Thermo Fisher Scientific VetMAX Toxinogenic P. multocida Kit Mode d'emploi
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NOTICE D’UTILISATION VetMAX™ Toxinogenic P. multocida Kit PCR temps réel TaqMan® pour la détection de Pasteurella multocida toxinogène Référence Catalogue PMTP50 Partie Nº 100020410 Pub. Nº MAN0008845 Rév. B.0 Technique Espèce(s) Acides nucléiques isolés à partir des matrices Test PCR temps réel (ADN) – Duplex – IPC endogène Porcins Ecouvillons nasaux et amygdaliens Colonies Poumons Individuel AVERTISSEMENT ! Lire les fiches de données de sécurité (FDS) et suivre les consignes de manipulation. Porter des lunettes de sécurité, des gants et des vêtements appropriés. Les fiches de données de sécurité (FDS) sont disponibles à l’adresse thermofisher.com/support. AVERTISSEMENT ! RISQUES BIOLOGIQUES POTENTIELS. Lire les informations de sécurité relatives aux risques biologiques du produit disponibles sur thermofisher.com. Porter des lunettes de sécurité, des gants et des vêtements appropriés. Informations sur le produit Description du produit Applied Biosystems™ VetMAX™ Toxinogenic P. multocida Kit est un outil de diagnostic moléculaire permettant la détection des souches toxinogènes de Pasteurella multocida par la méthode de PCR en temps réel. Chaque échantillon d’ADN obtenu après extraction est analysé en monocupule : la même cupule est utilisée pour la détection spécifique de l’ADN bactérien des souches toxinogènes de Pasteurella multocida et pour la détection d’un IPC (Internal Positive Control). La positivité de l’IPC traduit à la fois l’efficacité de l’extraction et l’absence d’inhibiteur dans les échantillons. Il est utilisable sur ADN bactériens extraits à partir d’écouvillons nasaux et amygdaliens, de colonies bactériennes et de poumons. Les protocoles complets d’extractions des ADN bactériens à partir de ces matrices sont disponibles sur demande au Support Technique. Réactifs du kit et conservation Le VetMAX™ Toxinogenic P. multocida Kit se présente sous la forme d’un coffret contenant les différents réactifs pour la détection en duplex de Pasteurella multocida toxinogène et d’un contrôle interne IPC. À réception, le kit doit être conservé dans sa totalité entre −30°C et −10°C. Après première utilisation d’un composant, le conserver selon les recommandations suivantes : Conservation Volume (50 réactions) A réception Après première utilisation 3 - Mix PMT (Tube vert) Mix pour PCR TaqMan®. Contient : • Le système de détection pour la cible Pasteurella multocida toxinogène, comprenant une sonde TaqMan® marquée FAM™ – TAMRA™. • Le système de détection pour l’IPC, comprenant une sonde TaqMan® marquée VIC™ – TAMRA™. • Le tampon et l’enzyme de PCR temps réel. