner des résultats erronés.
Apposition d’une étiquette de code-barres sur un tube
ATTENTION
Risque de résultats erronés. L’utilisation d’étiquettes de code-barres de mauvaise
qualité, sales, mal placées, incompatibles ou endommagées nuit à la performance
du scanner de codes-barres. N’utilisez pas d’étiquettes longues et ne couvrez pas
le bas d’un tube avec une étiquette. Ne pas placer plus de deux étiquettes sur un
tube.
Réf. B95008AA
5-1
Analyse des échantillons
Identification des échantillons patient
Le bon positionnement de l’étiquette de code-barres sur le tube permet au scanner de codes-barres
de lire correctement les informations. Apposer l’étiquette de code-barres sur le tube comme illustré
dans le Figure 5.1, Positionnement correct/incorrect de l’étiquette sur le flacon.
Figure 5.1 Positionnement correct/incorrect de l’étiquette sur le flacon
Identification des échantillons patient
ATTENTION
Risque de mauvaise identification. Ne commencez pas la fonction
d’incrémentation automatique au même point que configuré précédemment.
ATTENTION
Risque de mauvaise identification. Ne pas utiliser les caractères % # @ [ \ ] `{ | }
~ ? “ * dans les données démographiques, notamment dans l’ID spécimen ou
patient. Ne pas utiliser d’espace en première ou dernière position de l’ID d’un
échantillon ou d’un patient.
L’ID spécimen et l’ID patient ne sont pas sensibles à la casse. Par exemple, l’ID
spécimen abcd sera équivalent à une demande de test portant l’ID spécimen
ABCD.
Tous les spécimens requièrent un ID spécimen valide :
• Un ID spécimen peut être manuellement saisi à l’aide du clavier visuel, en scannant l’étiquette
de code-barres d’un échantillon, ou en utilisant la fonction d’incrémentation automatique. Voir
Configuration du spécimen suivant dans le CHAPITRE 9, Configuration. Si l’ID spécimen n’est
pas saisi et que la fonction d’incrémentation automatique n’est pas activée, le système attribue
automatiquement un numéro de séquence automatique généré par l’instrument (AutoSID).
• Un ID spécimen doit avoir une longueur comprise entre 1 et 16 caractères, doit comprendre des
caractères imprimables ASCII, et il ne doit pas y avoir deux espaces consécutifs ou plus entre les
caractères.
5-2
Réf. B95008AA
Analyse des échantillons
Exécution d’une analyse des échantillons
Création d’une liste de travaux
Des informations sur le patient et des ID spécimen peuvent être ajoutés à une liste de travaux. Les
informations peuvent être téléchargées depuis le système SIL hôte ou saisies manuellement dans la
liste de travaux. Pour ajouter des entrées manuellement, voir Configuration d’une demande de test
dans le CHAPITRE 7, Liste de travaux.
Utilisation du scanner de codes-barres portatif
ATTENTION
Risque de mauvaise identification de l’échantillon. Lorsque vous utilisez le
scanner de codes-barres portatif, des erreurs de lecture erronée peuvent se
produire à cause d’une lecture partielle d’une étiquette ou d’étiquettes
endommagées ou mal placées. Beckman Coulter vous recommande de vérifier
chaque lecture de code-barres pour garantir une identification correcte du
patient.
1
Orientez le scanner de codes-barres sur l’étiquette de code-barres et appuyez sur le
déclencheur.
2
Vérifiez que les informations affichées se trouvent dans le champ approprié et correspondent
aux informations sur l’étiquette.
Exécution d’une analyse des échantillons
Le DxH 520 est conçu pour être utilisé uniquement avec des échantillons veineux ou capillaires de
sang total et prédilués. L’instrument possède trois modes de fonctionnement :
• Tube fermé (CP ; closed-vial) — voir Analyse d’échantillons de sang total en mode Tube fermé
• Tube ouvert (OP ; open-vial) — voir Analyse d’échantillons de sang total en mode Tube ouvert
• Prédilué (PD ; predilute) — voir Exécuter des échantillons de sang prédilué
Les échantillons de sang total devront être analysés soit en mode Tube fermé soit en mode Tube
ouvert. Les échantillons prédilués requièrent une analyse en mode prédilué (station Tube ouvert).
Les échantillons non bouchés peuvent aussi être traité en mode Tube ouvert.
Réf. B95008AA
5-3
5
Analyse des échantillons
Exécution d’une analyse des échantillons
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique :
• Risque d’exposition à du matériel présentant un risque biologique si le
contenu se déverse du tube. Faire attention en manipulant le tube et en le
retirant du support de tubes.
• Si vous ne vous protégez pas correctement lors de l’utilisation ou de
l’entretien de l’instrument, vous pourriez vous blesser et/ou être contaminé.
Pour éviter tout risque de blessure et/ou de contamination biologique, vous
devez porter un équipement de protection de laboratoire spécial, comprenant
des gants, une blouse de laboratoire et une protection oculaire.
• L’utilisation de l’instrument avec un récipient à déchets plein peut entraîner
une contamination biologique si le récipient déborde. Pour empêcher toute
contamination biologique, remplacez le récipient à déchets et réinitialisez le
compteur de gestion des déchets avant d’utiliser l’instrument. Voir
Configuration ou remplacement du rejet des déchets dans le CHAPITRE 9,
Configuration.
• L’utilisation de l’instrument avec des capots et des portes ouverts peut
entraîner des blessures. Lorsque vous utilisez l’instrument, assurez-vous que
tous les capots et portes sont fermés.
• L’utilisation de l’instrument avec une sonde desserrée ou tordue peut
entraîner des blessures. Si la sonde est desserrée ou tordue, n’utilisez pas
l’instrument. Voir Remplacement de la sonde d’aspiration dans le
CHAPITRE 13, Procédures de remplacement/réglage pour obtenir des
informations sur la manière de remplacer la sonde avant l’analyse.
AVERTISSEMENT
Risque de blessure corporelle dû à des conditions de risques biologiques dues à
un tube d’échantillon trop rempli. Vous pouvez analyser un échantillon tube
ouvert (non bouché) en mode Tube fermé. Cependant, pour éviter tout risque
biologique, assurez-vous que le niveau du fluide dans le tube d’échantillon est
d’au moins 1,27 cm (0,5 po) sous le haut du tube lors de l’analyse de l’échantillon
non bouché (tube ouvert) en mode sang total Tube fermé.
REMARQUE Si l’instrument n’est plus alimenté pendant l’analyse d’un échantillon, les résultats seront
perdus. Recommencez l’analyse de l’échantillon.
5-4
Réf. B95008AA
Analyse des échantillons
Exécution d’une analyse des échantillons
Analyse d’échantillons de sang total en mode Tube fermé
IMPORTANT Les spécimens pouvant contenir de la fibrine, des fragments cellulaires, ou d’autres débris, ou
qui ont été difficiles à collecter, comme par exemple les spécimens pédiatriques ou oncologiques,
peuvent nécessiter une manipulation spéciale.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. La présence de filaments de fibrine peut entraîner
des résultats erronés. Vous devez soigneusement examiner l’échantillon pour
vous assurer qu’il ne contient pas de filaments de fibrine ou de caillots.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. Avant l’analyse, mélangez correctement l’échantillon
conformément au protocole de votre laboratoire et aux instructions du fabricant
de tubes. Pour pouvoir correctement mélanger l’échantillon, ne remplissez pas
trop le tube d’échantillon.
ATTENTION
Des fuites d’échantillons ou une obstruction du système peuvent se produire. Une
perforation excessive des tubes d’échantillon peut provoquer le carottage du
bouchon. Le nombre de perforations effectuées sans problème peut varier selon
les types de tubes d’échantillon et les fabricants. Ne pas perforer le tube
d’échantillon plus de cinq fois.
Vérifier le manuel d’utilisation de la liste des tubes d’hématologie (voir
Documents associés pour plus d’informations). Certains tubes possèdent un
manuel d’utilisation plus restrictif.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. Tous les tubes doivent contenir un volume minimum
de 1 mL pour les dispositifs de prélèvement ayant un volume de remplissage
supérieur à 1 mL ou un volume de remplissage au 3/4 pour les dispositifs ayant un
volume de remplissage inférieur à 1 mL. Un volume insuffisant entraîne un risque
accru de résultats erronés.
1
Réf. B95008AA
Sélectionnez
.
5-5
5
Analyse des échantillons
Exécution d’une analyse des échantillons
ATTENTION
Risque de mauvaise identification. Vérifier l’ID spécimen dans la liste de travaux
si la liste de travaux contient des entrées. Confirmer que l’ID spécimen suivant est
correcte avant l’affichage du message de traitement du spécimen.
2
Tenez compte de ce qui suit :
• Si la liste de travaux ne contient aucune entrée, la porte s’ouvre automatiquement.
• Si la liste de travaux contient des entrées, le système affiche un message d’avertissement.
Vérifiez que le ID spécimen suivant en bas à droite de l’écran est correct et sélectionnez
. La porte s’ouvre automatiquement.
3
Identifiez un échantillon en utilisant l’une des méthodes suivantes :
• Si le ID spécimen suivant est incorrect ou n’est pas saisi, scannez le code-barres du tube
d’échantillon et le test par défaut est affecté (voir Configuration du spécimen suivant dans
le CHAPITRE 9, Configuration).
• Sélectionnez
, utilisez le clavier visuel pour saisir l’ID spécimen et le test (CD ou
NFS), et vérifiez que le spécimen est NGB et que CP est sélectionné. Sélectionnez
à
l’invite pour confirmer votre sélection. La porte s’ouvre automatiquement.
REMARQUE Un ID spécimen valide doit être saisi pour analyser un spécimen. Si vous avez configuré
l’incrémentation automatique, le champ ID spécimen est automatiquement renseigné. Si aucun ID
spécimen n’existe, le système affecte un AutoSID (numéro de séquence automatique généré par
l’instrument pour identifier un spécimen).
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. L’utilisation de
l’instrument avec des capots et des portes ouverts peut entraîner des blessures.
Lorsque vous utilisez l’instrument, assurez-vous que tous les capots et portes
sont fermés.
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. L’utilisation de
l’instrument avec une sonde desserrée ou tordue peut entraîner des blessures. Si
la sonde est desserrée ou tordue, n’utilisez pas l’instrument. Voir Remplacement
de la sonde d’aspiration dans le CHAPITRE 13, Procédures de
remplacement/réglage pour obtenir des informations sur la manière de remplacer
la sonde avant l’analyse.
5-6
Réf. B95008AA
Analyse des échantillons
Exécution d’une analyse des échantillons
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou d’exposition à du matériel présentant un risque
biologique si le contenu se déverse du tube. Faire attention lors de la
manipulation du tube.
4
Mélangez l’échantillon de sang total.
5
Insérez complètement l’échantillon dans le support de tubes.
ATTENTION
Risque de résultats erronés et de dommage à l’instrument si la porte échantillon
est ouverte avant la fin de l’analyse de l’échantillon. N’ouvrez pas la porte
échantillon. La porte échantillon s’ouvre automatiquement.
ATTENTION
Risque de dommages à l’instrument. Si la porte du diluteur est ouverte alors que
la porte échantillon est ouverte, l’instrument peut être endommagé. Avant
d’ouvrir la porte du diluteur, vérifiez que la porte échantillon est fermée.
IMPORTANT Si vous fermez manuellement la porte, aucune analyse ne sera initiée. Pour ré-ouvrir la porte,
sélectionnez
6
.
Sélectionnez
et la porte se ferme automatiquement. Le voyant lumineux clignote
rouge pendant l’aspiration et devient rouge fixe pendant le traitement. Un message dans le coin
inférieur gauche de l’écran indique l’ID spécimen en cours d’analyse.
Lorsque que le traitement est fini, la porte s’ouvre automatiquement. Le voyant lumineux
devient vert et les résultats sont affichés.
7
Retirez le tube du support de tubes.
8
Transmettez ou imprimez les résultats de patient :
>
ou voir Transmission des résultats de
• Pour transmettre, sélectionnez
patient dans le CHAPITRE 6, Consultation résultats.
Réf. B95008AA
5-7
5
Analyse des échantillons
Exécution d’une analyse des échantillons
• Pour imprimer, sélectionnez
>
dans le CHAPITRE 6, Consultation résultats.
ou voir Impression des résultats de patient
• Pour configurer la transmission automatique et/ou l’impression automatique, voir
Configuration du SIL et Configuration des options de l’imprimante dans le CHAPITRE 9,
Configuration. Si vous avez déjà configuré la transmission et/ou l’impression automatique,
les données sont automatiquement transmises et/ou imprimées.
Analyse d’échantillons de sang total en mode Tube ouvert
Le mode Tube ouvert sur le DxH 520 présente une méthode alternative pour le traitement des
échantillons ayant des volumes plus faibles ou des échantillons contenus dans tubes fermés dont les
bouchons ne peuvent pas être perforés.
Toutes les demandes de tests saisies dans la liste de travaux sont par défaut en mode Tube fermé.
Pour traiter des échantillons en Tube ouvert, le bon mode doit être sélectionné.
IMPORTANT Les spécimens pouvant contenir de la fibrine, des fragments cellulaires, ou d’autres débris, ou
qui ont été difficiles à collecter, comme par exemple les spécimens pédiatriques ou oncologiques,
peuvent nécessiter une manipulation spéciale.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. Avant l’analyse, mélangez correctement l’échantillon
conformément au protocole de votre laboratoire et aux instructions du fabricant
de tubes. Pour pouvoir correctement mélanger l’échantillon, ne remplissez pas
trop le tube d’échantillon.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. La présence de filaments de fibrine peut entraîner
des résultats erronés. Vous devez soigneusement examiner l’échantillon pour
vous assurer qu’il ne contient pas de filaments de fibrine ou de caillots.
1
5-8
Sélectionnez
.
Réf. B95008AA
5
Analyse des échantillons
Exécution d’une analyse des échantillons
ATTENTION
Risque de mauvaise identification. Vérifier l’ID spécimen dans la liste de travaux
si la liste de travaux contient des entrées. Confirmer que l’ID spécimen suivant est
correcte avant l’affichage du message de traitement du spécimen.
2
Tenez compte de ce qui suit :
• Si la liste de travaux ne contient aucune entrée, la porte s’ouvre automatiquement.
• Si la liste de travaux contient des entrées, le système affiche un message d’avertissement.
Vérifiez que le ID spécimen suivant en bas à droite de l’écran est correct et sélectionnez
. La porte s’ouvre automatiquement.
3
Identifiez un échantillon en utilisant l’une des méthodes suivantes :
>
• Si le ID spécimen suivant est correct, sélectionnez
spécimen soit traité en mode Tube ouvert (la sonde est étendue).
pour accepter que le
• Si le ID spécimen suivant est incorrect ou n’est pas saisi, scannez le code-barres du tube
d’échantillon, sélectionnez
>
mode Tube ouvert (la sonde est étendue).
• Sélectionnez
pour accepter que le spécimen soit traité en
et utilisez le clavier visuel pour saisir l’ID spécimen, vérifiez le test (CD
ou NFS), et vérifiez que le spécimen est NGB et que OV est sélectionné. Sélectionnez
lorsque vous y êtes invité pour confirmer votre sélection (la sonde est étendue).
,
REMARQUE Un ID spécimen valide doit être saisi pour analyser un spécimen. Si vous avez configuré
l’incrémentation automatique, le champ ID spécimen est automatiquement renseigné. Si aucun ID
spécimen n’existe, le système affecte un AutoSID (numéro de séquence automatique généré par
l’instrument pour identifier un spécimen).
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. L’utilisation de
l’instrument avec des capots et des portes ouverts peut entraîner des blessures.
Lorsque vous utilisez l’instrument, assurez-vous que tous les capots et portes
sont fermés.
Réf. B95008AA
5-9
Analyse des échantillons
Exécution d’une analyse des échantillons
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. L’utilisation de
l’instrument avec une sonde desserrée ou tordue peut entraîner des blessures. Si
la sonde est desserrée ou tordue, n’utilisez pas l’instrument. Voir Remplacement
de la sonde d’aspiration dans le CHAPITRE 13, Procédures de
remplacement/réglage pour obtenir des informations sur la manière de remplacer
la sonde avant l’analyse.
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou d’exposition à du matériel présentant un risque
biologique si le contenu se déverse du tube. Faire attention lors de la
manipulation du tube.
4
Mélangez l’échantillon de sang total.
5
Retirez avec précaution le bouchon du tube.
6
Nettoyez tout résidu de sang sur le bord du tube avant la présentation de l’échantillon.
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. La sonde d’aspiration est
pointue. Pour éviter de vous blesser avec la sonde d’aspiration soyez prudent
lorsque vous présentez les échantillons pour analyse pendant cette procédure.
ATTENTION
Risque de résultats erronés si, en mode Tube ouvert, le tube est retiré pendant
l’aspiration. Ne retirez pas le tube avant que la sonde ne se rétracte.
5-10
7
Immergez complètement la sonde dans le tube et sélectionnez
pour analyser
l’échantillon. Le voyant lumineux clignote en rouge lors de l’aspiration de l’échantillon.
8
Retirez le tube de la sonde lorsque le voyant lumineux devient rouge fixe et que la sonde s’est
complètement rétractée. Un message s’affiche en bas à gauche de l’écran indiquant que l’ID
spécimen est en cours d’analyse.
9
Rebouchez le tube.
Réf. B95008AA
Analyse des échantillons
Exécution d’une analyse des échantillons
10 Attendez que l’instrument ait traité l’échantillon et qu’il affiche les résultats. Le voyant d’état
devient vert.
11 Transmettez ou imprimez les résultats de patient :
• Pour transmettre, sélectionnez
>
ou voir Transmission des résultats de
patient dans le CHAPITRE 6, Consultation résultats.
>
ou voir CHAPITRE 6, Impression des
• Pour imprimer, sélectionnez
résultats de patient dans le CHAPITRE 6, Consultation résultats.
• Pour configurer la transmission automatique et/ou l’impression automatique, voir
CHAPITRE 9, Configuration du SIL et Configuration des options de l’imprimante dans le
CHAPITRE 9, Configuration. Si vous avez déjà configuré la transmission et/ou l’impression
automatique, les données sont automatiquement transmises et/ou imprimées.
Exécuter des échantillons de sang prédilué
Le panneau de prédilution sur le DxH 520 offre une méthode de préparation des échantillons
alternative pour les échantillons qui ne peuvent pas être directement aspirés en mode de sang total
ou pour les fois où un très petit volume sanguin est disponible lors du prélèvement. Le panneau de
prédilution n’est pas conçu pour obtenir des résultats qui excèdent les limites hautes de la plage de
mesure analytique.
Le panneau de prédilution accepte une dilution 1:16, préparée en mélangeant 20 μL de sang total
avec 300 μL de diluant. L’échantillon dilué est analysé en mode de prédilution. L’instrument
rapporte les résultats finaux et aucune correction n’est requise.
IMPORTANT Les échantillons prédilués nécessitent d’être analysés en mode de prédilution, dans les
15 minutes suivant leur préparation.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. Avant l’analyse, mélangez correctement l’échantillon
conformément au protocole de votre laboratoire et aux instructions du fabricant
de tubes. Pour pouvoir correctement mélanger l’échantillon, ne remplissez pas
trop le tube d’échantillon.
1
Réf. B95008AA
Assurez-vous que le volume du tube d’échantillon dépasse 300 μL pour permettre assez de place
pour mélanger la solution sang/diluant.
5-11
5
Analyse des échantillons
Exécution d’une analyse des échantillons
2
Distribuez le diluant comme expliqué dans Distribution du diluant dans le CHAPITRE 10,
Dépannage.
3
Distribuez 20 μL de sang dans le tube dans lequel le diluant a été distribué.
4
Mélangez le sang/solution de diluant.
5
Sélectionnez
.
ATTENTION
Risque de mauvaise identification. Vérifier l’ID spécimen dans la liste de travaux
si la liste de travaux contient des entrées. Confirmer que l’ID spécimen suivant est
correcte avant l’affichage du message de traitement du spécimen.
6
Tenez compte de ce qui suit :
• Si la liste de travaux ne contient aucune entrée, la porte s’ouvre automatiquement.
• Si la liste de travaux contient des entrées, le système affiche un message d’avertissement.
Vérifiez que le ID spécimen suivant en bas à droite de l’écran est correct et
sélectionnez
7
.
Identifiez un échantillon en utilisant l’une des méthodes suivantes :
• Si le ID spécimen suivant est correct, sélectionnez
soit traité en mode Prédilué (la sonde est étendue).
pour accepter que l’échantillon
• Si le ID spécimen suivant est incorrect, sélectionnez
, le cas échéant, et scannez le
>
code-barres du tube, puis sélectionnez
soit traité en mode Prédilué (la sonde est étendue).
5-12
pour accepter que l’échantillon
Réf. B95008AA
Analyse des échantillons
Exécution d’une analyse des échantillons
• Sélectionnez
, utilisez le clavier visuel pour saisir l’ID spécimen et le test (CD ou
NFS), et vérifiez que le spécimen est PD. Sélectionnez
pour confirmer votre sélection (la sonde est étendue).
lorsque vous y êtes invité
REMARQUE Un ID spécimen valide doit être saisi pour analyser un spécimen. Si vous avez configuré
l’incrémentation automatique, le champ ID spécimen est automatiquement renseigné. Si aucun ID
spécimen n’existe, le système affecte un AutoSID (numéro de séquence automatique généré par
l’instrument pour identifier un spécimen).
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. L’utilisation de
l’instrument avec des capots et des portes ouverts peut entraîner des blessures.
Lorsque vous utilisez l’instrument, assurez-vous que tous les capots et portes
sont fermés.
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. L’utilisation de
l’instrument avec une sonde desserrée ou tordue peut entraîner des blessures. Si
la sonde est desserrée ou tordue, n’utilisez pas l’instrument. Voir Remplacement
de la sonde d’aspiration dans le CHAPITRE 13, Procédures de
remplacement/réglage pour obtenir des informations sur la manière de remplacer
la sonde avant l’analyse.
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou d’exposition à du matériel présentant un risque
biologique si le contenu se déverse du tube. Faire attention lors de la
manipulation du tube.
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. La sonde d’aspiration est
pointue. Pour éviter de vous blesser avec la sonde d’aspiration soyez prudent
lorsque vous présentez les échantillons pour analyse pendant cette procédure.
ATTENTION
Risque de résultats erronés si, en mode Tube ouvert, le tube est retiré pendant
l’aspiration. Ne retirez pas le tube avant que la sonde ne se rétracte.
Réf. B95008AA
5-13
5
Analyse des échantillons
Exécution d’une analyse des échantillons
8
Immergez complètement la sonde dans le tube et sélectionnez
pour analyser
l’échantillon. Un message s’affiche en bas à gauche de l’écran indiquant que l’ID spécimen est
en cours d’analyse.
9
Retirez le tube de la sonde lorsque le voyant lumineux devient rouge fixe et que la sonde s’est
complètement rétractée.
10 Attendez que l’instrument ait traité l’échantillon et qu’il affiche les résultats. Le voyant
lumineux devient vert.
11 Transmettez ou imprimez les résultats de patient :
• Pour transmettre, sélectionnez
>
ou voir Transmission des résultats de
patient dans le CHAPITRE 6, Consultation résultats.
>
• Pour imprimer, sélectionnez
dans le CHAPITRE 6, Consultation résultats.
ou voir Impression des résultats de patient
• Pour configurer la transmission automatique et/ou l’impression automatique, voir
Configuration du SIL et Configuration des options de l’imprimante dans le CHAPITRE 9,
Configuration. Si vous avez déjà configuré la transmission et/ou l’impression automatique,
les données sont automatiquement transmises et/ou imprimées.
5-14
Réf. B95008AA
CHAPITRE 6
Consultation résultats
Résultats de patient
ATTENTION
Risque de résultats erronés. L’instrument fournit des plages de référence par
défaut. Les plages de référence contrôlent la génération d’indicateurs bas (l) et
élevé (h) pour les résultats. Beckman Coulter recommande que le laboratoire
vérifie ou établisse, puis configure des plages de référence propres à sa
population de patients.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. Beckman Coulter ne prétend pas identifier toutes les
anomalies présentes dans tous les échantillons et suggère d’utiliser toutes les
options d’indicateur disponibles pour optimiser la sensibilité des résultats de
l’instrument. Les options comprennent les messages définitifs, les messages
système, les codes et indicateurs de paramètres, et la plage de référence (h/l) et
les indicateurs de limites d’action (H/L). Beckman Coulter recommande d’éviter
d’utiliser des messages ou des sorties uniques pour résumer les résultats d’un
spécimen ou la condition du patient. Il peut exister des situations où la présence
d’un événement rare ne déclenche pas de message système.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. Les indicateurs, codes et messages sont évalués
lorsque l’échantillon est analysé. Révisez les résultats et examinez tous les codes,
indicateurs ou messages qui ont pour but de vous informer de problèmes
concernant les résultats ou l’instrument. Lorsque vous examinez les indicateurs,
codes et messages, recherchez des schémas dans les données. Déterminez si des
ensembles de résultats ou des résultats individuels (par exemple, NGB et des
résultats différentiels) affichent des indicateurs, codes et messages. Certains
indicateurs sont le résultat d’un indicateur ou d’une édition d’autres paramètres.
Dans tous les cas, suivez les règles et procédures de votre laboratoire pour la
révision des résultats.
Réf. B95008AA
6-1
Consultation résultats
Résultats de patient
Indicateurs
IMPORTANT Beckman Coulter recommande de passer en revue tous les indicateurs conformément au
protocole de votre laboratoire avant de rapporter les résultats.
Les indicateurs apparaissent à droite du résultat du paramètre. Les indicateurs sont générés en
fonction des limites d’indicateur, des messages système, ou de l’édition des paramètres. Lorsque les
limites d’indicateur sont modifiées, les indicateurs ne sont pas réévalués pour les résultats qui sont
déjà dans la base de données.
Les indicateurs dans le tableau suivant sont répertoriés par ordre de priorité, de la plus élevée à la
plus faible. Les colonnes indiquent les trois positions où les indicateurs apparaissent. Il est possible
d’obtenir des indicateurs dans chacune des trois positions.
Tableau 6.1 Indicateurs et positions
indicateur et
position
1
2
Description
3
E
Édition manuelle d’un paramètre primaire
e
Édition automatique d’un paramètre calculé
+
Résultat supérieur à la limite haute de la plage de mesure analytique
-
Résultat inférieur à la limite basse de la plage de mesure analytique
R
Révisez les résultats
*
Échec de la vérification de l’hémoglobine et l’hématocrite (H&H)
(HCT - 3) < (HB*3) < (HCT + 3)
H
• Résultats de patient supérieurs à la limite d’action
• Résultats du contrôle supérieurs à la plage attendue
L
• Résultats de patient inférieurs à la limite d’action
• Résultats du contrôle inférieurs à la plage attendue
h
Résultats de patient supérieurs à la plage de référence, mais inférieurs à la limite
d’action (H)
l
Résultats de patient inférieurs à la plage de référence, mais inférieurs à la limite
d’action (L)
Codes
Les codes sont des caractères non numériques qui apparaissent à la place des valeurs lorsque le
système ne peut pas générer de résultats.
IMPORTANT Beckman Coulter recommande de passer en revue tous les codes conformément au protocole
de votre laboratoire.
Les codes dans le tableau suivant sont répertoriés par ordre de priorité, de la plus élevée à la plus
faible.
6-2
Réf. B95008AA
Consultation résultats
Messages affichés
Tableau 6.2 Codes
Code
Description
-----
Nombre total de rejets (tirets). Données incohérentes entre les périodes de numération.
.....
Calcul incomplet (points). Les données ne peuvent pas être déduites.
+++++
Au-dessus de la plage de fonctionnement (signes plus)
?????
Le résultat est hors de la plage de valeurs pouvant être mises en forme pour l’affichage
(points d’interrogation)
Messages affichés
Les messages sont divisés en deux catégories :
• Échantillon/Généré par le système
• Définis par l’utilisateur
Les messages sont affichés dans la boîte Indicateurs et messages sur l’écran et les imprimés, et
peuvent être accompagnés d’indicateurs ou codes.
IMPORTANT Beckman Coulter recommande de passer en revue et de gérer tous les codes conformément
au protocole de votre laboratoire.
Limites de seuil d’histogramme PLT
L’histogramme PLT a quatre seuils fixes (CP1, CP2, CP3 et CP3-2) et un seuil variable (P) qui se déplace
selon la présence d’une interférence. Lorsque les limites de seuil sont dépassées, des messages
spécifiques sont affichés. Voir le Tableau 6.3, Messages pour plus d’informations.
Figure 6.1 Limites de seuil d’histogramme PLT
Réf. B95008AA
6-3
6
Consultation résultats
Messages affichés
Nombre
Seuil
Volume approximatif (fL)
1
PLT minimum
2,0
2
CP1
5,0
3
CP2
18,0
4
P
27,0*
5
NGR minimum
28,0
6
CP3
32,0
7
PLT/CP3-2 maximum
34,0
*Seuil variable
Zones d’indicateur du scattergramme différentiel
Les populations qui sont normalement séparées génèrent des indicateurs ou des messages lorsque
les critères internes pour la séparation sont dépassés. La figure suivante est une population normale
présentant une bonne séparation. Selon la région du scattergramme, la présence d’un trop grand
nombre de particules ou une séparation imprécise entre les populations déclenchera un message
vous informant de la nécessité de réviser le différentiel.
Figure 6.2 Régions d’indicateur du scattergramme différentiel
6-4
Nombre
Région d’indicateur
Message
1
Grandes cellules immatures
Grandes cellules
2
MN (Monocyte/Neutrophile)
Chevauchement MO/NE
3
LM (Lymphocyte/Monocyte)
Chevauchement LY/MO
4
NE (Neutrophile/Éosinophile)
Chevauchement NE/EO
5
NL (Neutrophile/Lymphocyte)
Chevauchement NE/LY
6
LLYM (expression plus faible de
lymphocyte)
Interférence cellulaire
7
Déchets
Déchets
Réf. B95008AA
Consultation résultats
Messages affichés
Messages
Les messages sont affichés dans la boîte Indicateurs et messages sous le sous-titre Indicateurs ou
Système sur l’écran Analyse des échantillons — Résultats de patient. Les messages sont générés
lorsque les résultats d’échantillon rencontrent certaines conditions ou qu’un évènement pouvant
affecter le fonctionnement du système, la qualité des résultats, se produit, ou bien encore lorsque
une intervention de l’utilisateur est requise. Les messages peuvent être accompagnés par des
indicateurs R (Révision), d’autres indicateurs ou des codes.
Tableau 6.3 Messages
Message
Paramètre/Indicateur
Description
Interférence BA
Diff% R, Nb_Diff R
Impossible de calculer BA. Un résultat non numérique (.....)
s’affiche pour BA et Nb_BA. Plusieurs populations se
chevauchent pour les régions des monocytes, neutrophiles et
lymphocytes (NL, LM, MN) Un Diff anormal apparaît avec ce
message lorsque qu’un test CD est demandé.
Échec du comptage
résiduel
Tous les résultats R
Spécimen traités après l’échec du comptage résiduel.
Interférence cellulaire
NGB R, Diff% R, Nb_Diff R,
PLT R
Mauvaise séparation entre la population NGB et les
interférences sous la région des lymphocytes. Un Diff anormal
apparaît avec ce message lorsque qu’un test CD est demandé.
Échec des contrôles
journaliers
Tous les résultats R
Échantillons traités après un échec des contrôles journaliers.
Déchets
Aucun
Trop d’événements dans la zone de déchets.
NGR dimorphique
RDW R, RDW-SD R
Preuve de la présence d’au moins deux populations de globules
rouges.
Agent de nettoyage
périmé
Tous les résultats R
Échantillons traités avec un agent de nettoyage périmé.
Diluant périmé
Tous les résultats R
Échantillons traités avec un diluant périmé.
Lyse périmé
Tous les résultats R
Échantillons traités avec Lyse périmé.
Échec du contrôle H&H
HB *, HCT *, TCMH *,
Le rapport HB/HT n’est pas dans la plage attendue.
CCMH *, RDW *, RDW-SD *
Erreur de blanc HB
HB ..... , HCT ..... ,
TCMH ..... , CCMH ..... ,
RDW ..... , RDW-SD .....
La mesure de blanc HB dépasse les limites de seuil internes.
Erreur HB hors limites
HB....., HCT....., TCMH*,
CCMH*, RWD*, RDW-SD*
Le calcul HB est en dehors de la plage interne.
Température de
l’instrument hors plage
Tous les résultats R
Échantillons traités lorsque la température de l’instrument était
hors spécification.
Grandes cellules
Diff% R, Nb_Diff R
Nombre élevé d’évènements dans la zone des grandes cellules
immatures. Un Diff anormal apparaît avec ce message lorsque
qu’un test CD est demandé.
Événements Diff faible
Diff% R, Nb_Diff R
Le nombre total de cellules du scattergramme est inférieur
à 500.
Réf. B95008AA
6-5
6
Consultation résultats
Messages affichés
Tableau 6.3 Messages (Suite)
Message
Paramètre/Indicateur
Description
Chevauchement LY/MO
Diff% R, Nb_Diff R
Les populations de lymphocytes et monocytes se chevauchent
dans la zone de seuil LY/MO. Un Diff anormal apparaît avec ce
message lorsque qu’un test CD est demandé.
Chevauchement MO/NE
Diff% R, Nb_Diff R
Les populations de monocytes et neutrophiles se chevauchent
dans la zone de seuil MO/NE. Un Diff anormal apparaît avec ce
message lorsque qu’un test CD est demandé.
Chevauchement NE/LY
Diff% R, Nb_Diff R
Les populations de neutrophiles et lymphocytes se chevauchent
dans la zone de seuil NE/LY. Un Diff anormal apparaît avec ce
message lorsque qu’un test CD est demandé.
Chevauchement NE/EO
Diff% R, Nb_Diff R
Les populations de neutrophiles et d’éosinophiles se
chevauchent dans la zone de seuil NE/EO. Un Diff anormal
apparaît avec ce message lorsque qu’un test CD est demandé.
Échec du réglage optique
Diff% ..... , Diff# .....
Échec du réglage du voyant lumineux optique (hors limites de
27 500 ± 3 %)
Erreur moyenne du
voyant lumineux optique
NGB ..... , Diff% ..... ,
Diff# .....
La moyenne de perte de lumière axiale est inférieure à la limite
définie.
Erreur de valeur du voyant NGB .....
lumineux optique
La valeur de la perte de lumière axiale pour au moins une durée
du comptage est inférieure à la limite par défaut.
PLT1 : débris
PLT R, VMP R
Interférence avec des plaquettes plus petites. Interférence du
côté gauche de l’histogramme PLT entre le canal 0 et le seuil
CP1.
PLT2 : débris
PLT R, VMP R
Interférence avec des plaquettes plus grandes. Interférence du
côté droit de l’histogramme PLT entre les seuils CP2 et P.
PLT3 : Chevauchement
PLT/NGR
PLT R, VMP R
Les populations PLT et NGR se chevauchent entre les seuils CP3
et CP3-2.
Test de contamination
inter-échantillons PLT
PLT R, VMP R
La contamination inter-échantillons PLT estimée, basée sur la
valeur PLT de l’échantillon précédent et le pourcentage de
contamination inter-échantillons PLT attendu, pourrait affecter
de manière significative les résultats PLT pour le spécimen en
cours. Répéter l’analyse de l’échantillon.
Agrégats de NGR
NGR R, TCMH R, RDW R,
RDW-SD R
TCMH, RDW et RDW-SD dépassent tous les limites de seuil
(TCMH > 37,0 pg, RDW > 27,0 % et RDW-SD > 70,0 fL).
DIFF suspecte
Aucun
Le modèle varie par rapport à un différentiel normal. Diff
suspect apparaît lorsqu’un Diff anormal est présent.
Test de contamination
NGB R, Diff% R, Nb_Diff R
inter-échantillons NGB/Diff
6-6
La contamination inter-échantillons NGB estimée, basée sur la
valeur NGB de l’échantillon précédent et le pourcentage de
contamination inter-échantillons NGB attendu, pourrait affecter
de manière significative les résultats NGB pour le spécimen en
cours.
Réf. B95008AA
Consultation résultats
Révision des résultats de patient
Messages définitifs
Les messages définitifs sont affichés dans la boîte Indicateurs et messages sous le sous-titre Messages.
Les messages définitifs s’appuient sur les limites que vous avez sélectionnées en tant que plages de
référence ou limites d’action.
Tableau 6.4 Messages définitifs
Message définitif
Description
Anémie
NGR faible et/ou HB faible
Anisocytose
RDW élevé
Basophilie
BA et/ou Nb_BA haut
Éosinophilie
EO et/ou Nb_EO haut
Érythrocytose
NGR élevé
Hypochromie
TCMH faible
Grandes plaquettes
VMP élevé
Leucocytose
NGB élevé
Leucopénie
NGB faible
Lymphocytose
LY et/ou Nb_LY haut
Lymphopénie
LY et/ou Nb_LY bas
Macrocytose
VMC élevé
Microcytose
VMC faible
Monocytose
MO et/ou Nb_MO haut
Neutropénie
NE et/ou Nb_NE bas
Neutrophilie
NE et/ou Nb_NE haut
Petites plaquettes
VMP faible
Thrombocytopénie
PLT faible
Thrombocytose
PLT élevé
Révision des résultats de patient
Réf. B95008AA
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez l’icône appropriée pour afficher les résultats pour ce paramètre :
DIFF NGB ou PLT NGR.
3
Sélectionnez l’icône applicable pour consulter ces informations ou pour effectuer une action :
pour accéder à l’écran des résultats de patient.
, NFS,
6-7
6
Consultation résultats
Recherche de résultats de patient
Icône
Nom
Description
Rechercher
Affiche un écran où vous pouvez entrer des critères pour
rechercher un échantillon spécifique dans la base de données.
Voir Recherche de résultats de patient.
Afficher
Affiche les résultats individuels et les graphiques pour
l’échantillon sélectionné. Voir Affichage des résultats de patient.
Réexécuter
Place l’ID spécimen sur la liste de travaux pour permettre de
réexécuter le spécimen sans devoir ressaisir les informations du
spécimen. Voir Réexécution des échantillons patient.
Modifier
Vous permet d’éditer l’échantillon sélectionné. Voir Édition des
résultats de patient.
Aucune
correspondance
Affiche l’écran Résultats de patient sans correspondance dans
lequel les résultats d’un numéro de séquence automatique
généré par l’instrument pour identifier un échantillon (SID ;
Sample ID) peuvent être affectés au SID approprié. Voir
Correspondance des ID spécimen (SID) dans le CHAPITRE 7,
Liste de travaux.
Supprimer
Supprime les résultats pour le spécimen sélectionné. Voir
Suppression des résultats de patient.
Recherche de résultats de patient
1
Sélectionnez
2
Utilisez le clavier visuel pour saisir des informations et/ou utilisez les listes déroulantes pour
rechercher les résultats de patient par :
>
.
• ID spécimen
• ID patient
• Nom
• Prénom
• Date d’analyse (De [date], À [date])
• Séquence (De [nombre], A [nombre]) — Les séquences de cycle incluent toutes les analyses
de cycle (NGB, Contrôles journaliers, CQ, etc.) et il augmente de un à chaque qu’un cycle est
analysé.
• Échantillon (Tous, NGB ou PD)
6-8
Réf. B95008AA
Consultation résultats
Affichage des résultats de patient
• Test (Tous, NFS ou CD)
• Indicateurs:
— N’importe quel indicateurs — Tous les résultats de patient avec un indicateur, un code
ou un message
— Pas d’indicateurs — Tous les résultats de patient sans indicateur, code ou message
— Valeur qui n’est pas un paramètre — Tous les résultats de patient avec un code
— Indicateur de paramètre — Tous les résultats de patient avec un indicateur
— Hors référence — Tous les résultats de patient avec un paramètre hors des limites de
référence
— Hors action — Tous les résultats de patient avec un paramètre hors des limites d’action
3
Sélectionnez
pour confirmer votre sélection.
Affichage des résultats de patient
1
Sélectionnez
2
Mettez en surbrillance l’ID spécimen souhaité et sélectionnez
3
Faites défiler, si nécessaire, pour afficher d’autres résultats de patient.
.
.
Réexécution des échantillons patient
Réf. B95008AA
1
Sélectionnez
2
Mettez en surbrillance l’ID spécimen souhaité et sélectionnez
.
.
6-9
6
Consultation résultats
Édition des résultats de patient
3
Sélectionnez
4
Sur l’écran Analyse des échantillons — Résultats de patient, sélectionnez
lorsque vous
y êtes invité pour accuser réception de la réexécution de l’échantillon. La porte s’ouvre
automatiquement.
5
Vérifiez que l’ID spécimen suivant est correcte, et préparez et traitez l’échantillon. Voir
Exécution d’une analyse des échantillons dans le CHAPITRE 5, Analyse des échantillons.
à l’invite pour confirmer votre sélection.
Édition des résultats de patient
1
Sélectionnez
2
Mettez en surbrillance l’ID spécimen souhaité et sélectionnez
3
Dans l’écran Éditer les échantillons, sélectionnez Résultats ou Données démographiques.
4
Utilisez le clavier visuel ou les listes déroulantes pour modifier les données démographiques ou
les résultats. Les résultats ou les données démographiques édités sont signalés par un E.
.
.
REMARQUE Les éditions d’ID spécimen sont uniquement autorisées sur les ID spécimen autoséquencés.
5
6-10
Sélectionnez
à l’invite pour sauvegarder et accepter les modifications.
Réf. B95008AA
Consultation résultats
Suppression des résultats de patient
Suppression des résultats de patient
Lorsque des informations sur des résultats de spécimen ne sont plus nécessaires, ces résultats
peuvent être supprimés. Cela permet de libérer de l’espace dans la base de données et d’accéder plus
rapidement aux résultats.
1
Sélectionnez
2
Dans la fenêtre Sélectionner des échantillons, sélectionnez Tout, ou sélectionnez Séquence et
utilisez le clavier visuel pour saisir une série de chiffres.
3
Sélectionnez
4
Sélectionnez
>
.
.
pour confirmer votre sélection.
Transmission des résultats de patient
Réf. B95008AA
1
Sélectionnez
2
Dans la fenêtre Sélectionner des échantillons, sélectionnez Tout, ou sélectionnez Séquence et
utilisez le clavier visuel pour saisir une série de chiffres.
3
Sélectionnez
4
Sélectionnez
>
.
.
pour confirmer votre sélection.
6-11
6
Consultation résultats
Impression des résultats de patient
Impression des résultats de patient
1
Sélectionnez
2
Dans la fenêtre Sélectionner des échantillons, sélectionnez Tout, ou sélectionnez Séquence et
utilisez le clavier visuel pour saisir une série de chiffres.
3
Sélectionnez
4
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez Imprimer sous forme de tableau ou Imprimer sous
forme de rapport.
5
Sélectionnez
>
.
.
pour confirmer votre sélection.
Exportation des résultats de patient
6-12
1
Insérez une clé USB dans le port USB à l’avant de l’instrument.
2
Sélectionnez
3
Dans la fenêtre Sélectionner des échantillons, sélectionnez Tout, ou sélectionnez Séquence et
utilisez le clavier numérique à l’écran pour saisir une série de chiffres.
4
Sélectionnez
5
Sélectionnez
>
.
.
pour confirmer votre sélection.
Réf. B95008AA
Consultation résultats
Exportation des fichiers de données brutes
6
À la fin de l’exportation, sélectionnez
et retirez la clé USB du port USB.
Exportation des fichiers de données brutes
L’exportation des fichiers de données brutes concerne uniquement les résultats de patient et est
limitée au niveau d’accès de sécurité de l’Administrateur à des fins de dépannage.
Les fichiers res.csv sont supprimés tous les 30 jours.
1
Insérez une clé USB dans le port USB à l’avant de l’instrument.
2
Sélectionnez
3
Dans la fenêtre Sélectionner des échantillons, sélectionnez Tout, ou sélectionnez Séquence et
utilisez le clavier visuel pour saisir une série de chiffres.
4
Sélectionnez
>
.
.
REMARQUE Les fichiers exportés sont nommés par la date et l’heure.
Réf. B95008AA
5
Sélectionnez
6
À la fin de l’exportation, sélectionnez
pour exporter les fichiers.
et retirez la clé USB du port USB.
6-13
6
Consultation résultats
Exportation des fichiers de données brutes
6-14
Réf. B95008AA
CHAPITRE 7
Liste de travaux
Aperçu de la liste de travaux
La liste de travaux vous permet de saisir une liste de spécimens à traiter. Les entrées de la liste de
travaux sont triées par ordre croissant par ID spécimen, le plus petit numéro étant affiché en haut
de l’écran. Les informations de la liste de travaux peuvent être saisies en utilisant le clavier visuel
ou le scanner de codes-barres, ou elles peuvent être téléchargées à partir du système d’informations
du laboratoire.
Pendant le traitement des spécimens, si des entrées existent dans la liste de travaux, le champ
ID spécimen suivant dans l’écran Analyse des échantillons — Résultats de patient affiche
automatiquement le premier ID spécimen de la liste de travaux en tant que prochain spécimen à
traiter. L’ID spécimen est utilisé pour faire correspondre les résultats avec une entrée sur la liste de
travaux.
Lorsqu’il y a une correspondance, le spécimen traité est affiché en gras et l’entrée ne peut pas être
éditée ou supprimée. Lorsque l’échantillon est analysé avec succès, l’entrée dans la liste de travaux
est supprimée et enregistrée avec les résultats. Si une erreur se produit, empêchant l’analyse de se
terminer avec succès, l’entrée dans la liste de travaux n’est pas supprimée.
Configuration d’une demande de test
Réf. B95008AA
1
Sélectionnez
2
Mettez en surbrillance une ligne vide et sélectionnez
3
Dans l’écran Liste de travaux — Nouvelle demande, utilisez le clavier visuel pour saisir les
informations demandées et utilisez la liste déroulante pour sélectionner les informations, le cas
échéant :
.
.
7-1
Liste de travaux
Configuration d’une demande de test
Champ
Description
ID spécimen
Numéro d’identification attribué au spécimen
ID patient
Numéro d’identification attribué au patient
Nom
Nom de famille du patient.
Prénom
Prénom du patient.
Date de naissance
Date de naissance du patient
(le fait d’entrer la date de naissance calcule automatiquement l’âge)
Âge
Âge du patient ; sélectionnez également l’unité de mesure pour l’âge
Sexe
Sexe du patient
Date/heure du
prélèvement
Date et heure du prélèvement de l’échantillon
Jeu d’indicateurs
Type d’ensemble d’indicateurs à utiliser par âge et sexe (le fait d’entrer l’âge ou
la date de naissance, et le sexe, sélectionne automatiquement le jeu
d’indicateurs)
Médecin
Nom du médecin prescripteur
Emplacement
Emplacement du test
Test
Type de test (CD ou NFS)
Spécimen
Type d’échantillon
Observations
Observations à propos de cette demande
REMARQUE Si l’incrémentation automatique est activée, l’ID spécimen affiche la valeur d’ID autoincrémenté logique suivant. Si l’incrémentation automatique est désactivée, l’ID spécimen est
affecté par l’instrument (AutoSID), le code-barres, ou une saisie manuelle.
7-2
4
Sélectionnez
pour accepter les informations.
5
Sélectionnez
pour revenir à l’écran Liste de travaux et visualiser les demandes.
Réf. B95008AA
Liste de travaux
Éditer une demande de test
Éditer une demande de test
1
Sélectionnez
2
Mettez en surbrillance une demande de test, puis sélectionnez
3
Sur l’écran Liste de travaux, utilisez le clavier visuel pour éditer les informations :
.
Champ
Description
ID spécimen
Numéro d’identification attribué au spécimen
ID patient
Numéro d’identification attribué au patient
Nom
Nom de famille du patient.
Prénom
Prénom du patient.
Date de naissance
Date de naissance du patient
Âge
Âge du patient
Sexe
Sexe du patient
Date/heure du prélèvement
Date et heure du prélèvement de l’échantillon
Jeu d’indicateurs
Type d’ensemble d’indicateurs à utiliser par âge et sexe
Médecin
Nom du médecin prescripteur
Test
Type de test
Emplacement
Emplacement du test
Spécimen
Type d’échantillon
Observations
Observations à propos de cette demande
4
Réf. B95008AA
.
Sélectionnez
à l’invite pour accepter les informations.
7-3
7
Liste de travaux
Suppression d’une demande de test
Suppression d’une demande de test
1
Sélectionnez
2
Mettez en surbrillance une demande de test, puis sélectionnez
3
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez Demande sélectionnée ou Toutes les demandes.
.
.
REMARQUE. Si l’option Toutes les demandes est sélectionnée, toutes les entrées de la liste de travaux
sont supprimées.
4
Sélectionnez
pour confirmer votre sélection.
Correspondance des ID spécimen (SID)
Suivez cette procédure pour faire correspondre un ID spécimen auto-séquencé (formaté en tant que
Auto-SIDxxxxx) généré par l’instrument avec une entrée dans la liste de travaux.
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez
pour afficher les résultats de patient d’ID spécimen auto-séquencés sans
correspondance. Faites défiler la liste si nécessaire.
3
Dans l’écran Résultats de patient sans correspondance, sélectionnez le résultat du patient et
sélectionnez
7-4
.
.
Réf. B95008AA
Liste de travaux
Correspondance des ID spécimen (SID)
4
Dans l’écran Correspondance dans la liste de travaux, mettez en surbrillance l’entrée dans la
liste de travaux et sélectionnez
liste de travaux.
pour associer le résultat du patient à l’entrée dans la
REMARQUE Pour ajouter manuellement une entrée dans la liste de travaux, sélectionnez
entrez les informations sur le spécimen. Sélectionnez
Sélectionnez
et
pour accepter les informations.
pour quitter l’écran Liste de travaux — Nouvelle demande et sélectionnez
pour faire correspondre une entrée dans la liste de travaux avec le résultat du patient sans
concordance.
5
Réf. B95008AA
Sélectionnez
à l’invite pour accepter les informations. Le statut du SID (ID spécimen)
affiche M lorsqu’une correspondance a été trouvée pour l’échantillon.
7-5
7
Liste de travaux
Correspondance des ID spécimen (SID)
7-6
Réf. B95008AA
CHAPITRE 8
Arrêt
Effectuer un arrêt
Beckman Coulter recommande d’effectuer un arrêt une fois toutes les 24 heures. L’arrêt retire le
diluant et le remplace par un agent de nettoyage pendant 30 minutes. Il vérifie également la date de
péremption et le volume des réactifs. Si la date de péremption est dépassée, ou si le volume est bas,
le système vous invite à remplacer le réactif, ou à continuer et à consigner le réactif périmé dans les
journaux.
1
Dans le menu principal, sélectionnez
2
Sélectionnez
3
Dans la boîte de dialogue Arrêt, sélectionnez l’une des options suivantes :
.
.
• Couper l’alimentation de l’instrument après l’arrêt : l’instrument effectue un arrêt suivi
d’une mise hors tension.
• Effectuer les contrôles journaliers après l’arrêt : l’instrument est placé dans l’agent de
nettoyage pendant 30 minutes plus la durée indiquée dans le champ Temps supplémentaire
dans l’agent de nettoyage suivi des contrôles journaliers.
4
Utilisez le clavier numérique pour indiquer le Temps supplémentaire dans l’agent de nettoyage
(0 minute à 5 heures) pour des cycles de mise au repos supérieurs à 30 minutes.
5
Sélectionnez
6
Sélectionnez
.
pour commencer l’arrêt.
REMARQUE Le coin en bas à gauche sur l’écran affiche Procédure d’arrêt et le bouton d’alimentation
est rouge lorsque l’instrument s’éteint.
Réf. B95008AA
8-1
Arrêt
Arrêt d’urgence et mise hors tension/coupure de l’alimentation
Arrêt d’urgence et mise hors tension/coupure de l’alimentation
Le bouton d’alimentation et le voyant lumineux d’état se trouvent à l’avant de l’instrument. Voir
Figure 1.1, Vue de face du DxH 520 dans le CHAPITRE 1, Présentation du système.
Arrêt d’urgence
Un arrêt d’urgence est activé lorsque vous appuyez rapidement sur le bouton d’alimentation. Il
interrompra tout cycle en cours d’exécution. Pour récupérer d’un arrêt d’urgence, voir
Réinitialisation du diluteur dans le CHAPITRE 10, Dépannage.
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. Si l’arrêt d’urgence
(bouton d’alimentation) est enfoncé alors que la sonde est en position
d’aspiration, la sonde reste exposée. Soyez prudent car la sonde est pointue.
Exécutez le cycle de réinitialisation du diluteur pour rétracter (déplacer vers le
haut) la sonde. Voir Réinitialisation du diluteur dans le CHAPITRE 10, Dépannage.
Si la remise à zéro du diluteur échoue, n’ouvrez pas la porte échantillon parce que
la sonde peut être bloquée dans le bouchon du tube d’échantillon. N’ouvrez pas la
porte échantillon.
Arrêt en cours
Un arrêt est activé lorsque vous appuyez quelques secondes sur le bouton d’alimentation.
1
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez l’une des options suivantes :
•
pour effectuer un arrêt suivi d’une mise hors tension.
•
pour effectuer une mise hors tension.
Coupure de l’alimentation
Une coupure de l’alimentation est activée lorsque vous appuyez sur le bouton d’alimentation et le
maintenez enfoncé.
IMPORTANT Une coupure de l’alimentation n’est pas la meilleure méthode pour éteindre l’instrument. Si
vous avez besoin de débrancher l’instrument effectuer un arrêt (voir Arrêt en cours).
IMPORTANT En cas de panne électrique, le système cessera de fonctionner et toutes les données du cycle
en cours seront perdues. Si votre système est équipé d’une imprimante, assurez-vous qu’elle est
directement branchée à une prise électrique.
8-2
Réf. B95008AA
CHAPITRE 9
Configuration
Configuration du système
L’écran Configuration affiche plusieurs options pour configurer le système.
Configuration de l’accès sécurisé
Vous devez disposer d’un accès administrateur pour effectuer cette fonction. Pour plus
d’informations sur l’accès sécurisé, voir Niveaux d’accès dans l’ANNEXE A, Niveaux d’accès et
rapports.
1
Sélectionnez
2
Dans l’écran Configuration de l’accès sécurisé, sélectionnez
pour ajouter un utilisateur
OU pour éditer les informations existantes sur l’utilisateur, mettez en surbrillance l’utilisateur
et sélectionnez
>
.
.
3
Utilisez le clavier visuel pour entrer ou éditer les informations sur l’utilisateur. L’ID opérateur
doit contenir deux caractères et le mode de passe, six caractères.
4
Sélectionnez
à l’invite pour accepter les informations.
REMARQUE Pour supprimer les informations sur l’utilisateur, mettez l’utilisateur en surbrillance et
sélectionnez
l’utilisateur.
Réf. B95008AA
. Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez
pour supprimer
9-1
Configuration
Configuration du système
Configuration de la déconnexion automatique
Cette option de configuration exige un accès administrateur pour configurer l’heure de
déconnexion automatique.
1
Sélectionnez
2
Dans la boîte de dialogue Déconnexion automatique, utilisez le clavier visuel pour entrer une
valeur entre 1 et 60 minutes. La valeur par défaut est 60 minutes.
3
Sélectionnez
>
>
.
à l’invite pour accepter les informations.
REMARQUE Si le système reste inactif pendant plus longtemps que la durée définie, vous êtes
automatiquement déconnecté et l’écran de connexion s’affiche comme suit :
Pour vous connecter avec un autre ID opérateur, sélectionnez
9-2
.
Réf. B95008AA
Configuration
Configuration du système
Configuration de la date et l’heure
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez un format à partir de la liste déroulante dans Format de la date : MM/JJ/AAAA,
JJ/MM/AAAA, ou AAAA/MM/JJ.
3
Utilisez le clavier visuel pour entrer une date dans le champ Date.
4
Sélectionnez un format à partir de la liste déroulante dans Format de l’heure : 12 h ou 24 h.
5
Utilisez le clavier visuel pour entrer une heure dans le champ Heure.
6
Sélectionnez
>
.
à l’invite pour accepter les informations.
Configuration automatique du démarrage et des contrôles journaliers, et la
fréquence des cycles d’auto-nettoyage.
Lorsqu’elle est sélectionnée, cette option de configuration permet de mettre l’instrument sous
tension et d’effectuer automatiquement les contrôles journaliers. La fréquence des cycles d’autonettoyage peut aussi être configurée.
Réf. B95008AA
1
Sélectionnez
2
Dans l’écran Options de mise sous tension, utilisez le clavier visuel pour saisir une Heure de mise
sous tension pour mettre l’instrument sous tension lorsqu’il est hors tension et pour lancer
automatiquement les contrôles journaliers.
3
Si le format d’heure 24 heures n’est pas utilisé, sélectionnez une période de temps dans la liste
déroulante pour Matin/Après-midi : Matin ou Après-midi.
>
.
9-3
9
Configuration
Configuration du système
4
Sélectionnez le ou les jours de la semaine où les contrôles journaliers doivent être lancés
automatiquement.
REMARQUE L’instrument doit être dans un état approprié pour que la mise sous tension et les cycles
de contrôles journaliers se fassent. Par exemple, si l’instrument est déjà sous tension lorsque l’heure
de mise sous tension programmé est atteinte, le contrôle journalier automatique ne se fait pas.
5
Dans la boîte de dialogue Fréquence du cycle d’auto-nettoyage, utilisez le clavier visuel pour
entrer une valeur entre 25 et 50 cycles.
6
Sélectionnez
à l’invite pour accepter les informations.
Configuration du spécimen suivant
Cette option de configuration vous permet de configurer le test par défaut, NFS ou CD, et d’activer
ou de désactiver l’incrémentation automatique de l’ID spécimen.
1
Sélectionnez
2
Sur l’écran Configuration de l’échantillon suivant, sélectionnez une option pour le test par
défaut dans la liste déroulante pour la présentation Tube ouvert et la présentation Tube fermé :
NFS ou CD.
3
Sélectionnez Incrémentation automatique de l’ID spécimen, si nécessaire, et indiquez le nombre
à partir duquel commencer l’incrémentation automatique de l’ID spécimen.
4
Sélectionnez
>
.
à l’invite pour accepter les informations.
Configuration des options de l’imprimante
L’option de configuration vous permet de sélectionner l’imprimante, la taille du papier, le format du
rapport, et l’impression automatique pour les patients, les contrôles journaliers et l’assurance
qualité.
9-4
Réf. B95008AA
Configuration
Configuration du système
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez Imprimer automatiquement le rapport du patient si vous voulez qu’un rapport soit
imprimé après chaque analyse d’échantillon.
3
Sélectionnez le Format du rapport dans la liste déroulante et le type d’information sur
l’échantillon à imprimer. Pour des exemples de rapports, voir Rapports dans l’ANNEXE A,
Niveaux d’accès et rapports.
4
Sous Impression automatique, sélectionnez le type d’information d’assurance qualité à imprimer.
5
Sélectionnez Imprimante dans la liste déroulante.
>
avec Imprimante sous l’icône.
REMARQUE L’imprimante doit déjà être installée pour qu’elle apparaisse dans la liste déroulante.
6
Sélectionnez la Taille du papier dans la liste déroulante pour sélectionner une taille de papier
basée sur la capacité de l’imprimante.
7
Sélectionnez
à l’invite pour accepter les informations.
ATTENTION
Vérifier le fonctionnement de l’imprimante en examinant la sortie imprimée
disponible à chaque démarrage.
Configuration des intervalles de référence
Les intervalles de référence (affichés en tant que plages de référence à l’écran) comprennent les
limites hautes et basses des plages normales et d’action que votre administrateur définit pour vos
patients.
Les intervalles de référence sont utilisés pour indiquer qu’un résultat échantillon est hors des
intervalles normaux établis par votre laboratoire.
Sur l’écran Configuration de la plage de référence, vous pouvez configurer les plages d’âge pour les
plages de référence basées sur un âge et un sexe prédéfinis, définir quatre plages personnalisées,
ainsi que des plages d’action et des limites d’intervalle de référence pour la génération
d’indicateurs.
Réf. B95008AA
9-5
9
Configuration
Configuration du système
Lorsqu’un échantillon patient est analysé sur l’écran d’analyse des échantillons, le système choisit
automatiquement un jeu d’indicateurs basés sur l’âge et le sexe du patient, à moins que des
intervalles de référence n’aient été manuellement définis. Si l’âge et le sexe ne sont pas définis, le
jeu d’indicateurs par défaut est utilisé.
Beckman Coulter recommande aux laboratoires d’établir leurs propres intervalles en fonction de
leur population de patients actuelle et de configurer tous les jeux d’indicateurs en fonction.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. Configurez les intervalles de référence avec des
limites d’action et de référence avant de les sélectionner pour analyse afin de
garantir que les résultats élevés, faibles ou critiques sont signalés par des
indicateurs.
9-6
1
Sélectionnez
2
Modifiez les Jeux d’indicateurs pour plage d’âge, si nécessaire.
3
Pour les Jeux d’indicateurs personnalisés, utilisez le clavier visuel pour entrer les noms et
>
.
sélectionnez
pour enregistrer ces noms.
4
Sélectionnez
>
5
Dans l’écran Configuration des intervalles de référence, ouvrez la liste déroulante pour
sélectionner le type de patient.
6
Utilisez le clavier visuel pour entrer des valeurs pour chaque paramètre.
7
Faites défiler l’écran pour accéder à tous les paramètres.
8
Sélectionnez
pour éditer les limites de paramètres.
pour enregistrer les limites de paramètres.
Réf. B95008AA
Configuration
Configuration du système
REMARQUE Sélectionnez
pour supprimer les nouveaux paramètres créés et revenir aux jeux
d’indicateurs (7 par défaut et 4 intervalles personnalisés), si nécessaire.
Configuration des messages définitifs
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez l’une des options ci-dessous :
>
>
>
.
• Aucun — pour ne pas déclencher de messages définitifs
• Limites de la plage de référence — pour attribuer le message définitif applicable à
déclencher lorsque la valeur du paramètre est hors de la plage de référence
• Limites de la plage d’action — pour attribuer le message définitif applicable à déclencher
lorsque la valeur du paramètre est hors de la limite d’action
3
Sélectionnez
à l’invite pour confirmer votre sélection.
Configuration du SIL
Si votre instrument est connecté à un ordinateur hôte, vous pouvez transmettre les résultats
d’échantillon grâce à cette fonction.
Le récepteur hôte doit être conforme aux spécifications d’hôte ASTM pour cet instrument. Voir le
Host Transmission Manual (Manuel sur la transmission à l’informatique centrale) repris dans les
Documents associés pour plus d’informations.
Réf. B95008AA
1
Sélectionnez
2
Dans l’écran Configuration du SIL, sélectionnez
communication.
>
.
pour entrer les paramètres de
9-7
9
Configuration
Configuration du système
3
Utilisez le clavier visuel et les listes déroulantes pour entrer soit les paramètres Communication
Ethernet soit les paramètres Communication en série et sélectionnez
informations.
pour accepter les
REMARQUE Si vous n’apportez aucune modification et si vous voulez revenir à l’écran Configuration
du SIL, sélectionnez
.
4
Sélectionnez Activer SIL > En série ou Ethernet et entrez l’ID du dispositif à l’aide du clavier
visuel.
5
Sélectionnez Transmission automatique — Patient et sélectionnez le type d’échantillon dans les
options à transmettre automatiquement.
6
Sélectionnez Transmettre scattergramme DIFF et/ou Transmettre NGR et Histogramme PLT.
7
Sélectionnez
à l’invite pour confirmer votre sélection.
Exécution d’une sauvegarde ou d’une restauration
Une sauvegarde peut enregistrer les données, la configuration et les fichiers patients (.csv) sur une
clé USB. Une restauration peut restaurer des informations telles que les données patient et CQ, les
journaux et la configuration du système, lorsqu’elles sont sélectionnées, à son état de sauvegarde
précédent.
Lors de la première ouverture de session du mois, un rappel s’affiche si aucune sauvegarde n’a pas
été effectuée au cours des 30 derniers jours.
ATTENTION
Risque de détérioration du logiciel. Faites toujours une analyse antivirus du
support amovible (clé USB) avant de le brancher à instrument.
9-8
Réf. B95008AA
Configuration
Configuration du système
ATTENTION
Risque de perte de résultats. Sauvegardez régulièrement vos fichiers. Une
restauration écrase les informations sur le système. Avant de restaurer les
données, assurez-vous de faire une sauvegarde du système actuel. Les
sauvegardes manuelles écrasent toujours le contenu du disque dur de
sauvegarde.
1
Insérez la clé USB dans le port USB de l’instrument.
IMPORTANT Les sauvegardes écrasent toujours le contenu actuel de la clé USB.
2
Sélectionnez
3
Sauvegarder ou restaurer les informations :
>
.
• Pour effectuer une sauvegarde, sélectionnez les éléments à sauvegarder et sélectionnez
.
REMARQUE Si la clé USB ne contient pas suffisamment d’espace, la sauvegarde ne se fera pas.
• Pour effectuer une restauration, sélectionnez les éléments à restaurer et sélectionnez
.
4
Sélectionnez
5
À la fin du processus de sauvegarde ou de restauration, retirez la clé USB du port USB.
6
Appliquez les données restaurées à partir de la clé USB :
• Sélectionnez
à l’invite pour commencer le processus de sauvegarde ou de restauration.
pour accepter les informations.
• Éteignez l’instrument. Voir Arrêt en cours dans le CHAPITRE 8, Arrêt.
• Allumez l’instrument pour afficher les informations restaurées. Voir
Connexion/déconnexion dans le CHAPITRE 3, Démarrage et contrôles journaliers.
Réf. B95008AA
9-9
9
Configuration
Configuration du système
Mise à jour du logiciel
IMPORTANT Effectuer une sauvegarde avant de mettre à jour le logiciel.
1
Sélectionnez
2
Insérez la clé USB dans le port USB de l’instrument et sélectionnez
la clé USB est dans le port USB.
3
Vérifiez que le niveau de révision à l’écran correspond à l’étiquette sur la clé USB, et
sélectionnez
>
.
pour confirmer que
pour mettre à jour le logiciel.
ATTENTION
Risque de détérioration du logiciel. Assurez-vous d’avoir sélectionné le bon fichier
logiciel pour remplacer le fichier logiciel existant sur l’instrument.
4
Attendez que le système vous indique la fin de la mise à jour, sélectionnez
terminer le processus de mise à jour du logiciel et l’instrument s’éteindra.
5
Retirez la clé USB du port USB.
6
Allumez l’instrument.
7
Vérifiez la version du logiciel en sélectionnant
>
pour
.
Configuration de l’imprimante administrateur
Vous devez disposer d’un accès administrateur pour effectuer cette fonction.
Cette options de configuration vous permet d’installer une nouvelle imprimante, sélectionner une
imprimante par défaut et, si nécessaire, supprimer la file d’attente d’impression, de mettre
l’impression en pause ou de reprendre l’impression. Voir Imprimante — En option dans le
CHAPITRE 1, Présentation du système pour plus d’informations.
9-10
Réf. B95008AA
Configuration
Configuration du système
Les capacités d’impression sans fil doivent être désactivées et les imprimantes ne doivent pas être
connectées au réseau du laboratoire. Pour plus d’informations sur la désactivation du paramètre
sans fil de l’imprimante, contactez votre représentant Beckman Coulter.
1
Branchez le câble USB de l’imprimante dans un des ports USB à l’arrière de l’instrument.
2
Connectez l’imprimante à la prise électrique.
3
Assurez-vous que l’imprimante est correctement connectée à la prise d’alimentation de
l’établissement et allumez l’imprimante.
4
Sélectionnez
>
(avec Imprimante admin. sous l’icône) pour accéder à l’écran
Configuration de l’imprimante. L’imprimante connectée est affichée sur l’écran en tant que Non
installée.
5
Sélectionnez le nom de l’imprimante à installer dans la colonne 1.
6
Sélectionnez
7
Sélectionnez le pilote de l’imprimante approprié dans la liste.
8
Sélectionnez
pour installer l’imprimante. Lorsque la configuration est terminée,
l’imprimante affiche Installée.
9
Configurer une imprimante comme imprimante par défaut en sélectionnant le nom de
pour accuser réception de la configuration.
l’imprimante sur l’écran Configuration de l’imprimante et sélectionnez
.
REMARQUE Pour imprimer une page test, sélectionnez l’imprimante dans la liste et
sélectionnez
Réf. B95008AA
.
9-11
9
Configuration
Réactifs
10 Supprimez la file d’attente d’impression, si nécessaire, en sélectionnant l’imprimante et
.
REMARQUE Pour mettre l’imprimante en pause, sélectionnez
. Sélectionnez
pour reprendre l’impression.
Réactifs
L’écran Réactifs affiche les réactifs et les quantités disponibles. Vous pouvez sélectionner
pour voir le statut des réactifs.
indique que les réactifs sont pleines.
indique qu’il reste 10 cycles pour une fourniture. L’instrument peut poursuivre le
traitement.
indique qu’il ne reste aucun cycle pour une fourniture. L’instrument ne peut pas poursuivre
le traitement avant que vous ne remplaciez les réactifs. Voir Configuration ou remplacement des
réactifs.
Configuration ou remplacement des réactifs
IMPORTANT Suivez le protocole de votre laboratoire pour enregistrer les numéros de lot de réactif et les
dates de péremption des nouveaux réactifs Série DxH 500.
9-12
1
Assurez-vous de disposer de toutes les réactifs nécessaires.
2
Sélectionnez
>
.
Réf. B95008AA
Configuration
Réactifs
3
Utiliser le scanner de codes-barres pour lire le code-barres 2D du récipient de réactifs et
prévisualisez-le dans la section Aperçu des informations. Si aucun scanner de codes-barres n’est
connecté, sélectionnez le nom du réactif en utilisant la liste déroulante et entrez manuellement
l’information demandée en utilisant les valeurs comme dans l’exemple suivant :
Nombre
Description
1
Nombre de récipient
2
Code de validation
3
Numéro de lot
4
Date de péremption
4
Sélectionnez
5
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez Remplacer un autre réactif si vous remplacez
plusieurs réactifs ou sélectionnez Amorcer un ou plusieurs réactif(s) lorsque vous avez terminé
pour accepter les informations.
les remplacements, puis sélectionnez
pour confirmer votre sélection.
AVERTISSEMENT
Risque de blessure si la peau entre en contact avec le flacon de réactif, son
contenu et les tuyaux associés. Le flacon de réactif et les tuyaux associés doivent
être manipulés avec précaution. Reportez-vous aux SDS (fiches signalétiques)
pour plus d’informations. Nettoyez immédiatement les déversements accidentels.
Assurez-vous que le flacon est clairement étiqueté et éliminez son contenu
conformément aux réglementations locales et aux bonnes pratiques du
laboratoire. Pour éviter tout déversement accidentel des réactifs, ne placez pas
les flacons de réactifs au-dessus de l’instrument.
Réf. B95008AA
9-13
9
Configuration
Réactifs
ATTENTION
Risque de résultats erronés. Assurez-vous que les tubes de récupération de
réactifs restent propres et à l’abri de toute contamination. Évitez tout contact
avec la partie intérieure du flacon de réactif ou son contenu, les surfaces du
laboratoire ou vos mains gantées.
ATTENTION
Risque de résultats erronés ou de détérioration de l’équipement. Pour éviter
d’obtenir des résultats erronés ou d’endommager l’équipement, placez les
flacons de réactif au même niveau que l’instrument. Ne placez pas les flacons de
réactif au-dessus ou en dessous de l’instrument. Conservez et utilisez les réactifs
conformément aux instructions fournies avec le réactif. Notez les dates de
péremption et les jours de stabilité du flacon ouvert pour tous les réactifs.
N’utilisez pas de réactifs périmés. Lorsque vous changez le diluant de série
DxH 500, la lyse de série DxH 500 ou l’agent de nettoyage de série DxH 500,
assurez-vous d’amorcer le réactif et d’exécuter un cycle de bruit de fond pour voir
si les résultats sont conformes aux limites des valeurs résiduelles.
6
Prenez un nouveau flacon de réactif et transférez le tube de récupération de réactif dans le
nouveau flacon de réactif.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. Assurez-vous que le bloc d’alimentation externe et
autres composants électriques externes ne soient pas en contact avec la tubulure
de prélèvement du diluant à l’arrière de l’instrument.
REMARQUE Le manchon bleu au-dessus du bouchon désigne le flacon d’agent nettoyant. Le manchon
jaune au-dessus du bouchon désigne le flacon d’agent de lyse.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. Assurez-vous que le ou les réactifs sont connectés
avant l’amorçage.
7
9-14
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez
remplacement. L’instrument amorcera les réactifs.
à l’invite pour confirmer le
Réf. B95008AA
Configuration
Vérification des cycles
REMARQUE Pour amorcer manuellement les réactifs, sélectionnez
pour amorcer tous les
réactifs. Pour amorcer un seul réactif, sélectionnez Amorcer le diluant, Amorcer la lyse ou
Amorcer l’agent de nettoyage. Sélectionnez
8
pour confirmer votre sélection.
Exécutez un comptage résiduel de contrôle. Voir Exécuter un comptage résiduel dans le
CHAPITRE 3, Démarrage et contrôles journaliers.
Vérification des cycles
L’écran Compteur de cycles présente des informations sur le nombre de paramètres analytiques
(NGB et PD), l’instrument, l’assurance qualité et les analyses diagnostiques que l’instrument a
effectués. Ceci est utile à des fins de suivi et pour l’alignement du compteur de cycles lorsque des
procédures de nettoyage ou de remplacement sont nécessaires.
1
Sélectionnez
.
2
Sélectionnez
.
3
Passez les cycles en revue dans chaque zone.
Configuration et édition des contrôles
1
Sélectionnez
>
.
ATTENTION
Risque d’informations erronées. N’utilisez pas de tiret lorsque vous entrez les
numéros de lot des contrôles Beckman Coulter. Un tiret ferait que les résultats du
contrôle seraient stockés comme résultats de patient.
Réf. B95008AA
9-15
9
Configuration
Configuration ou remplacement du rejet des déchets
2
Effectuez l’une des opérations suivantes :
• Pour ajouter un fichier de contrôle, mettez en surbrillance une ligne vide, sélectionnez
, et utilisez le scanner de codes-barres pour lire les codes-barres 2D sur le tableau
des valeurs cibles. Pour ajouter des informations manuellement, sélectionnez
utilisez le clavier visuel (n’utilisez pas de trait d’union).
et
• Pour éditer un fichier témoin, mettez en surbrillance le fichier témoin existant,
sélectionnez
informations.
3
, et utilisez le clavier visuel pour éditer manuellement les
Sélectionnez Transmission automatique pour transmettre automatiquement les résultats du
contrôle à votre SIL ou Impression automatique pour imprimer automatiquement les résultats
du contrôle.
REMARQUE Pour supprimer un fichier de contrôle, voir Suppression des fichiers témoins dans le
CHAPITRE 4, Contrôle de qualité.
4
Sélectionnez
à l’invite pour confirmer votre sélection.
Configuration ou remplacement du rejet des déchets
Les déchets peuvent être éliminés via une vidange ouverte ou un réservoir à déchets.
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. Si la ligne des déchets est
raccordée à une canalisation ouverte au lieu de l’être à un récipient à déchets, la
ligne des déchets doit être fixée à la canalisation afin que le tube ne puisse pas
accidentellement s’en détacher. Si vous utilisez cette méthode d’évacuation des
déchets, Beckman Coulter recommande de programmer un entretien de routine
des tuyaux de vidange du laboratoire. La longueur de la ligne des déchets ne doit
pas excéder 1,50 m (5 pi).
9-16
Réf. B95008AA
Configuration
Configuration ou remplacement du rejet des déchets
AVERTISSEMENT
Risque de contamination biologique et de dommage à l’équipement. Ne remplacez
pas le récipient à déchets lorsque l’instrument exécute un cycle. Le récipient à
déchets doit être situé dans un endroit sûr et l’intégrité des connexions des
tuyaux doit être vérifiée régulièrement. Utilisez des équipements de protection
appropriés lorsque vous effectuez cette procédure. Veillez à placer le récipient à
déchets sur l’étagère inférieure ou sur le sol, mais jamais au même niveau que
l’instrument.
Lorsque le système est configuré pour utiliser un réservoir à déchets, le système confirme un
volume vide suffisant pour terminer l’analyse.
indique que le volume des déchets est de 80 %. L’instrument peut poursuivre le traitement.
indique que le volume des déchets est de 90 %. L’instrument ne peut pas poursuivre le
traitement avant que vous ne vidiez le récipient à déchets.
L’instrument affiche un message lorsque le réservoir à déchets est plein.
1
Sélectionnez
>
.
AVERTISSEMENT
Risque de blessure. Risque de contamination biologique si la peau entre en
contact avec le récipient à déchets, son contenu et les tuyaux associés. Le
récipient à déchets et les tuyaux qui y sont associés peuvent contenir des produits
biologiques résiduels qui doivent être manipulés avec soin. Évitez tout contact
avec la peau et nettoyez immédiatement les déversements accidentels. Éliminez
le contenu du récipient à déchets conformément aux réglementations locales et
aux bonnes pratiques du laboratoire.
AVERTISSEMENT
Risque de contamination biologique. Si vous avez sélectionné Récipient à déchets
pour le rejet des déchets de votre instrument, vous devez saisir la taille du
récipient que vous utilisez. La taille par défaut du récipient à déchets est de
2 000 mL (0,53 gal). Si vous ne sélectionnez pas la bonne taille de récipient à
déchets, un déversement de matériel présentant un risque biologique pourrait se
produire ou vous pourriez devoir remplacer le récipient avant qu’il ne soit plein.
Réf. B95008AA
9-17
9
Configuration
Configuration des rapports
2
Dans la boîte de dialogue Déchets, sélectionnez Déchets extérieurs (Vidange) ou pour configurer
ou remplacer un récipient à déchets, sélectionnez Récipient à déchets. Si vous sélectionnez
Récipient à déchets, entrez la capacité du récipient à déchets, puis sélectionnez
confirmer votre sélection.
pour
3
Obtenez un nouveau récipient de déchets et connectez-le au tuyau à déchets. Si vous remplacez
un récipient à déchets plein, placez un nouveau récipient à déchets à proximité du récipient à
déchets plein et transférez le tuyau du récipient à déchets plein vers le nouveau récipient à
déchets.
4
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez
pour effectuer la mise à jour.
Configuration des rapports
Suivez ces procédures pour configurer les formats de rapport.
Configuration des informations d’en-tête
9-18
1
Sélectionnez
2
Dans l’écran Configuration des données d’en-tête, sélectionnez un champ et entrez les
informations d’en-tête à afficher sur les rapports.
3
Répétez l’étape précédent jusqu’à avoir saisi toutes les informations d’en-tête des rapports.
4
Sélectionnez
pour accepter les informations.
5
Sélectionnez
à l’invite pour accepter les informations.
>
.
Réf. B95008AA
Configuration
Configuration des rapports
Configuration des options d’impression de rapport
1
Sélectionnez
2
Dans l’écran Options d’impression du rapport, sélectionnez les options applicables sous Choix
d’options pour le Rapport Patient Format 1 ou le Rapport Patient Format 2. Voir Rapports dans
l’ANNEXE A, Niveaux d’accès et rapports pour les exemples des rapports disponibles.
>
.
REMARQUE Les options de format du rapport sélectionnées doivent correspondre au Format du
rapport sélectionné dans la configuration de l’imprimante. Voir Configuration des options de
l’imprimante.
3
Sélectionnez
à l’invite pour confirmer votre sélection.
Configuration des unités des paramètres
L’écran Configurer les unités des paramètres vous permet de définir le format des résultats des
paramètres.
1
Sélectionnez
2
Dans l’écran Configurer les unités des paramètres, sélectionnez une option sous Unités.
>
.
REMARQUE Utilisez les flèches haut et bas pour naviguer dans la liste des paramètres.
3
Réf. B95008AA
Sélectionnez
à l’invite pour confirmer votre sélection.
9-19
9
Configuration
Configuration de XB
Configuration de XB
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez Activer XB.
>
.
Utilisez le clavier visuel pour saisir les détails des paramètres.
REMARQUE Sélectionnez
pour restaurer les détails des paramètres par défaut, si nécessaire.
3
Sélectionnez une option de notification d’alerte.
4
Sélectionnez des options sous Options du rapport.
5
Sélectionnez
pour confirmer votre sélection.
Configuration de XM
9-20
1
Sélectionnez
>
2
Sélectionnez
pour saisir les détails des paramètres.
3
Sélectionnez NFS ou DIFF et utilisez le clavier visuel pour saisir les valeurs des paramètres.
4
Sélectionnez
5
Sélectionnez Activer NFS et/ou Activer DIFF et entrez une taille de série.
.
pour accepter les informations.
Réf. B95008AA
Configuration
Configuration du CQ étendu
6
Sélectionnez une option de notification d’alerte.
7
Sélectionnez des options sous Options du rapport.
8
Sélectionnez
pour accepter les informations.
Configuration du CQ étendu
1
Sélectionnez
2
Sélectionnez Activer le CQ étendu.
3
Utilisez le clavier visuel pour sélectionner les limites d’erreur pour les éléments listés.
4
Sélectionnez un Format du rapport CQ.
5
Configurez une Notification d’alerte.
• Sélectionnez
>
.
.
• Entrez les informations de l’étiquette du paramètre.
• Sélectionnez
6
Réf. B95008AA
Sélectionnez
pour accepter les informations.
pour confirmer votre sélection.
9-21
9
Configuration
Configuration des informations IQAP
Configuration des informations IQAP
1
Sélectionnez
2
Utilisez le clavier visuel pour saisir les informations suivantes :
>
.
• Numéro de participant
• Numéro de laboratoire
• ID d’instrument IQAP
• Numéro d’instrument
3
Sélectionnez
à l’invite pour accepter les informations.
Impression d’un rapport de configuration
Les rapports de configuration peuvent être imprimés pour l’assurance qualité, les rapports ou le
système.
1
Sélectionnez
2
Dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez l’une des options suivantes :
>
>
.
• Paramétrage du contrôle de qualité
• Configuration des rapports
• Configuration du système
3
9-22
Sélectionnez
pour confirmer votre sélection.
Réf. B95008AA
CHAPITRE 10
Dépannage
Précautions/dangers
Les précautions et les dangers lors du dépannage sont indiqués comme suit dans l’Avis de sécurité :
• Alertes de type Avertissement et Attention
• Consignes de sécurité
• Précautions électroniques
• Informations sur la compatibilité électromagnétique (CEM)
• Risques biologiques
• Pièces mobiles
• Risque de contamination biologique
• Étiquettes de danger en fonctionnement
• Élimination des instruments électriques
• Avertissement sur l’élimination des déchets
• Marquage CE
• Avis RoHS
Dépannage général
Tableau 10.1 Dépannage général
Réf. B95008AA
Description
Cause probable
Action
Mise sous tension
impossible.
Le cordon d’alimentation est mal
branché au mur ou à
l’instrument.
1. Mettez l’instrument hors tension.
2. Assurez-vous que le cordon
d’alimentation est correctement
branché à l’instrument et à la prise
murale.
3. Mettez l’instrument sous tension.
Bouton de MARCHE/ARRÊT
défectueux
Contactez votre représentant de de
Beckman Coulter.
Mauvais fonctionnement de
l’instrument
Contactez votre représentant de de
Beckman Coulter.
10-1
Dépannage
Dépannage général
Tableau 10.1 Dépannage général (Suite)
10-2
Description
Cause probable
Action
Bruit de grincement
pendant la mise sous
tension initiale.
Des composants peuvent s’être
détachés pendant le transport.
Les moteurs ne parviennent pas
en position initiale.
1. Mettez l’instrument hors tension.
2. Ouvrez la porte du diluteur.
3. Vérifiez qu’aucun composant ou
élément ne s’est détaché.
4. Mettez l’instrument sous tension.
5. Si le bruit persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
L’écran reste noir. Le
bouton d’alimentation est
allumé.
Écran défectueux ou connecteurs Contactez votre représentant de de
desserrés.
Beckman Coulter.
Absence d’aspiration.
Le cycle ne démarre pas.
L’instrument n’est pas sur l’écran 1. Accédez à l’écran Analyse des
Analyse des échantillons —
échantillons — Résultats de patient.
Résultats de patient.
2. Contactez votre représentant de de
Beckman Coulter.
L’échantillon coule goutte
à goutte de la zone de la
sonde après l’aspiration.
Du liquide coule goutte à goutte
de l’intérieur de la sonde.
Il y a une fuite dans le circuit d’aspiration.
Défaillance d’un composant.
Contactez votre représentant de de
Beckman Coulter.
1. Ouvrez la porte du diluteur.
2. Vérifiez que les tuyaux ne sont pas
desserrés sur la sonde ou la tête de
rinçage.
Réf. B95008AA
Dépannage
Dépannage général
Tableau 10.1 Dépannage général (Suite)
Description
Cause probable
Action
NGB/DIFF, NGR et/ou PLT
excèdent les limites de
valeurs résiduelles. La
valeur résiduelle HB peut
également être élevée
dans certains cas.
Les lignes réactifs ne sont pas
correctement connectées.
Vérifiez que les lignes des réactifs sont
serrées et aux bons endroits sur les
flacons de réactifs.
L’instrument n’a pas été
correctement amorcé.
Exécutez la fonction Amorcer depuis
l’écran Réactifs. Voir Configuration ou
remplacement des réactifs dans le
CHAPITRE 9, Configuration.
Diluant contaminé
1. Remplacez le diluant.
2. Exécutez la fonction d’amorçage du
diluant depuis l’écran Réactifs.
3. Exécutez la procédure Exécution des
contrôles journaliers dans le
CHAPITRE 3, Démarrage et contrôles
journaliers.
Bacs contaminés
1. Exécutez la procédure Nettoyage des
bacs dans CHAPITRE 12, Procédures
de nettoyage.
2. Exécutez la procédure Exécution des
contrôles journaliers dans
CHAPITRE 3, Démarrage et contrôles
journaliers.
Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
NGB, NGR et/ou PLT faibles Il se peut que l’ouverture NGB ou
ou sans résultats
NGR soit bouchée
Réf. B95008AA
1. Exécutez la procédure Nettoyage par
contre-pression des orifices dans
CHAPITRE 12, Procédures de
nettoyage.
2. Exécutez la procédure Nettoyage des
bacs dans CHAPITRE 12, Procédures
de nettoyage.
3. Exécutez la procédure Exécution des
contrôles journaliers dans
CHAPITRE 3, Démarrage et contrôles
journaliers.
4. Si le problème persiste, contactez
votre représentant Beckman Coulter.
10-3
10
Dépannage
Dépannage individuel
Tableau 10.1 Dépannage général (Suite)
Description
Cause probable
Action
Paramètres DIFF incorrects Il se peut que l’ouverture NGB
ou sans résultats
soit bouchée
1. Exécutez la procédure Nettoyage par
contre-pression des orifices dans
CHAPITRE 12, Procédures de
nettoyage.
2. Exécutez la procédure Nettoyage des
bacs dans CHAPITRE 12, Procédures
de nettoyage.
3. Exécutez la procédure Exécution des
contrôles journaliers dans
CHAPITRE 3, Démarrage et contrôles
journaliers.
4. Si le problème persiste, contactez
votre représentant Beckman Coulter.
Tous les paramètres
affichent des codes
1. Vérifiez le mode d’analyse de
l’échantillon sur l’écran de résultats.
2. Répétez l’analyse dans le bon mode.
L’échantillon a été analysé dans
un mode incorrect (NGB au lieu
de PD ou vice versa)
Dépannage individuel
Certaines des procédures de dépannage de cette section exigent d’accéder aux procédures de
diagnostic.
Vérification de la version du logiciel
1
Sélectionnez
2
Vérifiez la version du logiciel et sélectionnez
>
.
pour terminer votre vérification.
Affichage des journaux
Les journaux sont des messages qui sont utilisés pour conserver une trace des activités et
modifications du système, et qui apportent des informations relatives aux avertissements et erreurs
du système.
10-4
Réf. B95008AA
Dépannage
Dépannage individuel
1
Sélectionnez
2
Dans l’écran Journal d’événements — Tous, sélectionnez un journal d’événements :
Journal
.
Icône
Tous les
journaux
Traçabilité
Avertissement
Erreur
Contrôles
journaliers
Réactifs
Exportation des journaux
Réf. B95008AA
1
Insérez une clé USB dans le port USB à l’avant de l’instrument.
2
Dans le menu principal, sélectionnez
3
Sélectionnez
exporter.
.
pour exporter tous les journaux OU sélectionnez un journal spécifique à
10-5
10
Dépannage
Dépannage de l’assurance qualité
4
Sélectionnez
5
Dans la fenêtre Exporter un journal, sélectionnez
6
Retirez la clé USB du port USB.
.
à l’invite pour exporter les fichiers.
Dépannage de l’assurance qualité
Suivez les actions dans le tableau suivant pour résoudre les problèmes liés à l’assurance qualité.
Tableau 10.2 Dépannage — Assurance qualité
Procédure
Problème
Action
Contrôle de
qualité
Le paramètre est en
dehors de la valeur
cible.
Voir Si un contrôle est hors plage dans le CHAPITRE 4,
Contrôle de qualité.
Calibration
• %CV
• Fact. % Diff
• Delta Diff
Contactez votre représentant de de Beckman Coulter.
Répétabilité
> Limite CV %
• Assurez-vous que les procédures de maintenance
programmées ont été effectuées.
• Utilisez un échantillon dans les plages notées dans la
spécification.
• Vérifiez la présence d’une valeur aberrante.
• Répétez le test.
• Si la répétabilité échoue de nouveau, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Contamination
> limite de
inter-échantillons contamination interéchantillons %
10-6
• Prenez du diluant fraîchement préparé.
• Recommencez le test de contamination inter-échantillons.
• Contactez votre représentant de de Beckman Coulter.
Réf. B95008AA
Dépannage
Messages d’événement
Messages d’événement
Tableau 10.3 Messages d’événement
Message d’événement
Cause/Conséquence
Action
Erreur de vidange du bac
Cause : Défaillance du vidage
pendant la vidange du bac lors du
cycle d’analyse.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Effectuez Nettoyez le filtre du bac NGB. dans
CHAPITRE 12, Procédures de nettoyage.
Pendant la procédure de nettoyage, vérifiez
l’intégrité du filtre du bac.
3. Si le filtre du bac est endommagé ou que le
problème se reproduit, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Cycle d’eau de Javel
terminé. Effectuer un arrêt
et les contrôles journaliers.
Cause : Tentative de lancement d’un
cycle non autorisé après un cycle
d’eau de Javel.
Conséquence : Le cycle est refusé.
Cycle d’eau de Jave
interrompu
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics, le cas échéant.
2. Effectuez un arrêt et les contrôles journaliers.
3. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Cause : Le cycle d’eau de Javel a été 1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
interrompu. Par exemple, l’opérateur
a effectué un arrêt d’urgence,
2. Relancez le cycle d’eau de Javel.
l’opérateur a lancé une mise hors
3. Si le problème persiste, contactez votre
tension, pas de tension c.a. (coupure
représentant Beckman Coulter.
de courant), etc.
Conséquence : Nouvelle entrée dans
le journal des événements
Impossible d’analyser les
spécimens car la
température du réactif est
hors plage
Cause : La température du réactif est 1. Attendez 5 minutes. Effectuez une
Réinitialisation du diluteur depuis l’écran
< cible - 2,5 °C (36,5 °F).
Diagnostics.
Conséquence : L’échantillon exécuté
2.
Si le problème persiste, contactez votre
est inaccessible et la fonction
représentant Beckman Coulter.
d’abaissement de la sonde est
désactivée. Les échantillons ne
peuvent pas être traités.
Erreur de vidage pendant
numération
Cause : Une erreur de vidage s’est
produite pendant la phase de
numération lors du cycle d’analyse
OU la vérification de la stabilité du
vidage a échoué pendant le
décompte de vidage.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Réf. B95008AA
10-7
10
Dépannage
Messages d’événement
Tableau 10.3 Messages d’événement (Suite)
Message d’événement
Cause/Conséquence
Porte diluant ouverte
Cause : La porte du diluteur s’est
ouverte pendant le cycle ou n’a pas
été correctement fermée OU le
commutateur de verrouillage de la
porte du diluteur ne fonctionne pas.
Le réglage de la DEL HB
a échoué
Cause : Échec du réglage du voyant
lumineux HB
1. Fermez la porte du diluteur. Effectuez une
Réinitialisation du diluteur depuis l’écran
Diagnostics.
2. Effectuez une Vérifier les capteurs depuis
l’écran Diagnostics. Vérifiez qu’il y a une coche
dans la section Porte du diluteur, si la porte est
Conséquence : Le cycle est refusé ou
fermée.
interrompu.
3. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Conséquence : Le résultat
d’hémoglobine n’est pas valable.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si cela se produit lors des contrôles journaliers,
recommencez les contrôles journaliers. Si le
problème se reproduit, effectuez un Cycle d’eau
de Javel depuis l’écran Diagnostics.
3. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Vérifiez que la température du laboratoire se
situe dans les limites de température de
fonctionnement de l’instrument.
2.
Si le problème persiste, contactez votre
Conséquence : L’échantillon exécuté
représentant Beckman Coulter.
est autorisé. Tous les résultats sont
signalés par un R.
Température de
l’instrument hors plage
Cause : Température de l’instrument
< 18 °C (64,4 °F) ou > 34,5°C
(94,1°F)
Support de tubes incorrect
Cause : Type du support de tubes
incorrect
Température maximum du
réactif atteinte. Le
chauffage s’est arrêté.
Cause : Température du réactif >
60 °C (140 °F)
Pas d’eau de Javel dans
le bac
Cause : De l’air a été détecté lors du
cycle d’eau de Javel, ou une absence
d’eau de Javel dans le bac.
1. Assurez-vous que le bon support de tubes est
utilisé.
Conséquence : Aucune analyse n’est 2. Recalez le support de tubes. Voir Retrait et
remplacement du support de tubes dans le
traitée.
CHAPITRE 13, Procédures de
remplacement/réglage.
3. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Mettez l’instrument hors tension. Attendez
15 minutes. Mettez l’instrument sous tension et
connectez-vous. Effectuez une Réinitialisation
Conséquence : L’échantillon exécuté
du diluteur depuis l’écran Diagnostics.
est inaccessible. Les échantillons ne
2.
Si le problème persiste, contactez votre
peuvent pas être traités.
représentant Beckman Coulter.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
10-8
Action
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Relancez le cycle d’eau de Javel et vérifiez que
de l’eau de Javel est ajoutée au bac à l’invite.
3. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Réf. B95008AA
Dépannage
Messages d’événement
Tableau 10.3 Messages d’événement (Suite)
Message d’événement
Cause/Conséquence
Action
Pas d’eau déionisée dans
le bac
Cause : Il n’y a pas d’eau déionisée
dans le bac.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Recommencez le cycle d’eau de Javel et
assurez-vous que l’eau déionisée est ajoutée au
bac à l’invite.
3. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Aucun diluant
1. Assurez-vous que le tuyau de prélèvement du
Cause : Une défaillance du vidage
diluant à l’arrière de l’instrument n’est pas
s’est produite au début de la vidange
pincé ou obstrué. Assurez-vous qu’il reste du
du bac : pas de diluant.
diluant.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
2. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
s’est produit.
l’écran Diagnostics.
3. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Pas de support de tubes
disponible
Cause : Aucun support de tubes
trouvé lors de l’analyse.
Erreur position initiale de
la sonde
Cause : Erreur position initiale. Sonde 1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
à moteur.
2.
Si le problème persiste, contactez votre
Conséquence : Un arrêt d’urgence
représentant Beckman Coulter.
s’est produit.
Position initiale de la sonde
non trouvée. Effectuez un
cycle de remise à zéro du
diluteur. N’essayez pas
d’ouvrir la porte échantillon.
Cause : La position initiale pour la
sonde n’a pas été trouvée lors du
traitement.
1. Assurez-vous que le support de tubes est
correctement positionné. Voir Retrait et
remplacement du support de tubes dans le
Conséquence : Aucune analyse n’est
CHAPITRE
13, Procédures de
traitée.
remplacement/réglage.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Erreur de position initiale du Cause : Erreur position initiale.
mécanisme de la sonde
Mécanisme de la sonde à moteur.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
1. N’essayez pas d’ouvrir la porte échantillon.
2. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
3. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Position initiale du
Cause : Position initiale non trouvée.
mécanisme de la sonde non Mécanisme de la sonde à moteur.
trouvée
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Erreur de position de
déplacement du
mécanisme de la sonde
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Réf. B95008AA
Cause : Perte de pas. Mécanisme de
la sonde à moteur.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
10-9
10
Dépannage
Messages d’événement
Tableau 10.3 Messages d’événement (Suite)
Message d’événement
Cause/Conséquence
Action
Erreur de position de
déplacement de la sonde
Cause : Perte de pas. Mécanisme de
la sonde à moteur.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Le chauffage du réactif
s’est arrêté
Cause : Le chauffage du réactif est à 1. Mettez l’instrument hors tension. Attendez
15 minutes. Mettez l’instrument sous tension et
100 % et aucune augmentation de la
connectez-vous. Effectuez une Réinitialisation
température ne s’est produite
du diluteur depuis l’écran Diagnostics.
pendant 2 minutes (augmentation
de 0,5).
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Conséquence : Le chauffage du
réactif est défaillant et l’échantillon
exécuté est inaccessible. Les
échantillons ne peuvent pas être
traités.
Cycle de rinçage
pas exécuté
Cause : Pas de diluant dans le bac.
Conséquence : L’analyse n’a pas pu
être initiée.
Erreur porte échantillon lors Cause : La porte échantillon n’a pas
de la fermeture
atteint sa position de fermeture
pendant le traitement.
Conséquence : L’analyse n’a pas pu
être initiée.
Erreur porte échantillon lors Cause : La porte échantillon n’a pas
de l’ouverture
atteint sa position d’ouverture
pendant le traitement.
Conséquence : L’analyse n’a pas pu
être initiée.
Erreur de position initiale de Cause : Erreur position initiale. Porte
la porte échantillon
échantillon moteur
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Position initiale porte
échantillon non trouvée
Cause : Position initiale non trouvée.
Porte échantillon moteur
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
10-10
1. Effectuez une Rincer les bacs (Cycle de rinçage)
depuis l’écran Diagnostics.
2. Si le rinçage du bac ne résout pas le problème,
effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
3. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Retirez l’échantillon du support de tubes.
2. Assurez-vous que les échantillons futurs sont
complètement insérés dans le support de tubes
pour le traitement.
3. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Retirez l’échantillon du support de tubes.
2. Assurez-vous que les échantillons futurs sont
complètement insérés dans le support de tubes
pour le traitement.
3. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Réf. B95008AA
Dépannage
Messages d’événement
Tableau 10.3 Messages d’événement (Suite)
Message d’événement
Cause/Conséquence
Action
Erreur de position de
déplacement de la porte
échantillon
Cause : Perte de pas. Porte
échantillon moteur
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Erreur de position initiale de Cause : Erreur position initiale. Vanne 1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
la vanne d’échantillonnage d’échantillonnage moteur.
2. Si le problème persiste, contactez votre
Conséquence : Un arrêt d’urgence
représentant Beckman Coulter.
s’est produit.
Position initiale de la vanne
d’échantillonnage
non trouvée
Cause : Position initiale non trouvée.
Vanne d’échantillonnage moteur.
Erreur de position de
mouvement de la vanne
d’échantillonnage
Cause : Perte de pas. Vanne
d’échantillonnage moteur.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Erreur de position initiale de Cause : Erreur position initiale.
la seringue
Seringue moteur.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Position initiale seringue
non trouvée
Cause : Position initiale non trouvée.
Seringue moteur.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Erreur de déplacement de
la seringue
Cause : Perte de pas. Seringue
moteur.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Erreur de vidage de
la seringue
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
Cause : Une erreur de vidage s’est
l’écran Diagnostics.
produite pendant le cycle de test de
la seringue OU la vérification de la
2. Si le problème persiste, contactez votre
stabilité du vidage a échoué pendant
représentant Beckman Coulter.
le vidage de la seringue.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Système occupé
Cause : Un cycle a été initié pendant
le traitement d’un précédent cycle.
Conséquence : Le cycle ne peut pas
être initié.
Réf. B95008AA
1. Attendez jusqu’à ce que le cycle soit terminé.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
10-11
10
Dépannage
Diagnostics
Tableau 10.3 Messages d’événement (Suite)
Message d’événement
Cause/Conséquence
Expiration du délai système Cause : Aucune intervention de la
part de l’utilisateur pendant x
secondes
Conséquence : Le cycle a été
interrompu.
Erreur pompe à vide
Cause : Vide insuffisant sur la
pompe.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Erreur VL X (X = un nombre
de vanne de 1 à 12)
Cause : Défaillance de la vanne de
commande — Vanne X.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Erreur de vidange du
récipient à déchet
Cause : Une défaillance de la
pression s’est produite pendant le
cycle de test de la seringue lors de la
vidange des déchets de la seringue.
Conséquence : Un arrêt d’urgence
s’est produit.
Action
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
2. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
1. Assurez-vous que le tuyau des déchets à
l’arrière de l’instrument n’est pas pincé ou
obstrué.
2. Effectuez une Réinitialisation du diluteur depuis
l’écran Diagnostics.
3. Si le problème persiste, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Diagnostics
Les procédures suivantes s’affichent sur l’écran Diagnostics.
REMARQUE Le coin inférieur gauche de l’écran affiche le nom de la procédure de diagnostic lorsqu’elle
commence.
Réinitialisation du matériel
Réinitialisation du matériel réinitialise la seringue, la sonde, et les moteurs de l’agitateur en position
initiale. Si les moteurs sont en position initiale, ils sont sortis puis remis en position initiale.
1
10-12
Select
> RÉINITIALISATION DU MATÉRIEL.
Réf. B95008AA
Dépannage
Diagnostics
Nettoyer les bacs
Voir Quand, pourquoi et comment exécuter chaque procédure de nettoyage dans le CHAPITRE 12,
Procédures de nettoyage.
Nettoyer par contre-pression les orifices
Voir Quand, pourquoi et comment exécuter chaque procédure de nettoyage dans le CHAPITRE 12,
Procédures de nettoyage.
Cycle d’eau de Javel
Voir Quand, pourquoi et comment exécuter chaque procédure de nettoyage dans le CHAPITRE 12,
Procédures de nettoyage.
Réinitialisation du diluteur
Réinitialisation du diluteur initie une réinitialisation du matériel. Un cycle de fluide est ensuite
réalisé pour s’assurer du bon fonctionnement du système.
1
Select
> RÉINITIALISATION DU DILUTEUR.
Préparation pour expédition
Préparation pour expédition exécute un cycle de vidange et de nettoyage du système avant son
transport ou son stockage prolongée. Le processus prend environ une heure.
Réf. B95008AA
1
Select
2
Sélectionnez
3
Lorsque vous êtes invité à verser l’eau déionisée, desserrez les deux vis sur la porte du diluteur
à l’aide d’un tournevis à tête plate pour ouvrir la porte et exposer la zone de numération (pour
l’emplacement de la porte du diluteur et des bacs, voir Figure 1.5, Vue latérale droite du
DxH 520 et Figure 1.6, Vue latérale droite du DxH 520 derrière la porte du diluteur dans le
CHAPITRE 1, Présentation du système).
> PRÉPARATION POUR EXPÉDITION.
pour confirmer la fonction PRÉPARATION POUR EXPÉDITION.
10-13
10
Dépannage
Diagnostics
4
Versez 6 mL d’eau déionisée dans les bacs NGB/DIFF et NGR.
5
Sélectionnez
6
Fermez la porte du diluteur en serrant les vis et sélectionnez
pour commencer la
procédure de rinçage. L’instrument amorce automatiquement le chemin fluidique avec l’eau
déionisée.
7
Lorsque le système vous invite à verser l’eau de Javel, desserrez les deux vis sur la porte du
diluteur à l’aide d’un tournevis à tête plate pour ouvrir la porte et exposer la zone de
numération.
8
Versez 4 mL d’une solution d’eau de Javel préparée (voir Préparation de la solution d’eau de
Javel dans le CHAPITRE 12, Procédures de nettoyage) dans les bacs NGB/DIFF et NGR.
9
Sélectionnez
pour confirmer.
pour confirmer.
10 Fermez la porte du diluteur en serrant les vis et sélectionnez
pour commencer la
procédure de nettoyage à l’eau de Javel de 10 minutes. L’instrument aspire automatiquement de
la Javel à travers les ouvertures.
11 Lorsque le système vous invite à verser l’eau déionisée, desserrez les deux vis de la porte du
diluteur et exposez la zone de numération.
12 Versez 6 mL d’eau déionisée dans les bacs NGB/DIFF et NGR.
13 Sélectionnez
10-14
pour confirmer.
Réf. B95008AA
Dépannage
Diagnostics
14 Fermez la porte du diluteur en serrant les vis et sélectionnez
pour commencer la
procédure de rinçage. L’instrument amorce automatiquement le chemin fluidique avec l’eau
déionisée et rince l’eau de Javel hors du système.
15 Placez les cannes de réactifs à l’invite dans environ 550 mL d’eau déionisée et sélectionnez
pour confirmer.
REMARQUE L’instrument n’utilisera pas toute l’eau déionisée.
16 Retirez les cannes de réactifs à l’invite de l’eau déionisée, placez-les sur une surface stérile et
sélectionnez
pour confirmer. Le système s’éteint automatiquement à la fin du cycle.
Vérifier les capteurs
Vérifier les capteurs permet d’accéder à l’affichage des statuts/test de capteurs.
1
Sélectionnez
2
Dans l’écran Vérifier les capteurs, sous Vérifier le dispositif, sélectionnez un dispositif pour
vérifier son bon fonctionnement. Une coche s’affiche à côté des éléments opérationnels.
> VÉRIFIER LES CAPTEURS.
Entretien
Vous devez avoir des identifiants de connexion Entretien pour accéder à cette zone du système.
Vidanger les bacs
Voir Vidange des bacs dans le CHAPITRE 12, Procédures de nettoyage.
Réf. B95008AA
10-15
10
Dépannage
Diagnostics
Rincer les bacs (Cycle de rinçage)
Rincer les bacs initie un cycle qui vidange et remplit les bacs NGB et NGR avec du diluant.
1
Sélectionnez
2
Attendez que l’instrument ait terminé le cycle de rinçage.
3
Attendez que le voyant lumineux devienne vert à la fin du cycle.
> RINCER LES BACS.
Position du lubrifiant (lubrifiant des pistons de la seringue)
Position du lubrifiant déplace la seringue vers la bonne position pour la lubrification des pistons de
la seringue. La lubrification des pistons doit être effectuée tous les ans.
10-16
1
Sélectionnez
2
Ouvrez la porte du diluteur pour accéder aux pistons de la seringue.
3
Placez une petite quantité de graisse silicone pour pistons (de la taille d’une tête d’allumette)
sur le bout de votre doigt ganté.
4
Appliquez une petite couche de lubrifiant autour de chacun des quatre pistons blancs.
> POS. LUBRIFIANT. Les pistons descendent partiellement.
Réf. B95008AA
Dépannage
Diagnostics
5
Utilisez l’outil Torx T20 dans le kit d’accessoires pour accéder à l’arrière des grands pistons.
6
Identifiez les pistons de rejet des déchets (les deux grands pistons blancs au centre de
l’ensemble de la seringue).
7
Insérez l’outil Torx T20 sur la vis directement en bas du piston gauche de la seringue à déchets
et tournez-le à 180 degrés pour exposer l’autre côté du piston.
8
Continuez à appliquer une fine couche de lubrifiant sur le piston.
9
Appliquez une fine couche de lubrifiant sur le piston droit de la seringue à déchets.
10 Tournez les deux autres plus petits pistons à la main et appliquez une fine couche de lubrifiant
sur chacun d’eux.
11 Lorsque vous avez terminé, fermez la porte du diluteur.
12 Sélectionnez
Réf. B95008AA
pour terminer le cycle de lubrification.
10-17
10
Dépannage
Diagnostics
Distribution du diluant
Distribuer le diluant distribue 300 μL de diluant pour préparer une dilution à utiliser sur des
échantillons prédilués.
1
Sélectionnez
> DISTRIBUER LE DILUANT.
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. Pour éviter de vous blesser
avec la sonde d’aspiration soyez prudent lorsque vous présentez les échantillons
pour analyse pendant cette procédure.
2
Placez un tube vide et propre sans anticoagulant sous la sonde d’aspiration et sélectionnez
pour distribuer le diluant.
ATTENTION
Risque de détérioration de la sonde d’aspiration. Veillez à ne pas tordre la sonde
d’aspiration en la retirant du tube.
3
Lorsque la distribution est terminée, retirez le tube.
Immobiliser la seringue
Immobiliser la seringue déplace la seringue vers le haut en position d’immobilisation pour éviter
d’endommager les pistons. Réinitialisation du matériel ramène la seringue en position initiale.
10-18
1
Sélectionnez
> IMMOBILISER LA SERINGUE.
2
Sélectionnez
pour immobiliser la seringue.
Réf. B95008AA
Dépannage
Diagnostics
Vérifications des vannes
Vérifier les vannes vous permet d’accéder à l’écran Test de vanne.
1
Sélectionnez
2
Dans l’écran Diagnostics — Vérifier les vannes, sélectionnez un numéro de vanne pour l’allumer
ou l’éteindre.
> VÉRIFIER LES VANNES.
Vous pouvez sélectionner TOUTES LES VANNES ACTIVÉES pour activer ou désactiver toutes les
vannes, SEQUENCE EV. pour activer ou désactiver les vannes en séquence ou VANNE
D’ÉCHANTILLONNAGE pour faire pivoter la vanne d’échantillonnage.
Réf. B95008AA
10-19
10
Dépannage
Diagnostics
10-20
Réf. B95008AA
CHAPITRE 11
Assurance qualité
Vue d’ensemble
Ce chapitre contient des informations et des procédures sur :
• Calibration
• Exécution du test de répétabilité
• Exécution d’un test de contamination inter-échantillons
Calibration
La procédure de calibration consiste à comparer les mesures de l’instrument à des valeurs connues
pour NGB, NGR, HB, VMC, PLT et VMP. La calibration garantit que les résultats de l’échantillon
générés par l’instrument reflètent précisément l’entrée de l’échantillon. La calibration est effectuée
à l’aide de matériaux de référence connus traçables vers ceux-ci. En général, la procédure peut
indiquer que l’instrument nécessite une standardisation en déterminant d’abord l’écart par rapport
à la référence du calibrateur puis en appliquant les facteurs de correction recommandés (facteurs
CAL).
L’instrument est calibré en usine. Vous devez vérifier l’état de la calibration. Si la vérification
échoue, effectuez la calibration.
Votre laboratoire est responsable de la calibration finale des paramètres NFS. Beckman Coulter
recommande le calibrateur de série DxH 500 ou un équivalent exact comme alternative acceptable
à la calibration du sang total. Dans le processus normal de suivi des données sur une longue période,
votre laboratoire peut décider spécifiquement de recalibrer un paramètre donné. Les paramètres de
différentiel ne nécessitent pas de calibration dans votre laboratoire.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. La modification des recommandations du système
pour la calibration affecte les résultats de l’instrument. Soyez extrêmement
prudent lorsque vous modifiez les paramètres de calibration recommandés.
Quand vérifier la calibration
Vous devez vérifier la calibration de votre instrument dans les cas suivants :
• Si les procédures de votre laboratoire et les réglementations locales ou nationales l’exigent
• Lorsque les contrôles montrent des tendances inhabituelles (tous les niveaux démontrent une
récupération de paramètre similaire)
Réf. B95008AA
11-1
Assurance qualité
Calibration
• Lorsque les contrôles dépassent les limites acceptables définies par le fabricant
• Si la température ambiante moyenne fluctue de 6 °C ou 10 °F par rapport à la température de
calibration
Vérifiez la calibration en suivant les instructions du mode d’emploi du calibrateur.
Quand effectuer la calibration
Effectuez la calibration si :
• La vérification de la calibration échoue.
• Tout composant impliqué dans la dilution ou la mesure primaire a été remplacé. Cela comprend
la ligne d’aspiration ou la sonde, ainsi que les ouvertures.
• Votre représentant Beckman Coulter vous recommande de le faire.
Calibration à l’aide du calibrateur de série DxH 500
Suivez les étapes du mode d’emploi du calibrateur de série DxH 500. Le tableau des valeurs cibles
fourni avec le kit de calibration Série DxH 500 contient les valeurs cibles pour le calibrateur. Vous
utiliserez ces valeurs lors de la préparation du logiciel permettant d’exécuter le calibrateur. Le mode
d’emploi contient des informations sur le stockage, les risques chimiques, le mélange, l’utilisation
prévue, etc. pour le produit calibrateur.
Configuration de la calibration
IMPORTANT Assurez-vous de respecter les conditions suivantes avant de calibrer l’instrument :
• L’instrument fonctionne correctement, est correctement entretenu, et la sonde ainsi que les
ouvertures ont été nettoyées avant la calibration.
• L’instrument dispose de suffisamment de réactifs pour effectuer la procédure de calibration. Si
vous n’avez plus assez de réactifs pendant la calibration, vous devez recommencer et effectuer
une calibration complète.
• Les contrôles journaliers ont été effectués avec succès.
• Si la calibration échoue, voir Dépannage de l’assurance qualité dans le CHAPITRE 10,
Dépannage.
1
Sélectionnez
2
S’il y a déjà des données, dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez Imprimer calibration
avant suppression pour imprimer et supprimer les données.
>
REMARQUE Sélectionnez
11-2
>
pour afficher l’écran de calibration.
pour afficher l’écran de calibration sans supprimer les données.
Réf. B95008AA
Assurance qualité
Calibration
3
Sélectionnez
4
Sélectionnez
5
Sélectionnez l’icône applicable :
pour confirmer votre sélection et/ou supprimer les données.
.
•
et utilisez le scanner de codes-barres pour lire les codes-barres 2D sur le Tableau
des valeurs cibles
•
et utilisez le clavier visuel pour saisir les informations manuellement (N° de lot,
Date de péremption, Source, et Valeurs d’analyse). Si nécessaire, sélectionnez
>
pour supprimer les informations existantes.
6
Assurez-vous que toutes les informations de calibration saisies sont correctes.
ATTENTION
Risque de perte de données. Lors de la calibration, ne quittez pas l’écran avant
d’avoir fini d’analyser le nombre requis de répétitions.
Réf. B95008AA
7
Sélectionnez
automatiquement.
8
Mélangez le calibrateur comme indiqué dans le mode d’emploi.
9
Insérez complètement le calibrateur dans le support de tubes.
pour accepter les informations. La porte échantillon s’ouvre
11-3
11
Assurance qualité
Calibration
IMPORTANT Si vous fermez manuellement la porte échantillon, aucun cycle n’est commencé. Pour ré-ouvrir
la porte échantillon pour le premier cycle, recommencez la procédure. Pour ré-ouvrir la porte échantillon
pour tout cycle ultérieur, sélectionnez l’analyse et sélectionnez
>
.
10 Sélectionnez
et la porte échantillon se ferme automatiquement pour commencer
l’analyse. Une fois l’analyse terminée, la porte échantillon s’ouvre automatiquement et le
résultat est affiché.
11 Cochez la case dans la colonne EXCL pour exclure la première analyse (amorçage) avant
d’atteindre la dixième analyse.
12 Suivez les indications de manipulation dans le mode d’emploi du calibrateur et effectuez le
nombre requis de répétitions (N = 10) en sélectionnant
analyse.
pour commencer chaque
• Le nombre d’analyses s’affiche en haut à gauche du tableau de calibration.
• Le tableau ne contient aucun résultat avant que deux analyses acceptables n’aient été
effectuées.
• Toutes les analyses avec des résultats non numériques sont automatiquement exclues des
calculs. Ajoutez une autre analyse pour atteindre le nombre d’analyses requis.
• Pour exclure une analyse manuellement, cochez la case dans la colonne EXCL.
• L’analyse la plus récente est affichée en haut du tableau de calibration.
13 Révisez les résultats de calibration.
L’écran affiche des informations statistiques et indique si l’instrument doit être calibré ou si
toute autre action est nécessaire.
11-4
Informations affichées
Description
Moyenne
Moyenne des résultats
% CV
Coefficient de variation des résultats inclus
Cible
Valeur attribuée de calibration
Fact. % Diff
( Nouveau facteur Cal ) – 1 ] × 100
Fact. % Diff = [----------------------------------------------------------------------------------Facteur Cal courant
Delta Diff
Delta du différentiel = nombre absolu (moyenne — valeur de référence)
Facteurs util
Facteurs de calibration actuels (anciens), le facteur par défaut est 1,00
Réf. B95008AA
Assurance qualité
Calibration
Nv facteur
Ce sur quoi le facteur de calibration sera basé avec les valeurs sélectionnées
dans le tableau (nouveau)
de référence × Facteur en usage
Nouveaux facteurs Cal = Valeur
-----------------------------------------------------------------------------------------------Moyenne
État
La calibration recommandée est automatiquement indiquée avec une coche
pour le paramètre lorsque 10 analyses non exclues sont effectuées.
La couleur d’arrière-plan des cellules Facteur DIFF %, CV % et Delta du différentiel change
lorsque la valeur est hors plage comme indiqué :
• Jaune pour Fact. % Diff et/ou Delta Diff indique que la valeur est hors plage, ce qui signifie
que la calibration est recommandée.
• Rouge pour CV %, Fact. % Diff, et/ou Delta Diff indique que la valeur statistique est hors
plage et que le système n’autorise pas la calibration. Contactez votre représentant de de
Beckman Coulter.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. La modification des recommandations du système
pour la calibration peut affecter les résultats de l’instrument. Soyez extrêmement
prudent lorsque vous modifiez les paramètres de calibration recommandés.
Modifiez les paramètres de calibration recommandés uniquement sous la
direction de votre représentant Beckman Coulter.
14 Sélectionnez
pour modifier les cases à cocher de calibration recommandée. Le bouton
change de couleur et les cases à cocher sont activées. Pour annuler tout changement et
restaurer les recommandations du système, sélectionnez
.
La calibration recommandée par le système est indiquée dans le tableau des critères de
calibration suivant.
Paramètre
Précision (CV%)
Valeur du facteur
de cal acceptable
Calibrer si FAC %
Diff est :
Calibrer si Delta
Diff est :
NGB
≤ 3,0 %
³ 0,5 ou ≤ 1,5
> 2,2 et ≤ 6,6
> 0,20 et ≤ 0,6
NGR
≤ 2,0 %
³ 0,5 ou ≤ 1,5
> 2,3 et ≤ 4,1
> 0,07 et ≤ 0,170
HB
≤ 1,5 %
³ 0,5 ou ≤ 1,5
> 1,4 et ≤ 3,8
> 0,20 et ≤ 0,5
VMC
≤ 1,0 %
³ 0,5 ou ≤ 1,5
> 2,1 et ≤ 3,2
> 2,0 et ≤ 3,0
Plt
≤ 5,0 %
³ 0,5 ou ≤ 1,5
> 4,8 et ≤ 9,6
> 12,0 et ≤ 23,0
VMP
≤ 3,0 %
³ 0,5 ou ≤ 1,5
> 8,0 et ≤ 21,0
> 0,7 et ≤ 2,0
15 Sélectionnez
Réf. B95008AA
pour accepter et effectuer la calibration.
11-5
11
Assurance qualité
Exécution du test de répétabilité
16 Imprimez les résultats de l’une des façons suivantes :
• Pour imprimer automatiquement, voir Configuration des options de l’imprimante dans le
CHAPITRE 9, Configuration.
• Pour une impression manuelle, sélectionnez
>
, sélectionnez Résultat
sélectionné ou Tableau de calibration, puis sélectionnez
pour confirmer votre
sélection.
17 Vérifiez la calibration à l’aide du calibrateur de série DxH 500 comme indiqué dans le mode
d’emploi.
Exécution du test de répétabilité
1
Assurez-vous d’avoir suffisamment de sang total normal (valeurs NGB, NGR et PLT normales)
provenant d’un seul donneur pour un minimum de dix cycles.
2
Séparez l’échantillon de sang total en trois tubes.
REMARQUE Les échantillons bouchés ne peuvent pas être perforés plus de quatre fois. Lorsqu’un
échantillon de sang total débouché est traité, il n’est pas nécessaire de séparer le sang en
trois tubes.
11-6
3
Sélectionnez
4
S’il y a déjà des données, dans la fenêtre d’avertissement, sélectionnez Imprimer les données
relatives à la répétabilité avant suppression pour imprimer et supprimer les données OU
sélectionnez Supprimer les données sans les imprimer pour annuler l’impression et supprimer
les données. La porte s’ouvre une fois que les données ont été supprimées.
5
Sélectionnez
>
>
.
pour confirmer votre sélection et/ou supprimer les données.
Réf. B95008AA
Assurance qualité
Exécution du test de répétabilité
REMARQUE Lorsque vous sélectionnez
, les données ne sont pas supprimées et l’écran de
répétabilité s’affiche. Sélectionnez
répétabilité.
pour supprimer le fichier actuel et exécutez une nouvelle
6
Mélangez l’échantillon.
7
Insérez complètement l’échantillon de sang total dans le support de tubes.
IMPORTANT Si vous fermez manuellement la porte échantillon, aucun cycle n’est commencé. Pour ré-ouvrir
la porte échantillon pour le premier cycle, recommencez la procédure. Pour ré-ouvrir la porte échantillon
pour tout cycle ultérieur, sélectionnez l’analyse et sélectionnez
8
>
.
Sélectionnez
et la porte échantillon se ferme automatiquement pour commencer
l’analyse. Une fois l’analyse terminée, la porte échantillon s’ouvre et le résultat est affiché.
ATTENTION
Risque de fuite d’échantillon ou d’obstruction. Des fuites d’échantillons ou une
obstruction du système peuvent se produire. Une perforation excessive des tubes
d’échantillon peut provoquer le carottage du bouchon. Le nombre de perforations
effectuées sans problème peut varier selon les types de tubes d’échantillon et les
fabricants. Ne pas perforer le tube d’échantillon plus de cinq fois.
Vérifier le manuel d’utilisation de la liste des tubes d’hématologie (voir
Documents associés pour plus d’informations). Certains tubes ont des
instructions plus restrictives pour l’utilisation et les limitations du nombre de
perforations.
9
Effectuez le nombre requis de répétition (N = 10) en sélectionnant
pour commencer
chaque analyse. Remplacez chaque tube après quatre répétitions. Assurez-vous que
l’échantillon est mélangé entre les analyses.
10 Révisez les résultats à l’écran.
Réf. B95008AA
Informations affichées
Description
N
Nombre d’analyses non exclues
Moyenne
Moyenne des résultats
11-7
11
Assurance qualité
Exécution d’un test de contamination inter-échantillons
2SD
% CV
Coefficient de variation des résultats inclus
Minimum
Résultat le plus faible
Maximum
Résultat le plus élevé
Plage
Différence entre la valeur minimum et maximum du résultat du
paramètre
11 Vérifiez que le CV ou É.T. ne dépasse pas les limites de répétabilité établies. Voir Répétabilité
dans le CHAPITRE 1, Présentation du système.
12 Si les résultats échouent, voir Dépannage de l’assurance qualité dans le CHAPITRE 10,
Dépannage.
13 Imprimez les résultats de l’une des façons suivantes :
• Pour imprimer automatiquement, voir Configuration des options de l’imprimante dans le
CHAPITRE 9, Configuration.
• Pour une impression manuelle, sélectionnez
sélectionné ou Tous les résultats, puis sélectionnez
>
, sélectionnez Résultat
pour confirmer votre sélection.
Exécution d’un test de contamination inter-échantillons
1
Préparez vos échantillons pour le test de contamination inter-échantillons. Il vous faut :
• Un tube de sang total
• Trois tubes étiquetés Diluant 1, Diluant 2 et Diluant 3 (à utiliser lors de l’étape 4)
11-8
2
Distribuez le diluant en sélectionnant
3
Placez le tube étiqueté Diluant 1 sous la sonde.
> DISTRIBUTION DU DILUANT.
Réf. B95008AA
Assurance qualité
Exécution d’un test de contamination inter-échantillons
4
Sélectionnez
pour distribuer automatiquement le diluant. Répétez cette opération
pour les tubes étiquetés Diluant 2 et Diluant 3.
5
Sélectionnez
6
Dans l’écran Test de contamination inter-échantillons, sélectionnez
7
Sélectionnez
>
>
.
.
pour supprimer les informations existantes.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. Le processus du test de contamination interéchantillons ne peut pas être interrompu. S’il est interrompu, recommencez le
processus à l’étape 2.
8
Insérez complètement l’échantillon de sang total dans le support de tubes.
IMPORTANT Si vous fermez manuellement la porte échantillon, aucun cycle n’est commencé. Pour ré-ouvrir
la porte échantillon pour le premier cycle, recommencez la procédure. Pour ré-ouvrir la porte échantillon
pour tout cycle ultérieur, sélectionnez l’analyse et sélectionnez
9
>
.
Sélectionnez
et la porte échantillon se ferme automatiquement pour commencer
l’analyse. Une fois l’analyse terminée, la porte échantillon s’ouvre et le résultat est affiché.
10 Répétez le processus deux fois de plus en sélectionnant
pour commencer chaque
analyse. Assurez-vous que l’échantillon est mélangé entre les analyses.
11 Insérez complètement le tube étiqueté Diluant 1 dans le support de tubes et sélectionnez
. Répétez le processus avec les tubes de Diluant 2 et Diluant 3.
Réf. B95008AA
11-9
11
Assurance qualité
Exécution d’un test de contamination inter-échantillons
12 Vérifiez le statut du test de contamination (Succès ou Échec). Le système calcule
automatiquement les résultats du test de contamination inter-échantillons à l’aide de cette
formule : Contamination inter-échantillons en %
La contamination inter-échantillons en % et/ou les limites des valeurs résiduelles sont
comparées aux spécifications (voir Contamination inter-échantillons dans le CHAPITRE 1,
Présentation du système pour plus d’informations). Si le test de contamination interéchantillons échoue, voir Dépannage de l’assurance qualité dans le CHAPITRE 10, Dépannage.
13 Imprimez les résultats :
• Pour imprimer automatiquement, voir Configuration des options de l’imprimante dans le
CHAPITRE 9, Configuration.
• Pour une impression manuelle, sélectionnez
sélectionnés ou Rapport final, puis sélectionnez
11-10
>
, sélectionnez Résultats
pour confirmer votre sélection.
Réf. B95008AA
CHAPITRE 12
Procédures de nettoyage
Quand, pourquoi et comment exécuter chaque procédure de nettoyage
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. Soyez prudent car des
tensions c.a. peuvent être présentes. Utilisez un équipement de protection
approprié lorsque vous réalisez ces procédures étant donné que l’instrument peut
contenir des matériaux biologiquement dangereux.
ATTENTION
Risque de détérioration de l’instrument. N’essayez pas d’effectuer des
procédures qui ne sont pas incluses dans ce manuel. Contactez votre représentant
Beckman Coulter local pour les réparations et les opérations de maintenance hors
du champ d’application de ce document.
Tableau 12.1 Matrice de fréquence des procédures de nettoyage
Réf. B95008AA
Procédure
Objet
Outils/Réactifs
Fréquence
Nettoyage de
l’instrument
Pour retirer et prévenir
les dépôts de sang
séché ou de réactif
Lingettes désinfectantes
Quotidiennement
ou lorsque
nécessaire, basée
sur une inspection
visuelle
Exécution d’un cycle
d’eau de Javel
Pour supprimer les
obstructions
• Eau de Javel de haute
qualité, non parfumée, non
gélifiée (solution
d’hypochlorite de sodium à
3,6 % de chlore actif)
• Eau déionisée
• Récipient pour la solution
d’eau de Javel — eau
déionisée
• Récipient pour l’eau
déionisée
Tous les
1 000 analyses ou
mensuellement,
selon la première
échéance.
Nettoyez le filtre du bac
NGB.
Pour retirer les dépôts
piégés par le filtre
• Eau déionisée
• Tournevis plat
Mensuellement
12-1
Procédures de nettoyage
Nettoyage de l’instrument
Tableau 12.1 Matrice de fréquence des procédures de nettoyage (Suite)
Procédure
Objet
Lubrification des pistons Pour lubrifier les pistons
de la seringue
(voir Position du
lubrifiant (lubrifiant des
pistons de la seringue)
dans le CHAPITRE 10,
Dépannage)
Outils/Réactifs
Fréquence
• Graisse silicone pour
pistons
• Outil Torx T20 du kit
d’accessoires
Annuelle
Lorsque
nécessaire, basée
sur une inspection
visuelle
Nettoyage du support
de tubes et du
compartiment du
support de tubes
Pour retirer les dépôts
de sang séché ou de
réactif
•
•
•
•
Nettoyage des bacs
Pour supprimer les
obstructions
Cycle automatisé
Selon les besoins
Vidange des bacs
Pour retirer le liquide
Cycle automatisé
Selon les besoins
Nettoyage par contrepression des orifices
Pour supprimer les
obstructions
Cycle automatisé
Selon les besoins
Nettoyage du scanner
de codes-barres
Pour retirer la poussière
ou la saleté
• Eau déionisée
• Detergent. (Niveau
détergent bas.)
• Chiffon non pelucheux
Lorsque
nécessaire, basée
sur une inspection
visuelle
Lingettes désinfectantes
Cotons-tiges
Eau déionisée
Chiffon non pelucheux
Nettoyage de l’instrument
Nettoyez la surface extérieure de l’instrument à l’aide de lingettes désinfectantes homologuées
pour une utilisation en laboratoire. Pour empêcher une accumulation de sang séché ou de dépôts de
réactif, nettoyez immédiatement les éclaboussures. Examinez la zone de la sonde tout au long de la
journée (voir Vues de l’instrument dans le CHAPITRE 1, Présentation du système). Retirez les dépôts
de sang à l’aide de lingettes désinfectantes.
S’il y a du sang séché ou des débris sur le support de tubes ou dans le compartiment du support de
tubes, voir Nettoyage du support de tubes et du compartiment du support de tubes pour les
informations de nettoyage.
Nettoyage des bacs
Nettoyer les bacs permet de nettoyer par contre-pression les orifices des bacs NGB et NGR à l’aide
d’un agent de nettoyage, puis les vidange et les remplit de diluant.
1
12-2
Select
> NETTOYER LES BACS.
Réf. B95008AA
Procédures de nettoyage
Exécution d’un cycle d’eau de Javel
2
Attendez que l’instrument ait terminé le cycle de nettoyage.
3
Attendez que le voyant lumineux devienne vert à la fin du cycle.
Exécution d’un cycle d’eau de Javel
cycle d’eau de Javel est un cycle spécial permettant de nettoyer les bacs les orifices et la vanne
d’échantillonnage à l’aide d’une solution d’eau de Javel.
AVERTISSEMENT
Risque de blessure chimique liée à l’eau de Javel. Pour éviter tout contact avec
l’eau de Javel, portez un équipement de protection approprié, comprenant des
lunettes de protection, des gants et un vêtement de laboratoire approprié.
Reportez-vous à la Fiche technique de santé-sécurité pour plus d’informations sur
l’exposition chimique avant d’utiliser le produit chimique.
ATTENTION
Risque de résultats erronés. Effectuez la procédure complète avant de poursuivre
l’analyse des échantillons. Effectuez un arrêt et les contrôles journaliers.
Pour élaborer une solution d’eau de Javel, utilisez une eau de Javel de haute qualité, non parfumée,
non gélifiée (solution d’hypochlorite de sodium à 3,6 % de chlore actif) pour nettoyer la sonde, les
circuits réactifs, les ouvertures et les bacs. Si votre laboratoire dispose d’une eau de Javel plus
concentrée, vous devez diluer la solution avant d’exécuter cette procédure. Voir Préparation de la
solution d’eau de Javel.
1
Sélectionnez
de Javel.
> CYCLE D’EAU DE JAVEL et l’instrument se préparera pour le cycle d’eau
IMPORTANT Si un cycle d’eau de Javel est interrompu pour n’importe quelle raison (par exemple, un arrêt
d’urgence ou une panne de courant), un arrêt et des contrôles journaliers doivent être effectués avant
que l’analyse des échantillons ne commence.
2
Réf. B95008AA
Lorsque le système vous invite à verser l’eau déionisée, desserrez les deux vis sur la porte du
diluteur à l’aide d’un tournevis à tête plate pour ouvrir la porte et exposer la zone de
numération. (pour l’emplacement de la porte du diluteur et des bacs, voir Figure 1.5, Vue
latérale droite du DxH 520 et Figure 1.6, Vue latérale droite du DxH 520 derrière la porte du
diluteur dans le CHAPITRE 1, Présentation du système).
12-3
12
Procédures de nettoyage
Exécution d’un cycle d’eau de Javel
3
Versez 6 mL d’eau déionisée dans les bacs NGB/DIFF et NGR.
4
Sélectionnez
5
Fermez la porte du diluteur en serrant les vis et sélectionnez
pour commencer la
procédure de rinçage. L’instrument amorce automatiquement le chemin fluidique avec l’eau
déionisée.
6
Lorsque le système vous invite à verser l’eau de Javel, desserrez les deux vis sur la porte du
diluteur à l’aide d’un tournevis à tête plate pour ouvrir la porte et exposer la zone de
numération.
7
Versez 4 mL d’une solution d’eau de Javel préparée (voir Préparation de la solution d’eau de
Javel) dans les bacs NGB/DIFF et NGR.
8
Sélectionnez
9
Fermez la porte du diluteur en serrant les vis et sélectionnez
pour commencer la
procédure de nettoyage à l’eau de Javel de 10 minutes. L’instrument aspire automatiquement de
la Javel à travers les ouvertures.
pour confirmer.
pour confirmer.
10 Lorsque le système vous invite à verser l’eau déionisée, desserrez les deux vis de la porte du
diluteur et exposez la zone de numération.
11 Versez 6 mL d’eau déionisée dans les bacs NGB/DIFF et NGR.
12 Sélectionnez
12-4
pour confirmer.
Réf. B95008AA
Procédures de nettoyage
Nettoyez le filtre du bac NGB.
13 Fermez la porte du diluteur en serrant les vis et sélectionnez
pour commencer la
procédure de rinçage. L’instrument amorce automatiquement le chemin fluidique avec l’eau
déionisée et rince l’eau de Javel hors du système.
14 Effectuez un arrêt.
15 Exécutez les contrôles journaliers. Vous pouvez maintenant analyser un échantillon.
Préparation de la solution d’eau de Javel
Préparez la solution d’eau de Javel en suivant la formule et les directives données dans l’Annex 6, How
to Make Chlorine Solutions for Environmental Disinfection (Annexe 6, Comment préparer des solutions
chlorées pour la désinfection de l’environnement)32 publiée par l’Organisation Mondiale de la
Santé. La concentration en eau de Javel doit être de 3,6 % (voir l’exemple suivant). Commencez par
utiliser une solution d’eau de Javel dont la concentration figure sur le récipient (l’exemple utilise
8,2 %, qui correspond au pouvoir germicide).
Formule :
[% chlore dans l’eau de Javel / % chlore souhaité] - 1 = volumes d’eau déionisée à ajouter pour chaque
volume d’eau de Javel
Exemple :
[concentration de départ de 8,2 / concentration souhaitée de 3,6] - 1 = 2,27 - 1 = 1,27, ajoutez un
volume de 1,27 d’eau déionisée pour chaque volume d’eau de Javel concentré
REMARQUE Les volumes peuvent être utilisés avec n’importe quelle unité de mesure (once, litre ou gallon)
ou n’importe quel conteneur utilisé pour mesurer, comme un pichet. Dans les pays où des produits
français sont disponibles, la quantité de chlore actif est généralement exprimée en degrés
chlorométriques. Un degré chlorométrique équivaut à 0,3 % de chlore actif.
Nettoyez le filtre du bac NGB.
Réf. B95008AA
1
Sélectionnez
> Vidange des bacs pour vidanger les bacs et les seringues à déchets et de
vidage. Lorsque le bouton d’alimentation devient vert, passez à l’étape suivante.
2
Mettez l’instrument hors tension en appuyant et en maintenant le bouton d’alimentation
enfoncé pendant quelques secondes.
12-5
12
Procédures de nettoyage
Nettoyez le filtre du bac NGB.
12-6
3
Sélectionnez
tension.
4
Débranchez le cordon d’alimentation de l’arrière de l’instrument.
5
Ouvrez le côté droit de l’instrument à l’aide d’un tournevis à tête plate. Lorsque vous retirez la
vis, enlevez le panneau de ses charnières et déplacez-le pour qu’il ne vous gêne pas.
6
Repérez le bac NGB et placez une lingette sous le bac pour récupérer toutes gouttes. La partie
inférieure du bac NGB contient le filtre du bac NGB.
7
Pincez l’attache sur la partie inférieure du bac NGB et poussez-la vers la gauche pour qu’elle se
déplace dans le sens des aiguilles d’une montre. Cela aligne le logement de la partie inférieure
du bac avec les vis de fixation sur le dessous du bac.
lorsque le système vous invite à effectuer un arrêt avant la mise hors
Réf. B95008AA
Procédures de nettoyage
Nettoyez le filtre du bac NGB.
8
Tirez le bac vers le bas pour le retirer du bac NGB.
IMPORTANT N’utilisez pas de tissu ou de chiffon abrasif. Ne brossez pas le filtre. Cela pourrait rayer ou
déchirer le filtre.
9
Rincez le filtre du bac NGB avec de l’eau déionisée pour retirer tous les débris et particules
visibles.
10 Pour réinstaller la partie inférieure du bac, tenez l’attache sur la partie inférieure du bac avec
une main et alignez le logement avec les deux vis de fixation.
Réf. B95008AA
12-7
12
Procédures de nettoyage
Nettoyez le filtre du bac NGB.
11 Avec votre autre main, poussez la partie inférieure du bac et vérifiez que les vis de fixation se
logent correctement dans la partie inférieure du bac.
12 Poussez l’attache vers la droite pour qu’elle se déplace dans le sens inverse des aiguilles d’une
montre jusqu’à ce que la partie inférieure du bac soit correctement fixée.
13 Remettez la porte en place et serrez les vis.
14 Rebranchez le cordon d’alimentation à l’arrière de l’instrument. Le côté plat doit être face au
tuyau d’évacuation des déchets.
15 Mettez l’instrument sous tension en maintenant le bouton d’alimentation enfoncé pendant
quelques secondes. Le logiciel de l’instrument démarrera.
16 Depuis l’écran principal, connectez-vous et sélectionnez
à l’invite pour exécuter les
contrôles journaliers.
12-8
Réf. B95008AA
Procédures de nettoyage
Nettoyage du support de tubes et du compartiment du support de tubes
17 Exécuter un cycle « Rincer les bacs » pour remplir les bacs avec du diluant, puis effectuez les
contrôles journaliers. Voir Rincer les bacs (Cycle de rinçage) dans le CHAPITRE 10, Dépannage.
18 Vérifiez que tous les indicateurs d’état des contrôles journaliers affichent Succès.
Nettoyage du support de tubes et du compartiment du support de tubes
1
Retirez le support de tubes. Voir Retrait et remplacement du support de tubes dans le
CHAPITRE 13, Procédures de remplacement/réglage.
2
Nettoyez le support de tubes avec des lingettes désinfectantes pour retirer le sang séché et les
débris.
3
Humectez un coton-tige avec de l’eau déionisée.
4
Tamponnez l’intérieur du compartiment du support de tubes.
5
Essuyez le compartiment du support de tubes avec un essuie-tout non pelucheux et assurezvous que le compartiment du support de tubes est complètement sec avant de réinstaller le
support de tubes.
6
Réinstallez le support de tubes. Voir Retrait et remplacement du support de tubes dans le
CHAPITRE 13, Procédures de remplacement/réglage.
Vidange des bacs
Vidanger les bacs permet de vidanger les bacs NGB et NGR.
Réf. B95008AA
1
Sélectionnez
2
Attendez que l’instrument exécute le cycle de vidange.
> VIDANGER LES BACS.
12-9
12
Procédures de nettoyage
Nettoyage par contre-pression des orifices
3
Attendez que le cycle soit terminé. Le voyant lumineux devient vert à la fin du cycle.
Nettoyage par contre-pression des orifices
NETTOYER PAR CONTRE-PRESSION LES ORIFICES applique une contre-pression sur les orifices NGR et
NGB à l’aide d’un agent de nettoyage, et vidange les bacs en les remplissant de diluant.
REMARQUE NETTOYER PAR CONTRE-PRESSION LES ORIFICES ne peut pas être initié si les bacs ont été
vidangés. Un cycle de rinçage doit être effectué avant de réaliser un cycle de nettoyage par contrepression. Voir Rincer les bacs (Cycle de rinçage) dans le CHAPITRE 10, Dépannage.
1
Sélectionnez
2
Attendez que l’instrument exécute le cycle de rétro-rinçage.
3
Attendez que le cycle soit terminé. Le voyant lumineux devient vert à la fin du cycle.
> NETTOYER PAR CONTRE-PRESSION LES ORIFICES.
Nettoyage du scanner de codes-barres
Si la fenêtre de balayage n’est pas propre, les performances de lecture peuvent être altérées.
Si la fenêtre de balayage est visiblement sale ou si le scanner ne fonctionne pas bien, suivez ces
instructions pour nettoyer le scanner de codes-barres.
ATTENTION
Risque de détérioration du scanner de codes-barres. Pour éviter de
l’endommager, ne plongez pas le scanner de codes-barres dans l’eau. Le scanner
de codes-barres n’est pas étanche. N’utilisez pas de chiffon abrasif sur la fenêtre
de balayage car cela pourrait rayer la fenêtre. N’utilisez jamais de solvants (par
exemple, alcool, acétone, benzène, éther, ou agents à base de phénol) sur le
boîtier ou la fenêtre afin de ne pas endommager la finition ou la fenêtre.
12-10
Réf. B95008AA
Procédures de nettoyage
Nettoyage du scanner de codes-barres
1
Nettoyez la fenêtre de balayage à l’aide d’un chiffon doux ou d’un chiffon spécial optique imbibé
d’un mélange d’eau et de détergent doux.
REMARQUE Si vous utilisez une solution détergent-eau pour nettoyer le scanner de codes-barres,
rincez-le à l’aide d’un chiffon propre imbibé d’eau uniquement, puis séchez-le à l’aide d’un autre
chiffon propre.
2
Réf. B95008AA
Nettoyez le compartiment du scanner de codes-barres comme décrit ci-dessus.
12-11
12
Procédures de nettoyage
Nettoyage du scanner de codes-barres
12-12
Réf. B95008AA
CHAPITRE 13
Procédures de remplacement/réglage
Quand, pourquoi et comment exécuter chaque procédure de
remplacement/réglage
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. Soyez prudent car des
tensions c.a. peuvent être présentes. Utilisez un équipement de protection
approprié lorsque vous réalisez ces procédures étant donné que l’instrument peut
contenir des matériaux biologiquement dangereux.
ATTENTION
Risque de détérioration de l’instrument. Les procédures de remplacement mal
effectuées peuvent endommager l’instrument. Lisez attentivement le manuel
avant d’essayer de remplacer un composant. N’essayez pas d’effectuer des
procédures qui ne sont pas incluses dans ce manuel. Contactez votre représentant
Beckman Coulter local pour les réparations et les opérations de maintenance hors
du champ d’application de ce manuel.
Tableau 13.1 Matrice de fréquence des procédures de remplacement.
Réf. B95008AA
Procédure
Objet
Outils/Réactifs
Fréquence
Configuration ou remplacement du rejet
des déchets dans le CHAPITRE 9,
Configuration
Pour remplacer un
récipient de déchets
plein
Nouveau
récipient de
déchets vide
En fonction des
besoins pour
remplacer les
récipients à
déchets pleins.
Configuration ou remplacement des
Pour remplacer les
réactifs dans le CHAPITRE 9, Configuration flacons de réactif vides
Nouveaux
réactifs
En fonction des
besoins pour
remplacer les
flacons de
réactif vides.
Remplacement du joint torique de la tête
de rinçage
Pour remplacer le joint
torique d’une tête de
rinçage de la sonde
d’aspiration
• Nouveau
joint torique
• Nouveau
tube vide
Annuelle
(tous les
18 000 cycles)
Remplacement du scanner de codesbarres
Pour remplacer un
Nouveau
scanner de codes-barres scanner de
codes-barres
défectueux
Selon les
besoins
13-1
Procédures de remplacement/réglage
Remplacement du joint torique de la tête de rinçage
Tableau 13.1 Matrice de fréquence des procédures de remplacement.
Procédure
Objet
Outils/Réactifs
Fréquence
Remplacement de la sonde d’aspiration
Pour remplacer une
sonde d’aspiration
défectueuse
• Nouvelle
sonde
d’aspiration
• Nouveau
tube vide
• Pinces
Selon les
besoins
Retrait et remplacement du support de
tubes
Pour retirer ou remplacer Nouveau
le support de tubes
support de
tubes, le cas
échéant
Selon les
besoins
Remplacement du joint torique de la tête de rinçage
Suivez cette procédure pour remplacer le joint torique de la tête de rinçage.
1
Retirez la sonde d’aspiration en suivant les instructions dans Remplacement de la sonde
d’aspiration.
IMPORTANT Ne retournez pas la tête de rinçage pour éviter de perdre accidentellement le joint torique.
13-2
2
Dévissez le guide de sonde noir et retirez-le de la tête de rinçage.
3
Insérez la sonde d’aspiration dans le joint torique à l’intérieur de la tête de rinçage, puis retirez
la sonde d’aspiration de la tête de rinçage. Le joint torique devrait sortir de la sonde.
Réf. B95008AA
Procédures de remplacement/réglage
Remplacement du joint torique de la tête de rinçage
4
Retirez le joint torique de la sonde d’aspiration.
REMARQUE L’intercalaire blanc peut ou ne peut pas être vu avec le retrait de la sonde d’aspiration.
Soyez prudent de ne pas perdre l’intercalaire s’il est retiré.
5
Réf. B95008AA
Remplacez le joint torique en insérant d’abord le guide de sonde noir, puis en insérant le joint
torique sur la sonde d’aspiration.
13-3
13
Procédures de remplacement/réglage
Remplacement du scanner de codes-barres
6
Installez cet ensemble sur la tête de rinçage et revissez le guide de sonde noir.
7
Pour ré-installer la sonde et vérifier son alignement, allez à l’étape 14 dans Remplacement de la
sonde d’aspiration et effectuez les étapes pour terminer la procédure.
Remplacement du scanner de codes-barres
1
Débranchez le scanner de codes-barres du port USB.
2
Installez le nouveau scanner de codes-barres en branchant le câble sur le port USB.
REMARQUE Voir l’ANNEXE B, Codes-barres pour plus d’informations sur la configuration des codesbarres et les étiquettes.
Remplacement de la sonde d’aspiration
AVERTISSEMENT
Risque de blessure et/ou de contamination biologique. Soyez prudent car des
tensions c.a. peuvent être présentes. Utilisez un équipement de protection
approprié lorsque vous réalisez ces procédures étant donné que l’instrument peut
contenir des matériaux biologiquement dangereux.
13-4
Réf. B95008AA
Procédures de remplacement/réglage
Remplacement de la sonde d’aspiration
AVERTISSEMENT
Risque de blessure. Assurez-vous que l’instrument n’est pas en fonctionnement
avant de remplacer la sonde.
1
Sélectionnez
de vidage.
2
Lorsque le bouton d’alimentation devient vert, passez à l’étape suivante.
3
Mettez l’instrument hors tension en maintenant le bouton d’alimentation enfoncé pendant
> VIDANGER LES BACS. Cela vidange les bacs, et les seringues à déchets et
quelques secondes. Sélectionnez
avant la mise hors tension.
Réf. B95008AA
lorsque le système vous invite à effectuer un arrêt
4
Débranchez le cordon d’alimentation de l’arrière de l’instrument. Le panneau est repéré par 24v.
5
Ouvrez la porte du diluteur avec un tournevis à tête plate. Lorsque vous retirez la vis, enlevez le
panneau de ses charnières pour qu’il ne vous gêne pas.
6
Vérifiez que la sonde est complètement rétractée vers le haut.
7
Déplacez l’agitateur de sonde vers l’arrière pour accéder à la sonde.
8
Tirez le haut de la sonde pour la retirer du chariot de sonde.
13-5
13
Procédures de remplacement/réglage
Remplacement de la sonde d’aspiration
9
Poussez la tête de rinçage vers le bas, puis tirez-la hors de l’agitateur.
10 Tirez la sonde vers le haut pour la retirer de la tête de rinçage.
13-6
Réf. B95008AA
Procédures de remplacement/réglage
Remplacement de la sonde d’aspiration
11 Débranchez la sonde du tuyau d’aspiration et retirez-la de l’instrument.
REMARQUE Utilisez la pointe de la pince pour pousser le tube vers le haut. Ne pincez pas le tube.
12 Mettez la sonde au rebut conformément aux réglementations de votre laboratoire.
13 Retirez la nouvelle sonde d’aspiration de son emballage.
14 Rebranchez le tuyau d’aspiration en haut de la nouvelle sonde d’aspiration et assurez-vous que
le tuyau est correctement fixé à la sonde.
REMARQUE Utilisez la pince avec précaution pour éviter de pincer le tuyau.
15 Poussez doucement la sonde dans la tête de rinçage.
16 Poussez la tête de rinçage dans l’agitateur.
17 Poussez le haut de la sonde dans le chariot de sonde.
18 Déplacez l’agitateur de sonde vers l’avant.
19 Remettez la porte du diluteur en place et serrez les vis.
20 Rebranchez le cordon d’alimentation à l’arrière de l’instrument. Le côté plat du cordon
d’alimentation doit être face au tuyau d’évacuation des déchets.
Réf. B95008AA
13-7
13
Procédures de remplacement/réglage
Remplacement de la sonde d’aspiration
21 Mettez l’instrument sous tension en maintenant le bouton d’alimentation enfoncé pendant
quelques secondes.
Le logiciel de l’instrument démarrera.
22 Depuis l’écran principal, connectez-vous et sélectionnez
à l’invite pour exécuter les
contrôles journaliers.
23 Exécutez une procédure de réinitialisation du diluteur pour initialiser le moteur, puis effectuez
les contrôles journaliers. Voir Réinitialisation du diluteur dans le CHAPITRE 10, Dépannage.
REMARQUE Le moteur de l’agitateur de sonde et le moteur de montée/descente de la sonde pourraient
ne pas être en position initiale.
24 Vérifiez que tous les indicateurs d’état des contrôles journaliers affichent Succès.
25 Sélectionnez
pour vérifier l’alignement de la sonde.
26 Sélectionnez
, utilisez le clavier visuel pour entrer l’ID spécimen 000, et vérifiez que CP
est sélectionné. Sélectionnez
automatiquement.
à l’invite pour confirmer votre sélection. La porte s’ouvre
27 Insérez complètement un tube vide bouché dans le support de tubes.
28 Sélectionnez
et la porte se ferme automatiquement. Lorsque que le traitement est
fini, la porte s’ouvre automatiquement. Le voyant lumineux devient vert et les résultats sont
affichés.
29 Retirez le tube du support de tubes.
13-8
Réf. B95008AA
Procédures de remplacement/réglage
Retrait et remplacement du support de tubes
30 Inspectez le tube pour vérifier que la sonde d’aspiration a perforé le milieu du bouchon du tube.
Si le trou n’est pas centré sur le bouchon ou que le bouchon n’a pas été perforé, contactez votre
représentant Beckman Coulter.
Retrait et remplacement du support de tubes
Suivez cette procédure pour retirer et remplacer le support de tubes. Voir la liste des tubes
d’hématologie pour plus d’informations sur les tube d’échantillon et leur supports de tubes désignés
(voir Documents associés).
Réf. B95008AA
1
Sélectionnez
2
Lorsque la porte échantillon s’ouvre, repérez le support de tubes. Voir Figure 1.6, Vue latérale
droite du DxH 520 derrière la porte du diluteur dans le CHAPITRE 1, Présentation du système.
3
Saisissez fermement et tirez vers vous le support de tubes pour le retirer de son compartiment.
4
Pour le replacer, insérez le support de tubes dans son compartiment jusqu’à ce qu’un clic vous
indique qu’il est en bon position.
.
13-9
13
Procédures de remplacement/réglage
Retrait et remplacement du support de tubes
13-10
Réf. B95008AA
ANNEXE A
Niveaux d’accès et rapports
Niveaux d’accès
Les niveaux d’accès sécurisé sont indiqués en tant que O (Oui) ou N (Non) dans le tableau suivant.
Tableau A.1 Niveaux d’accès sécurisé
Réf. B95008AA
Fonction
Opérateur
Administrateur
AFFICHER/EXÉCUTER (ANALYSE DES SPÉCIMENS)
O
O
RÉSULTATS PATIENT
O
O
Rechercher
O
O
Afficher
O
O
Réexécuter
O
O
Modifier
N
O
Aucune correspondance
O
O
Supprimer
N
O
LISTE DE TRAVAUX
O
O
Ajouter
O
O
Modifier
O
O
Supprimer
O
O
CONTRÔLES JOURNALIERS
O
O
Contrôle journalier
O
O
Comptage résiduel
O
O
Arrêt
O
O
Journaux d’événements
O
O
CQ/AQ
O
O
Graphes
O
O
Affichage
O
O
Observations
O
O
Supprimer
N
O
XB
O
O
Graphes
O
O
Détails
O
O
Supprimer
N
O
Configurer XB
N
O
A-1
Niveaux d’accès et rapports
Niveaux d’accès
Tableau A.1 Niveaux d’accès sécurisé (Suite)
A-2
Fonction
Opérateur
Administrateur
XM
O
O
Graphes
O
O
Détails
O
O
Supprimer
N
O
Configurer XM
N
O
IQAP
N
O
AQ
O
O
Répétabilité
O
O
Démarrer
O
O
Détails
O
O
Supprimer
O
O
Contamination
O
O
Démarrer
O
O
Détails
O
O
Supprimer
O
O
Calibration
O
O
Afficher
O
O
Facteurs cal
N
O
Terminer
N
O
Configuration
N
O
Modifier
N
O
RÉACTIFS
O
O
Configuration
O
O
Amorcer tout
O
O
Compteur cycles
O
O
Réinitialiser le compteur
N
N
Configurer le récipient à déchets
O
O
Amorcer diluant
O
O
Amorcer lyse
O
O
Amorcer l’agent de nettoyage
O
O
JOURNAUX
O
O
Tout
O
O
Traçabilité
O
O
Avertissement
O
O
Erreur
O
O
Réf. B95008AA
Niveaux d’accès et rapports
Niveaux d’accès
Tableau A.1 Niveaux d’accès sécurisé (Suite)
Réf. B95008AA
Fonction
Opérateur
Administrateur
Contrôles journaliers
O
O
Exporter
O
O
CONFIGURATION
O
O
Contrôles
O
O
Nouveau CQ
O
O
Modifier CQ
N
O
Supprimer
N
O
IQAP
N
O
XB
N
O
XM
N
O
EQC
N
O
Informations d’en-tête
N
O
Options d’impression
N
O
Unités des paramètres
N
O
Spécimen suivant
N
O
Mise sous tension du système
N
O
Imprimante
N
O
Date/Heure
N
O
Accès sécurisé
N
O
Plages de référence
N
O
SIL
N
O
Sauvegarde ou Restauration
N
O
Autre
N
O
À propos de
O
O
FONCTIONS
O
O
Diagnostics
O
O
Réinitialisation du matériel
O
O
Nettoyer les bacs
O
O
Rétro-rincer les ouvertures
O
O
Cycle d’eau de Javel
O
O
Réinitialisation du diluteur
O
O
Préparation pour expédition
N
O
Vidanger les bacs
O
O
Rincer les bacs
O
O
Positionnement du lubrifiant
O
O
A-3
A
Niveaux d’accès et rapports
Rapports
Tableau A.1 Niveaux d’accès sécurisé (Suite)
Fonction
Opérateur
Administrateur
Distribution du diluant
O
O
Vérifier les vannes
O
O
Vannes individuelles
O
O
Tout
O
O
Analyser les vannes
O
O
Vérifier les capteurs
O
O
DEL HB
N
O
DEL OPT
N
O
Courant d’ouverture
N
O
Vide
N
O
Entretien
N
N
DÉCONNEXION
O
O
Rapports
Cette section contient des exemples des rapports disponibles.
A-4
Réf. B95008AA
Niveaux d’accès et rapports
Rapports
Figure A.1 Résultats de patient — NFS, sang total — Format 1
Réf. B95008AA
A-5
A
Niveaux d’accès et rapports
Rapports
Figure A.2 Résultats de patient — CD, sang total — Format 2
A-6
Réf. B95008AA
Niveaux d’accès et rapports
Rapports
Figure A.3 Résultats de patient — CD, sang prédilué — Format 1
Réf. B95008AA
A-7
A
Niveaux d’accès et rapports
Rapports
A-8
Réf. B95008AA
ANNEXE B
Codes-barres
Spécifications des étiquettes de codes-barres
Le scanner de codes-barres portatif lit le nombre de caractères dans la symbologie utilisée plus un
caractère de contrôle.
Par défaut, le scanner de codes-barres contient la configuration.
Les symbologies de code-barres de spécimen prises en charge sont Code 128, c-barres, NW7, Code
39, et Interleaved 2 of 5. Le scanner de codes-barres peut lire jusqu’à 22 caractères ou le nombre total
de caractères pouvant être imprimés dans la hauteur visible, selon la moindre des deux valeurs.
ATTENTION
Risque de mauvaise identification. Beckman Coulter vous recommande d’activer
la somme de contrôle pour les étiquettes à codes-barres.
Tableau B.1 Spécifications des paramètres d’impression
10 μM rapport 3:1 recommandé
Longueur
minimum du tube
nécessaire
Nombre de caractères par type de code
Code 128 *
Code 39
Interleaved 2 of 5
Codabar
55 mm
9
4
12
8
60 mm
11
5
14
9
65 mm
12
6
16
11
70 mm
14
8
18
12
75 mm
16
9
20
14
80 mm
19
10
22
16
85 mm **
21
11
-
18
90 mm
22
12
-
19
95 mm
-
13
-
20
100 mm
-
14
-
22
* L’instrument prend en charge la symbologie Codabar avec AIM-16 en utilisant A en tant que
caractère de début et de fin.
** Un tube d’une longueur de 85 mm ou plus peut seulement être utilisé pour le traitement en mode
Tube ouvert.
Réf. B95008AA
B-1
Codes-barres
Spécifications des étiquettes de codes-barres
B-2
Réf. B95008AA
ANNEXE C
Liste de vérification de formation
Liste de vérification de formation
Consultez cette liste de vérification avant d’utiliser l’instrument.
Tableau C.1 Liste de vérification de formation
Initiales/Date de
réalisation
Rubrique
Description
Matériel
CHAPITRE 1, Présentation du système
• Identifier les composants et décrire leurs fonctions. Voir Vues de
l’instrument.
Logiciel
CHAPITRE 1, Présentation du système
• Se familiariser avec les icônes de la section Logiciel.
Fonctionnement du
système
CHAPITRE 3, Démarrage et contrôles journaliers
• Effectuer une mise sous tension de l’instrument et se connecter.
Voir Connexion/déconnexion.
• Exécuter les contrôles journaliers et s’assurer que tous les
paramètres des contrôles journaliers affichent Succès. Voir
Contrôles journaliers.
CHAPITRE 9, Configuration
• Reconnaître et remplacer les réactifs. Voir Configuration ou
remplacement des réactifs.
• Remplacer le récipient à déchets, le cas échéant. Voir
Configuration ou remplacement du rejet des déchets.
CHAPITRE 8, Arrêt
• Effectuer un arrêt de l’instrument. Voir Effectuer un arrêt.
• Effectuer une mise hors tension. Voir Arrêt d’urgence, Arrêt en
cours, et Coupure de l’alimentation.
Réf. B95008AA
C-1
Liste de vérification de formation
Liste de vérification de formation
Tableau C.1 Liste de vérification de formation (Suite)
Initiales/Date de
réalisation
Rubrique
Description
Contrôle de qualité
CHAPITRE 9, Configuration
• Configurer de nouveaux numéros de lot de contrôle de qualité.
Voir Configuration et édition des contrôles.
CHAPITRE 4, Contrôle de qualité
• Préparer et traiter les contrôles de qualité. Voir Analyse des
contrôles commerciaux.
• Réviser les contrôles de qualité et vérifier que toutes les
analyses de contrôle se trouvent dans les limites. Voir Affichage
des fichiers témoins.
• Reconnaître les analyses de contrôle de qualité qui ne sont pas
dans les limites et résoudre les problèmes, si nécessaire. Voir Si
un contrôle est hors plage.
• Ajouter des commentaires, imprimer, exporter, supprimer et
transmettre des contrôles de qualité, le cas échéant. Voir
Affichage des fichiers témoins, Impression des fichiers témoins,
Exportation des fichiers témoins, et Suppression des fichiers
témoins.
• Préparer et télécharger les données IQAP. Voir Téléchargement
vers IQAP.
C-2
Réf. B95008AA
Liste de vérification de formation
Liste de vérification de formation
Tableau C.1 Liste de vérification de formation (Suite)
Initiales/Date de
réalisation
Rubrique
Description
Échantillons patient
CHAPITRE 2, Principes de fonctionnement
• Différencier les histogrammes et scattergrammes différentiels
anormaux des résultats normaux. Voir CHAPITRE 2, Principes de
fonctionnement.
• Lire Mesure, dérivation et calcul des paramètres.
CHAPITRE 1, Présentation du système
• Examiner les substances interférentes. Voir Limites.
CHAPITRE 5, Analyse des échantillons
• Voir Identification des échantillons patient.
• Préparer et traiter les échantillons patient de sang total en mode
Tube fermé. Voir Analyse d’échantillons de sang total en mode
Tube fermé.
• Préparer et traiter les échantillons patient de sang total en mode
Tube ouvert. Voir Analyse d’échantillons de sang total en mode
Tube ouvert.
• Préparer et traiter les échantillons de sang prédilué. Voir
Exécuter des échantillons de sang prédilué.
CHAPITRE 6, Consultation résultats
• Réviser les échantillons patient et rechercher, supprimer et
imprimer des résultats de patient. Voir Révision des résultats de
patient, Recherche de résultats de patient, Suppression des
résultats de patient, et Impression des résultats de patient.
• Reconnaître les indicateurs, codes et messages. Voir
Indicateurs, Codes, et Messages affichés.
CHAPITRE 7, Liste de travaux
• Créer une liste de travaux. Voir Configuration d’une demande de
test.
• Faire correspondre un ID spécimen auto-séquencé
(Auto-SIDxxxxx) avec une entrée dans la liste de travaux, le cas
échéant. Voir Correspondance des ID spécimen (SID).
Maintenance
CHAPITRE 10, Dépannage
• Se familiariser avec les scénarios de dépannage général. Voir
Dépannage général.
• Afficher les journaux d’événements, identifier les erreurs de
journalisation et exporter les fichiers journaux. Voir Affichage des
journaux et Exportation des journaux.
CHAPITRE 12, Procédures de nettoyage
• Effectuer les procédures de nettoyage. Voir Quand, pourquoi et
comment exécuter chaque procédure de nettoyage.
CHAPITRE 13, Procédures de remplacement/réglage
• Se familiariser avec les procédures de remplacement/réglage.
Voir Quand, pourquoi et comment exécuter chaque procédure
de remplacement/réglage.
Réf. B95008AA
C-3
C
Liste de vérification de formation
Liste de vérification de formation
Tableau C.1 Liste de vérification de formation (Suite)
Initiales/Date de
réalisation
Rubrique
Description
Assurance qualité
CHAPITRE 11, Assurance qualité
• Effectuer la procédure de répétabilité et vérifier que le CV%
n’excède pas les limites de répétabilité. Voir Exécution du test de
répétabilité.
• Effectuer la procédure test de contamination inter-échantillons
et vérifier que tous les paramètres affichent Succès. Voir
Exécution d’un test de contamination inter-échantillons.
• Lire Quand vérifier la calibration et Quand effectuer la
calibration.
• Effectuer une calibration. Vérifier et réviser les résultats de
calibration. Voir Calibration à l’aide du calibrateur de série
DxH 500.
Nom et signature
de l’opérateur :
Titre de l’opérateur :
Nom et signature
du formateur :
Titre du formateur :
C-4
Réf. B95008AA
ANNEXE D
Liste de vérification de mise en œuvre
Liste de vérification des performances
Hématologie — À effectuer pendant la mise en œuvre par le personnel du laboratoire
Tableau D.1 Liste de vérification des performances
Instrument/Numéro de série :
Procédure
Date de réalisation ou
S/O*
Technicien
Données d’installation du matériel vérifiées
Familiarisation avec le logiciel et les icônes du logiciel
Répétabilité vérifiée
Test de contamination inter-échantillons vérifié
Calibration vérifiée
Configuration du système et des options de rapport
Configuration des fichiers CQ
Configuration de l’assurance qualité et inscription IQAP/eIQAP
Configuration et vérification de l’interface SIL
Analyse des échantillons sur le nouvel instrument et méthode
de comparaison : NFS/Diff et différentiels manuels pour les
tables de vérité
Données de comparaison collectées et soumises pour
l’analyse des données
Plage de mesure (linéarité) vérifiée
Intervalle de référence (plages normales) vérifié
Limites de laboratoire CQ (selon le protocole du laboratoire)
établies
Comparaison des méthodes : instrument principal par rapport
à l’instrument de secours
Rapports d’analyse des données révisés avec le personnel de
laboratoire approprié
Approbation du directeur du laboratoire/pathologie
* Certains éléments peuvent ne pas s’appliquer en fonction de l’instrument, du menu de tests, du
protocole du laboratoire et/ou de l’organisme de réglementation local.
Réf. B95008AA
D-1
Liste de vérification de mise en œuvre
Liste de vérification des performances
D-2
Réf. B95008AA
Abréviations et acronymes
μ — micron
m — mètre
μL — microlitre
TCMH — taux cellulaire moyen en hémoglobine
μm — micromètre
CCMH — concentration cellulaire moyenne en
hémoglobine
A — ampère
VMC — volume moyen cellulaire
ASCII — American Standard Code for Information
Interchange (Code standard américain pour
l’échange d’information)
mL — millilitre
ASTM — American Society for Testing and
Materials
mW — milliwatt
NFS — numération formule sanguine
CD — NFS/DIFF (pour CBC/Diff en anglais)
CLSI — Clinical and Laboratory Standards Institute
(Institut des normes cliniques et de laboratoire)
mm — millimètre
n — Nombre
nm — nanomètre
OV — tube ouvert
PD — prédilué
cm — centimètre
pg — picogramme
CP — perforateur de bouchons
Plt — Plaquette sanguine
CV — coefficient de variation
psi — Livres par pouce carré
dB — décibel
AQ — Assurance qualité
EDTA — Acide éthylène diamine tétra acétique
QC — contrôle de qualité
FDA — Food and Drug Administration
SDS — Safety Data Sheet (Fiche technique santésécurité)
pi — pied (foot ou feet)
gal — gallon
HCT — hématocrite
HB — hémoglobine
H&H — HB/HCT
Hz — hertz
SID — Identifiant du spécimen
STAT — Délai d’exécution prioritaire (urgent ou
immédiat)
VCA — Volts (courant alternatif)
V c.c. — Volts (courant continu)
NGB — Globule blanc
IQAP — Programme d’assurance qualité interlaboratoires
XB — Moyenne mobile de Bull
IVD — diagnostics in vitro
XM — moyenne mobile
L — litre
SIL — Système d’informations du laboratoire
Réf. B95008AA
Abréviations-1
Abréviations et acronymes
Abréviations-2
Réf. B95008AA
Glossaire
accepté — Les résultats de test ont été validés
automatiquement ou manuellement et identifiés
comme pouvant faire l’objet d’un rapport en
dehors du domaine du système conformément
aux définitions de votre laboratoire.
analyse XB — Une seule analyse d’un échantillon
dont les résultats sont utilisés comme
résultats XB. L’analyse possède aussi des
informations d’identification qui y sont associées
en plus des résultats.
Acide éthylène diamine tétra acétique
(EDTA) — Un anticoagulant courant utilisé pour les
tests hématologiques.
analyse XM — Une seule analyse d’un échantillon
dont les résultats sont utilisés comme
résultats XM. L’analyse possède aussi des
informations d’identification qui y sont associées
en plus des résultats.
administrateur du laboratoire — Une personne
ayant la responsabilité de la gestion d’un
laboratoire.
administrateur système — Une personne qui est
responsable de l’administration du système et
peut effectuer des actions telles que la
configuration des modules et du système et
l’exécution d’autres activités de maintenance
moins régulière.
administrateur — Une personne dont le travail
consiste à administrer les affaires d’une
entreprise ou d’une organisation. Voir opérateur
niveau 2.
agent de nettoyage — Un détergent utilisé pour
rincer l’échantillon des tubes et pour éliminer
l’accumulation de protéines.
alerte — Une classification de condition d’erreur
pour des événements du système. Une alerte a
lieu lorsqu’une condition existe sur le système
pour laquelle des mesures correctrices doivent
être prises pour que les résultats des spécimens
puissent être obtenus. Cette condition n’a pas
d’effet immédiat sur le fonctionnement du
système puisque le système ne s’arrête pas. Le
système alerte l’opérateur en déclenchant des
alarmes visuelles, et si nécessaire des alarmes
sonores. Les alertes ne sont pas consignées dans
le journal des événements. Toutes les alertes
doivent être passées en revue par l’opérateur ; la
méthode de révision est cependant spécifique à
chaque événement.
algorithme — Une procédure particulière
d’exécution d’une analyse.
Réf. B95008AA
analyser — Traiter un échantillon pour déterminer
les résultats d’un ou plusieurs tests.
anticoagulant — Une substance ajoutée au sang
pour empêcher sa coagulation.
appartenance — Les différents types de cellules
dans une région particulière, quel que soit le
nombre de cellules. Sur les graphiques,
l’appartenance est affichée par la représentation
des différents types de cellules en différentes
couleurs.
archivage — Le processus de suppression des
résultats inactifs du système et d’enregistrement
des résultats dans un format permettant de
récupérer et de visualiser ultérieurement les
données archivées via le logiciel du système (et
pouvant de préférence être lu par un programme
externe), en offrant une vue similaire à celle
disponible pour un résultat actif ou inactif.
assurance qualité inter-laboratoires —
Programme (IQAP) — Un programme géré par
Beckman Coulter, Inc. destiné aux utilisateurs de
contrôles et d’instruments hématologiques. Cela
permet à un laboratoire de comparer ses
performances à celles de tous les autres
laboratoires du programme utilisant la même
catégorie d’instrument et les mêmes contrôles
ou similaires.
basophile — Un NGB granulocytaire mature avec
des granules qui contiennent des composants
vasomoteurs et de l’héparine. Les granules se
colorent en bleu violet avec le colorant de Wright.
Glossaire-1
Glossaire
calibrateur — Une substance avec des valeurs
obtenues par des instruments de référence et
utilisée pour la calibration des instruments.
correction de coïncidence — Ajustement
mathématique du nombre et de la taille des
cellules à cause de l’erreur de coïncidence.
calibration — La procédure utilisée pour régler un
instrument sur une valeur ou des valeurs
spécifiques à l’aide d’une méthode de référence.
couper l’alimentation — Éteindre un instrument.
caractères — Toutes les lettres de a à z et les
chiffres de 0 à 9.
coefficient de variation (CV ou CV%) — Une
expression, exprimée en pourcentage (%) de
l’étalement des données (variation) par rapport à
la valeur moyenne. Les termes CV, CV% et
coefficient de variation sont interchangeables.
SD
CV% = --------------- × 100
Mean
comptage résiduel — Mesure la quantité
d’interférence électrique ou particulaire.
concentration cellulaire moyenne en
hémoglobine (CCMH) — La masse de
l’hémoglobine dans le volume de globules
rouges exprimée en g/dL ou en g/L.
consommable — Un composant nécessaire à un
système physique pendant son fonctionnement
et qui est généralement jeté après utilisation
unique ou après un nombre fini d’utilisations. Ils
incluent des produits comme les calibrateurs, les
contrôles, les réactifs liquides, etc.
contrôle de qualité étendu — Règles de CQ
supplémentaires pour la vérification des points
suivants :
• Erreur aléatoire ou imprécision
• Erreur systématique ou écart systématique
• Erreur totale ou inexactitude
contrôle qualité (CQ) — Un ensemble de
procédures établies par un laboratoire pour
s’assurer qu’un instrument fonctionne de
manière exacte et précise.
contrôle — Une substance avec des valeurs
prédéterminées utilisée comme standard pour la
vérification de l’exactitude des résultats de
l’instrument.
Glossaire-2
date de péremption — Le dernier jour
d’utilisation d’un réactif, d’un témoin ou d’un
calibrateur recommandé par le fabricant.
débit — Une mesure de la vitesse à laquelle un
instrument peut produire des résultats de test,
mesuré communément en tests par heure.
décalage — Des valeurs consécutives qui se
déplacent abruptement d’un niveau (moyenne)
à un autre, puis se maintiennent à un niveau
constant.
décilitre (dL) — Une unité de mesure
volumétrique égale à 0,1 litre.
demande de test — Une description des tests à
effectuer sur chaque spécimen donné.
densité — Le nombre de cellules dans une région
particulière, quel que soit le type de cellule. Sur
les graphiques, au fur et à mesure que plus de
cellules apparaissent dans une région
particulière, la couleur de celle-ci devient plus
vive.
dernière série XB — La dernière série XB pour
laquelle des résultats sont disponibles et qui
précède directement la série XB en cours.
Diff # — Utilisé pour représenter les tests
individuels de numération qui incluent : Nb_NE,
Nb_LY, Nb_MO, Nb_EO et Nb_BA.
DIFF % — Utilisé pour représenter les tests de
différentiel individuels en % : NE, LY, MO, EO
et BA.
différentiel (Diff) — Différentiel des leucocytes
ou globules blancs.
différentiel 5 parts — Classification des
leucocytes en cinq sous-populations
(neutrophiles, lymphocytes, monocytes,
éosinophiles et basophiles).
différentiel NGB — Détermination du type et du
nombre de leucocytes d’un échantillon sanguin.
Elle peut être obtenue par l’instrument ou par
examen d’un frottis sanguin coloré.
Réf. B95008AA
Glossaire
données brutes — Données non analysées.
droit d’accès — Permission d’effectuer certaines
fonctions, par exemple saisir une demande de
test ou passer en revue les résultats de patient.
eau déionisée — Eau libérée des sels et de
certains organismes par un processus d’échange
d’ions. Cette eau peut être utilisée à la place
d’eau distillée dans les procédures. Appelée
aussi H2O DI ou eau distillée.
eau distillée — Eau libérée des solides et
organismes par la distillation. Cette eau peut être
utilisée à la place d’eau déionisée dans les
procédures.
écart type (SD) —
Une mesure de la déviation par rapport à la
moyenne. Par exemple, une mesure de la plage
de déviation d’un canal dans une mesure.
SD =
 x – x 2

-----------------------N–1
erreur systématique — L’écart systématique ou
la déviation de la moyenne par rapport à la
valeur cible.
érythrocyte (globule rouge) — Un disque
biconcave de 6,2 à 8,2 μm qui apporte l’oxygène
aux tissus du corps et emmène le dioxyde de
carbone.
événement — Un fait qui doit être noté ; quelque
chose qui doit être inscrit.
exactitude — Mesure de la capacité de
l’instrument à fournir un résultat de test
correspondant à une valeur de référence connue.
exact — La mesure signalée est conforme, dans
des limites acceptables, à la norme de référence
préférée. Parfois spécifiée comme étant la
différence des moyennes d’un échantillon et du
test ou de la valeur attendue (différence de
moyenne) ou la différence de pourcentage des
moyennes d’un échantillon et du test ou de la
valeur attendue (différence de moyenne en
pourcentage).
échantillon — Une fraction d’un spécimen utilisé
pour analyse sur un instrument.
exécution — Une analyse d’un spécimen qui
produit des résultats de test.
éosinophile — Un granulocyte NGB mature qui
répond aux infections parasitaires et aux
conditions allergiques. Les granules sont colorés
en rouge orangé par le colorant de Wright.
exporter — Pour formater et entreposer les
données afin qu’elles puissent être utilisées par
des programmes externes (comme par exemple
Microsoft Excel ou Word).
erreur aléatoire — Imprécision ou variance.
facteur de calibration — Un facteur numérique
appliqué à un résultat donné par un instrument
afin d’établir un accord entre les mesures de
l’instrument et une valeur de référence.
erreur de coïncidence — Erreurs produites dans
la numération et l’évaluation de la taille dues à la
présence simultanée de plus d’une cellule dans
la zone de détection de l’ouverture. Le système
les détecte en tant qu’une grosse cellule plutôt
que deux cellules distinctes.
erreur de mesure unique — La déviation possible
de la mesure unique d’un résultat. L’erreur de
mesure unique est repérée par un message
lorsque le Contrôle de qualité étendu est activé
et que le résultat a dépassé la limite supérieure
ou inférieure des limites d’erreur de mesure
unique définies par l’opérateur. L’Erreur de
mesure unique est mesurée dans le fichier de
contrôle comme Racine carrée de l’erreur
quadratique (RMSE).
femtolitre (fL) — Femtolitre, une unité de mesure
volumétrique égale à 10–15 litres.
fichier témoin — Un ensemble de résultats de
contrôle obtenus et les résultats attendus pour
ceux-ci. Chaque fichier témoin contient des
résultats pour un seul instrument et un seul lot de
contrôle ou spécimen.
génération d’indicateurs — La capacité d’un
système à identifier la présence d’anomalies
possibles qui peuvent affecter l’exactitude du
résultat d’un test ou nécessiter un travail
supplémentaire et d’en avertir l’opérateur.
globule blanc (NGB) — La numération des
globules blancs résulte de l’analyse NFS.
Réf. B95008AA
Glossaire-3
Glossaire
globule rouge (NGR) — Voir érythrocyte (globule
rouge).
gramme (g) — Une unité de masse.
graphique — Une représentation graphique de
résultats. Les graphiques présentent une vue
combinée de la densité et de l’appartenance
d’une population. Les couleurs représentent
différents types de cellules. Les nuances de
couleur représentent le nombre de cellules — les
couleurs vives sont les plus denses.
groupe XM — Le groupe (NFS ou DIFF) dans lequel
les résultats sont placés pour l’analyse XM.
hématocrite (HCT) — Volume d’érythrocytes. Le
pourcentage d’érythrocytes par rapport à tout
l’échantillon sanguin.
hémoglobine (HB) — Une protéine des globules
rouges qui transporte l’oxygène et le bioxyde de
carbone.
hémoglobinométrie — Mesure de l’hémoglobine
dans le sang.
hertz (Hz) — Une unité de fréquence.
histogramme NGR — Une courbe de distribution
des globules rouges. Une courbe normale va de
36 à 360 fL. L’affichage commence à 24 fL.
histogramme PLT — La partie de la courbe de
répartition des PLT entre 0 fL et 36 fL.
histogramme — Une représentation graphique de
la distribution cellulaire d’un échantillon sanguin
où la taille se trouve sur l’axe X et la fréquence
sur l’axe Y.
ID opérateur — Identifie de manière unique la
personne qui traite les échantillons.
ID patient — L’instrument considère ce champ
comme un identificateur d’échantillon facultatif.
Votre laboratoire peut l’utiliser comme
identificateur spécifique du patient (dossier
médical ou numéro de Sécurité sociale). Il est
prévu pour les laboratoires qui veulent suivre les
résultats de différents tests ou échantillons pour
un même patient.
ID de contrôle — Un ID spécimen qui ne peut pas
être utilisé pour les spécimens de patient car un
contrôle a été configuré avec un numéro de lot
qui correspond à l’ID spécimen.
identificateur primaire — Un identificateur
unique qui sera utilisé par le système pour
identifier positivement un spécimen de patient.
identificateur secondaire — Un identificateur qui
n’est pas configuré pour être l’identificateur
primaire et qui peut être utilisé par le système
pour identifier un spécimen de patient dans les
cas où l’identificateur primaire ne peut pas être
lu.
identificateur système (SID) — Un identificateur
saisi au moment de l’installation utilisé pour
identifier le système lors d’un appel à votre
représentant Beckman Coulter.
imprécision — Le degré de variation d’un résultat
à cause d’une erreur aléatoire lorsqu’il est
mesuré plusieurs fois sur le même instrument.
in vitro — En dehors d’un organisme vivant,
comme dans un laboratoire ou un récipient
artificiel.
in vivo — Dans un organisme vivant, associé au
système physiologique.
Incrémentation automatique — Une option,
lorsqu’elle est sélectionnée, où les ID spécimen
sont automatiquement attribués de numéros en
ordre séquentiel.
indices NGR — En hématologie, se réfère aux
valeurs calculées suivantes des propriétés des
globules rouges : VMC, TCMH et CCMH.
indices — En hématologie, se réfère aux valeurs
calculées suivantes des propriétés des globules
rouges : VMC, TCMH et CCMH.
instrument — Une unité analytique ou de
préparation composée d’un ou plusieurs
modules.
interface utilisateur — L’écran et les
périphériques mécaniques (clavier, souris)
utilisés par un opérateur pour interagir avec le ou
les instruments.
journal — Un enregistrement de certains faits ou
événements du système
Glossaire-4
Réf. B95008AA
Glossaire
indicateurs — Un indicateur est une lettre ou un
symbole qui apparaîtra toujours à la droite d’un
résultat. Un indicateur peut être généré par
l’instrument (R, P) ou défini par le laboratoire
(H, L, c, a). Sur les écrans et les sorties
imprimées, les lettres comme H, L et R
apparaissent à côté des résultats du paramètre
pour indiquer des conditions spécifiques.
leucocyte (globule blanc) — Cellules qui
défendent le corps contre les maladies.
limites critiques — Les limites pour la valeur d’un
test telles que si la valeur se trouve en dehors
des limites, la vie du patient peut être en danger
et une action et une notification immédiates sont
nécessaires.
limites d’action — Les limites pour une valeur de
test telles que si la valeur est en dehors des
limites, une action ou une révision ultérieure est
suggérée (par exemple répéter le test, passer en
revue le frottis sanguin, etc.).
linéarité — La capacité (dans une plage donnée)
d’un instrument de fournir des résultats qui sont
directement proportionnels à la concentration
(quantité) de la substance à analyser dans
l’échantillon test.
liquide de gainage — Un liquide qui entoure et
aligne un autre liquide.
liste de travaux — Une liste de l’état d’analyse
des spécimens.
litre (L) — Une unité de mesure volumétrique
logiciel d’application — Logiciel qui contrôle et
implémente le système.
lymphocyte — NGB du système lymphatique. Clé
du système immunitaire du corps, le lymphocyte
reconnaît et élimine les agents pathogènes
étrangers au corps
lyser — Séparer ou dissoudre.
livres par pouce carré (psi) — Une unité de
mesure de pression.
maintien — Lorsqu’une valeur de test, un profil ou
un ensemble de résultats de test sont identifiés
comme nécessitant révision et vérification avant
qu’ils soient acceptés.
Réf. B95008AA
mètre (m) — Une unité de mesure linéaire
mettre sous tension — Allumer un instrument.
micron (μ) — Un millionième de mètre
millilitre (mL) — Une unité de mesure
volumétrique égale à 10-3 litre.
millimètre (mm) — Une unité de mesure linéaire
égale à un millième de mètre.
monocyte (MO) — Un grand NGB mononucléaire
et phagocytique qui se trouve dans le sang
périphérique et dans le système lymphoïde.
mononucléaire — Qui n’a qu’un noyau.
moyenne de la série — La moyenne d’un
ensemble d’exemples.
moyenne — Moyenne arithmétique d’un groupe
de données.
moyennes de la série XM — La valeur moyenne
calculée pour la série de résultats XM.
nanomètre (nm) — Une unité de mesure linéaire
égale à 10-9mètre.
nombre absolu — Concentration d’un type de
cellules exprimée sous la forme d’un nombre par
volume de sang total.
numération formule sanguine (NFS) — Les
paramètres de sang total NGR, NGB, HB, HCT,
VMC, TCMH, CCMH, PLT, RDW, RDW-SD, et VMP.
numéro de lot — Un identifiant attribué par un
fabricant permettant d’identifier un contrôle, un
réactif ou un calibrateur
observation aberrante — Résultats de contrôle
qui se trouvent en dehors de la plage attendue
ou établie.
onduleur (UPS) — Un périphérique avec batterie
qui permet le fonctionnement continu limité d’un
instrument ou d’un autre périphérique pendant
une panne de courant.
opérateur de base — Un opérateur qui n’a qu’une
autorité limitée sur le fonctionnement du
système.
Glossaire-5
Glossaire
opérateur niveau 2 — Un opérateur qui a reçu
une autorité supérieure à celle d’un opérateur de
base.
opérateur — Une personne qui peut utiliser le
système.
ouverture — Un orifice de taille et de longueur
spécifiques à travers lequel passent les cellules
pour leur numération et l’évaluation de leur
taille.
par défaut — Paramètre d’origine dans le logiciel.
paramètre — Composant sanguin que
l’instrument mesure et qui fait l’objet d’un
rapport.
plage analytique — La plage à l’intérieur de
laquelle l’instrument est exact.
plage de fonctionnement — La plage sur laquelle
l’instrument affiche, imprime et transmet les
résultats.
Plage de mesure analytique — La plage de
mesure analytique est la plage de valeurs à partir
desquelles les critères d’acceptabilité de la
méthode sont définis.
plage de référence — Une plage de valeurs de
test déterminée par analyse statistique de
spécimens collectés dans une population
normale (non malade).
plage — La différence entre la mesure la plus
élevée et la mesure la plus basse dans une série.
plaquette sanguine (thrombocyte) — Les
fragments cytoplasmiques de mégacaryocytes
qui circulent sous la forme de petits disques dans
le sang périphérique. C’est un élément essentiel
de la coagulation du sang.
racine carrée de l’erreur quadratique
(RMSE) — Mesurée dans un fichier de contrôle
avec Contrôle de qualité étendu activé, lorsque N
est plus grand ou égal à 15 analyses. La RMSE
est un résultat statistique qui est comparé aux
limites de l’Erreur de mesure unique.
Δ =
2
n–1 2
------------ ⋅ s + δ
n
rapport effectué — Les résultats de test ont été
envoyés automatiquement ou manuellement à
une destination spécifiée par l’utilisateur. Les
résultats de test peuvent avoir été acceptés ou
non.
rapport final — Tout rapport de patient envoyé
après déblocage final de l’ensemble des résultats
du patient.
rapport préliminaire — Tout rapport de patient
envoyé avant déblocage final de l’ensemble des
résultats du patient.
rapport — Un enregistrement mis en forme
imprimé et/ou électronique des données
système ou de spécimens compilées.
RDW (Indice de distribution des globules
rouges) — La distribution en volume de la
population d’érythrocytes dérivée de
l’histogramme NGR. Exprimé en coefficient de
variation (%).
RDW-SD — La distribution en volume de la
population d’érythrocytes dérivée de
l’histogramme NGR. Exprimé sous la forme d’un
écart-type en fL.
réactif — Une substance utilisée (comme la
détection ou la mesure d’un composant ou la
préparation d’un produit) à cause de son activité
biologique ou chimique. (Webster)
plaquettes géantes — Plaquettes d’une taille
supérieure à 20 fL.
réexécution — La capacité à répéter une analyse
sur un spécimen avec le même test.
précision — Une mesure de la capacité de
l’instrument à reproduire des résultats similaires
lorsqu’un échantillon est analysé plusieurs fois.
S’appelle aussi la répétabilité.
rejet partiel — Une numération d’orifice
individuel qui n’est pas utilisée dans la valeur
moyenne du paramètre.
prédilution — Dilution d’un échantillon avant son
analyse sur l’analyseur.
Glossaire-6
Réf. B95008AA
Glossaire
rejet total — Un code (-----) qui remplace le
résultat du paramètre moyen lorsqu’il y a
désaccord entre les deux numérations. Les
numérations de l’orifice pour les deux durées du
comptage étaient trop éloignées l’une de l’autre
pour donner une valeur moyenne du paramètre.
série XM en cours — La série de résultats XM
configurée entre 20 et 500 analyses, dans
laquelle les résultats sont actuellement placés.
La série reste la série en cours jusqu’à l’analyse
du premier échantillon après cette série. À ce
moment-là, elle deviendra la dernière série XM.
répétabilité — La proximité entre les résultats de
mesures successives de la même substance
effectuées dans les mêmes conditions de
mesure. Appelée aussi reproductibilité, précision,
précision intra-analyse ou précision intra-test.
série XM terminée — La série XM pour laquelle le
nombre maximum d’analyses pour la série sont
disponibles.
requête au SIL — Lorsqu’un instrument clinique
demande au SIL des informations de test pour un
spécimen spécifique.
restauration de la sauvegarde — Ramener les
données sauvegardées dans le système afin
qu’elles remplacent les données actives du
système et deviennent les données actives.
résultat critique — Un résultat considéré comme
suffisamment anormal pour nécessiter un
avertissement immédiat du médecin
prescripteur.
résultats XB — Les résultats des paramètres (par
exemple TCMH, CCMH) incorporés dans une série
XB.
résultats XM — Les résultats des paramètres qui
ont été incorporés dans une série XM.
résultat — Une ou des valeurs numériques
obtenues après analyse d’un test particulier.
sauvegarder — Stocker les données séparément
des données actives tout en laissant les données
actives en place.
série en cours XB — La série de 20 résultats XB
dans laquelle les résultats sont placés. La série
restera la série en cours jusqu’à l’analyse du
premier échantillon après cette série. À ce
moment-là, elle deviendra la dernière série XB.
série XB précédente — La série XB
immédiatement antérieure à la dernière série
XB.
série XB — Un ensemble de résultats XB pour
20 analyses maximum et les statistiques XB
associées si elles existent.
Réf. B95008AA
série XM — Un ensemble de résultats XM
configurés entre 20 et 500 analyses, et les
statistiques XM associées s’il y en a.
série — Un groupe ou ensemble de résultats.
sonde d’aspiration — Dispositif qui perfore le
bouchon et par lequel l’échantillon est aspiré.
spécifications — Une formulation exacte de
renseignements, particulièrement un
formulation prescrivant des matériaux, et de
dimensions pour quelque chose qui doit être
installé.
spécimen — La portion discrète de sang total
prélevée à des fins d’examen, d’étude ou
d’analyse.
statistiques XB — Statistiques qui résultent de
l’analyse des résultats d’une série XB ou d’un
ensemble de séries XB.
statistiques XM — Statistiques qui résultent de
l’analyse des résultats d’une série XM ou d’un
ensemble de séries XM.
substances interférentes — Composants d’un
échantillon sanguin qui compliquent ou
empêchent la mesure des paramètres désirés.
système d’exploitation (OS) — Exploite les
fichiers système, les bibliothèques, les pilotes,
etc. nécessaires à l’exécution de l’application.
taux cellulaire moyen en hémoglobine
(TCMH) — La masse de l’hémoglobine dans le
globule rouge moyen exprimée en picogrammes.
téléchargement — Données transmises d’un
instrument clinique à un SIL ou à un autre hôte.
temps d’indisponibilité — Toute période pendant
laquelle le système est indisponible pour les
tests.
Glossaire-7
Glossaire
tendance — Valeurs consécutives qui augmentent
ou diminuent graduellement.
test calculé — Un test qui est calculé sur la base
des résultats d’un ou plusieurs autres tests.
test de base — Un test qui est déterminé pour une
méthode, mesuré directement par un instrument
(par exemple NGB pour une analyse NFS) ou un
test dérivé de l’histogramme NGR ou PLT.
test de contamination inter-échantillons — La
quantité, exprimée en pourcentage, de
l’échantillon restant dans le système et reprise
par l’échantillon suivant qui est analysé. La
contamination inter-échantillons basse à élevée
est la quantité d’échantillon à basse
concentration cellulaire transmise aux
échantillons à haute concentration cellulaire,
comme c’est le cas du diluant vers le sang. La
contamination inter-échantillons élevée à basse
est la quantité d’échantillon à haute
concentration cellulaire transmise aux
échantillons à basse concentration cellulaire
comme c’est le cas du sang vers le diluant.
test discret — Fait référence à un test de base ou
un test calculé unique (par exemple NGB qui est
un test de base ou HCT qui est un test calculé).
test — Paramètre pour lequel un instrument peut
déterminer une valeur par mesure directe ou par
calcul.
tests disponibles — Tous les tests qui peuvent
être effectués par un instrument.
validé — Les résultats de test ont été passés en
revue et confirmés automatiquement ou
manuellement conformément aux protocoles du
laboratoire.
volume d’échantillon — Le volume d’un
spécimen extrait d’un récipient à spécimen.
C’est aussi le volume d’un spécimen conditionné
pour une fonction de mesure spécifique. Lorsque
le volume extrait d’un récipient à spécimen
dépasse les exigences de conditionnement et
qu’une portion est jetée, ou lorsque des portions
de l’échantillon sont attribuées à plusieurs
processus de conditionnement, l’échantillon
peut être appelé un volume intermédiaire
d’échantillon.
volume moyen cellulaire (VMC) — Volume
moyen des globules rouges exprimé en fL.
volume moyen de plaquettes sanguines
(VMP) — Le volume moyen des plaquettes
exprimé en fL.
XB — Moyenne mobile de Bull. Mécanisme de
contrôle de qualité utilisé par les instruments
d’hématologie qui contrôle la stabilité de celui-ci
à l’aide des indexes de globules rouges VMC,
TCMH et CCMH.
XM — Moyenne mobile. Une méthode de contrôle
de qualité qui utilise la Moyenne mobile à
pondération exponentielle (EWMA) pour
contrôler la stabilité de l’instrument à l’aide des
paramètres NFS, Diff et Rétic.
tests par défaut — Les tests qui peuvent être
attribués à une demande de test pour un
échantillon qui ne peut pas être identifié
positivement ou pour lequel une demande de
test ne peut pas être trouvée.
tube fermé — L’échantillonnage d’un échantillon
en perforant le bouchon du récipient.
tube ouvert — L’échantillonnage d’un spécimen
(sang) en retirant le bouchon du flacon.
tube ouvert — Voir tube ouvert.
utilisateur — Voir utilisateur.
valeurs de dosage — Les valeurs établies pour un
contrôle ou un calibrateur à travers la répétition
du test de ce matériau.
Glossaire-8
Réf. B95008AA
Références
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Références-3
Références
Références-4
Réf. B95008AA
Index
A
B
à propos de ce manuel, xxv
accès sécurisé
configuration, 9-1
niveaux, A-1
accord de licence pour le client utilisateur
final, Garantie-1
accord de licence, client utilisateur
final, Garantie-1
afficher
écran, 1-16
graphique de moyenne de la série XM
étendu, 4-20
graphique des moyennes de la série XM, 4-19
graphiques des moyennes de la série
XB, 4-15
afficher les résultats de patient, 6-9
alertes
attention, v
avertissement, v
alertes attention, v
alimentation électrique
exigences, 1-6
altitude, 1-8
analyse, 5-5, 5-8
exécuter une analyse des échantillons, 5-3
révision XB, 4-13
XB, 4-2
XM, 4-2
analyse de témoin, afficher les détails, 4-9
analyse des échantillons, exécuter, 5-3
anticoagulants, 1-17
arrêt, 8-2
arrêt d’urgence, 8-2
arrêt d’urgence et mise hors tension/coupure
de l’alimentation, 8-2
arrêt, effectuer, 8-1
arrondissement et calcul des résultats, 2-4
aspiration, 1-18
automatique, configurer la déconnexion, 9-2
avertissement
alertes, v
élimination des déchets, x
et indicateurs d’erreur, 1-15
avis RoHS, 1-xi
bacs
nettoyer, 10-13, 12-2
rincer, 10-16
vidanger, 10-15, 12-9
bruit acoustique, 1-7
bruit, acoustique, 1-7
C
calibrateur de série DxH500, calibrer à
l’aide, 11-2
calibrateurs et contrôles, 1-10
calibration, 11-1
quand vérifier, 11-1
calibrer
à l’aide du calibrateur de série DxH500, 11-2
configuration, 11-2
quand, 11-2
capteurs, vérifier, 10-15
clavier, 1-16
code-barres
étiquettes, 1-11
scanner, 1-9
scanner, utilisation, 3-2
spécifications des étiquettes, B-1
code-barres patients, lire, 5-3
codes, 6-2
comment utiliser les manuels, xxv
comparaison des méthodes
différentiel sang total, 1-19
NFS de sang prédilué par rapport au sang
total, et différentiel, 1-19
sang total, 1-18
comptage résiduel, exécuter, 3-5
configuration
contrôle de qualité étendu, 9-21
Imprimante admin, 9-10
réactifs, 9-12
système, 9-1
connexion
, 3-1
consignes de sécurité, vi
consignessécurité, vi
consommables, 1-10
Index-1
Index
consommation électrique, 1-7
contrôle de qualité
principes, 4-1
vue d’ensemble, 4-1
contrôle de qualité étendu, 4-2
configuration, 9-21
contrôle hors de la plage attendue, 4-4
contrôles, 4-3
analyser commerciaux, 4-3
commerciaux, 4-2
configurer et modifier, 9-15
et calibrateurs, 1-10
contrôles commerciaux, 4-2
analyser, 4-3
contrôles journaliers, 3-3, 4-2
configuration, 9-3
exécution, 3-3
exporter, 3-4
imprimer, 3-4
vue, 3-4
conventions, xxvii
correction de coïncidence, 2-3
Coulter, principe, 2-2
couper l’alimentation, 8-2
Créer une liste de travaux, 5-3
cycle d’eau de Javel, 10-13, 12-3
cycle, eau de Javel, 10-13
cycle, rinçage, 10-16
cycles d’auto-nettoyage, configuration de la
fréquence, 9-3
cycles, vérifier, 9-15
D
dangers
en fonctionnement, ix
dangers en fonctionnement, ix
date et heure, configurer, 9-3
de fonctionnement, température ambiante, 1-7
débit, 1-25
déconnexion
, 3-1
déconnexion automatique, configurer, 9-2
demande de test
éditer, 7-3
nouvelle, configurer, 7-1
supprimer, 7-4
démarrage, 3-1
dépannage
Assurance qualité, 10-6
Index-2
général, 10-1
individuel, 10-4
dépannage de l’assurance qualité, 10-6
dépannage général, 10-1
détails d’une analyse de témoin, afficher, 4-9
détails de la série XB, révision, 4-14
détails de la série XM, réviser, 4-18
détermination de la taille et numération, 2-3
développement d’un scattergramme
différentiel, 2-5
différentiel de sang total, comparaison des
méthodes, 1-19
différentiel, NGB, 2-5
diluant, distribuer, 10-18
dimensions, instrument, 1-6
distribuer du diluant, 10-18
E
échantillon de sang total, analyse, 5-11
échantillons, 5-5, 5-8
analyse sang prédilué, 5-11
identifier des patients, 5-2
réexécution patient, 6-9
échantillons de sang total
en mode Tube fermé, analyse, 5-5
en mode Tube ouvert, analyse, 5-8
échantillons patient
identifier, 5-2
réexécution, 6-9
éditer les résultats de patient, 6-10
éditer une demande de test, 7-3
électrique, consommation, 1-7
élimination
Configuration déchets, 9-16
instruments électriques, ix
élimination des déchets
avertissement, x
configuration, 9-16
en mode Tube fermé, analyse
échantillons de sang total, 5-5
enregistrements de fichier témoin,
supprimer, 4-12
enregistrements, supprimer fichier
témoin, 4-12
entretien, 10-15
espace de dégagement, instrument, 1-6
étendu, afficher un graphique de LeveyJennings, 4-8
étendu, afficher un graphique de paramètre, 4-8
Index
étiquette de code-barres sur un tube,
apposer, 5-1
étiquette sur un tube, apposer un codebarres, 5-1
étiquettes
code-barres, 1-11
danger, ix
étiquettes de danger, ix
étude sur les plages de référence, 1-25
exécution
contrôles journaliers, 3-3
échantillons de sang total en mode Tube
fermé, 5-5
échantillons de sang total en mode Tube
ouvert, 5-8
répétabilité, 11-6
test de contamination interéchantillons, 11-8
exigences, alimentation, 1-6
expédition, préparation, 10-13
exporter
contrôles journaliers, 3-4
fichiers de contrôle, 4-11
fichiers de données brutes, 6-13
journaux, 10-5
résultats, 6-12
résultats XB, 4-16
résultats XM, 4-21
F
faire correspondre les ID spécimen, 7-4
fichier témoin, afficher les graphiques, 4-7
fichier témoin, supprimer des
enregistrements, 4-12
fichiers de contrôle
afficher, 4-5
exporter, 4-11
imprimer, 4-11
transmission, 4-10
fichiers de données brutes, exporter, 6-13
fichiers de données, exporter brut, 6-13
filtre du bac, nettoyage NGB, 12-5
filtre, nettoyage bac NGB, 12-5
G
graphique de Levey-Jennings étendu,
afficher, 4-8
graphique de moyenne de la série XM, vue
étendue, 4-20
graphique de paramètre étendu, afficher, 4-8
graphiques, xxvii
graphiques de fichier témoin, afficher, 4-7
graphiques des moyennes de la série XM,
afficher, 4-19
graphiques des moyennes de la séries XB,
affichage, 4-15
H
hémoglobinométrie, 2-4
heure et date, configurer, 9-3
histogrammes, 2-4
historique
méthode, 2-1
Principe Coulter, 2-1
hors de la plage attendue, contrôle, 4-4
humidité, 1-8
I
icônes
globales, 1-14
menu fonctions, 1-13
menu principal, 1-12
navigation, 1-14
icônes du menu fonctions, 1-13
icônes du menu principal, 1-12
icônes globales et de navigation, 1-14
ID échantillon, 5-2
ID spécimen, faire correspondre, 7-4
immobiliser la seringue, 10-18
imprécision, 1-22
imprimante
Admin, configuration, 9-10
en option, 1-8
options, configuration, 9-4
Imprimante admin, configuration, 9-10
imprimer
contrôles journaliers, 3-4
fichiers de contrôle, 4-11
rapports de la série XB, 4-16
rapports de la série XM, 4-20
résultats de patient, 6-12
imprimer un rapport de configuration, 9-22
indicateurs, 6-2
avertissement, 1-15
erreur, 1-15
Index-3
Index
indicateurs d’erreur et d’avertissement, 1-15
informations CEM, vii
informations d’en-tête, configuration, 9-18
informations IQAP, configurer, 9-22
informations sur la compatibilité
électromagnétique, vii
instrument
dégagement, 1-6
dimensions, 1-6
nettoyer, 12-2
poids, 1-6
vues, 1-2
instruments électriques, élimination, ix
intervalles de référence, configurer, 9-5
IQAP, 4-3
IQAP, télécharger vers, 4-22
joint torique de la tête de rinçage,
remplacer, 13-2
journaliers, vérifications, 3-3
journaux
afficher, 10-4
exporter, 10-5
manuels, comment utiliser, xxv
Marquage CE, xi
matériel, 1-5
messages, 6-5
affichés, 6-3
configuration définitive, 9-7
définitifs, 6-7
événement, 10-7
messages d’événement, 10-7
messages définitifs, 6-7
configuration, 9-7
méthode
historique, 2-1
mise à jour logiciel, 9-10
mise à l’échelle, 2-4
mise hors tension/coupure de l’alimentation et
arrêt d’urgence, 8-2
mise sous tension, configuration
automatique, 9-3
mises à jours, manuels, iii
mode Tube ouvert, analyse
échantillons de sang total, 5-8
moyenne et rejet, 2-4
moyennes de la série XB, réviser, 4-13
moyennes de la série XM, réviser, 4-18
L
N
limites, 1-29
limites de seuil d’histogramme PLT, 6-3
limites des valeurs résiduelles, 1-24
linéarité, 1-23
lire les codes-barres patients, 5-3
liste de travaux
créer une, 5-3
vue d’ensemble, 7-1
liste de vérification
formation, C-1
vérification des performances, D-1
liste de vérification de formation, C-1
liste de vérification des performances, D-1
logiciel, 1-12
logiciel, mise à jour, 9-10
lubrifier, pistons de la seringue, 10-16
navigation et globales, 1-14
nettoyage
fréquence, 12-1
procédures, 12-1
nettoyer
bacs, 10-13, 12-2
instrument, 12-2
scanner de codes-barres, 12-10
nettoyer par contre-pression les orifices, 10-13,
12-10
NFS
analyse, 2-2
paramètres, 1-1
NGB
différentiel, 2-5
filtre du bac, nettoyage, 12-5
niveaux d’accès, sécurité, A-1
nouvelle demande de test, configurer, 7-1
numération et détermination de la taille, 2-3
J
M
manuel, à propos, xxv
manuels
mises à jour, iii
Index-4
Index
O
R
options d’impression de rapport,
configurer, 9-19
options d’impression, configurer rapport, 9-19
orifices, nettoyer par contre-pression, 10-13,
12-10
rapport de configuration, imprimer, 9-22
rapport, imprimer configuration, 9-22
rapports, A-4
configuration, 9-18
rapports de la série XB, imprimer, 4-16
rapports de la série XM, imprimer, 4-20
réactifs
configuration, 9-12
écran, 9-12
réactifs, recommandés, 1-10
rechercher des résultats de patient, 6-8
réexécuter les échantillons patient, 6-9
référence, configurer les intervalles, 9-5
réinitialisation
diluteur, 10-13
matériel, 10-12
réinitialisation du diluteur, 10-13
réinitialisation du matériel, 10-12
rejet et moyenne, 2-4
remplacement
fréquence, 13-1
procédures, 13-1
remplacer
sonde d’aspiration, 13-4
remplacer le joint torique de la tête de
rinçage, 13-2
répétabilité, 1-20
exécution, 11-6
reproductibilité, 1-22
restaurer, 9-8
résultats
afficher les patients, 6-9
calcul et arrondissement, 2-4
édition patient, 6-10
exporter, 4-16, 6-12
imprimer patient, 6-12
patient, 6-1
recherche de patient, 6-8
réviser patient, 6-7
supprimer patient, 6-11
transmission patient, 6-11
résultats de patient, 6-1
afficher, 6-9
éditer, 6-10
imprimer, 6-12
recherche de, 6-8
réviser, 6-7
supprimer, 6-11
P
paramètre
calcul, 2-6
dérivation, 2-6
mesure, 2-6
paramètre étendu, afficher un graphique, 4-8
paramètres, 1-1
différentiel, 1-1
NFS, 1-1
paramètres de différentiel, 1-1
paramètres, configurer les unités, 9-19
patients, lire les codes-barres, 5-3
performances, 1-17
pièces mobiles, viii
pièces, mobiles, viii
pistons de la seringue, lubrifier, 10-16
plages
fonctionnement, 1-23
mesure, 1-23
plages de fonctionnement et de mesure, 1-23
plages de mesure et de fonctionnement, 1-23
plages de référence, étude, 1-25
poids, instrument, 1-6
positionnement du lubrifiant, 10-16
précautions, 10-1
électroniques, vii
précautions électroniques, vii
préparation pour expédition, 10-13
Principe Coulter, 2-2
historique, 2-1
procédures de diagnostic, 10-12
programme d’assurance qualité
interlaboratoire, 4-3
Proposition65 de Californie, xii
Q
QC
configurer étendu, 9-21
étendu, 4-2
Index-5
Index
transmission, 6-11
résultats XM, exporter, 4-21
réviser
analyse XM, 4-17
détails de la série XB, 4-14
détails de la série XM, 4-18
moyennes de la série XB, 4-13
moyennes de la série XM, 4-18
révision de l’analyse XB, 4-13
rincer
bacs, 10-16
cycle, 10-16
risque de contamination biologiques, viii
risque de contamination, biologique, viii
risques, 10-1
biologiques, viii
risques biologiques, viii
S
sauvegarder, 9-8
scanner
code-barres, 1-9
nettoyer code-barres, 12-10
remplacer codes-barres, 13-4
utilisation des codes-barres, 3-2
utilisation du scanner de codes-barres
portatif, 5-3
scanner de codes-barres
nettoyer, 12-10
remplacer, 13-4
utiliser un scanner portatif, 5-3
scattergramme différentiel
développement, 2-5
zones d’indicateur, 6-4
SDS, 1-11
sécurité
fiches de données, 1-11
sensibilité et spécificité cliniques, 1-29
série XB, supprimer, 4-17
série XM, supprimer, 4-21
seringue, immobiliser, 10-18
SIL, 1-8
configuration, 9-7
solution d’eau de javel, 12-3
préparer, 12-5
sonde, 13-4
sonde d’aspiration, remplacer, 13-4
Index-6
spécifications, étiquettes codes-barres, B-1
spécimen
prélèvement, 5-1
préparation, 2-3
tubes, 1-11
spécimen suivant, configurer, 9-4
spécimens, collecte, 5-1
stabilité des échantillons et stockage
sang total, 1-27
sang total prédilué, 1-28
stockage
données, 1-11
température, 1-7
stockage des données, 1-11
stockage externe, USB, 1-8
support
retrait et remplacement tube, 13-9
support de tubes et compartiment,
nettoyage, 12-9
support de tubes, retrait et remplacement, 13-9
Support, nettoyage
tube et compartiment, 12-9
supprimer
demande de test, 7-4
enregistrements de fichier de contrôle, 4-12
résultats de patient, 6-11
série XB, 4-17
série XM, 4-21
système
configuration, 9-1
T
télécharger vers IQAP, 4-22
température
ambiante de fonctionnement, 1-7
stockage, 1-7
température ambiante de fonctionnement, 1-7
test de contamination inter-échantillons, 1-24
exécution, 11-8
tête de rinçage, remplacer le joint torique, 13-2
transmission
fichiers de contrôle, 4-10
résultats de patient, 6-11
transport, 1-8
tube, étiquette de code-barres, apposer sur, 5-1
tubes, spécimen, 1-11
Index
U
unités des paramètres, configurer, 9-19
urgence, arrêt, 8-2
USB, stockage externe, 1-8
utilisation du scanner de codes-barres
portatif, 5-3
utilisation prévue, 1-1
V
vérifications des vannes, 10-19
vérifier les capteurs, 10-15
vérifier les cycles, 9-15
version, vérifier, 10-4
vidanger les bacs, 10-15, 12-9
vue écran, 1-16
X
XB, 4-16
analyse, 4-2
configuration, 9-20
XM
analyse, 4-2
analyse, réviser, 4-17
configuration, 9-20
Index-7
Index
Index-8
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Réf. B95008AA
Garantie-1
Accord de licence pour le client utilisateur final Beckman Coulter, Inc.
Garantie-2
Réf. B95008AA
Documents associés
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Mode d’emploi
Réf. B95008
•
Présentation du système
•
Principes de fonctionnement
•
Contrôles journaliers
•
Contrôle de qualité
•
Analyse des échantillons
•
Consultation résultats
•
Liste de travaux
•
Arrêt
•
Configuration
•
Dépannage
•
Assurance qualité
•
Procédures de nettoyage
•
Procédures de remplacement/réglage
•
Annexes
•
Abréviations et acronymes
•
Glossaire
•
Références
•
Index
•
Garantie
Host Transmission
(Transmission à l’informatique centrale)
Réf. B38989
Liste des tubes d’hématologie
(DxH 520 uniquement)
Réf. C12794
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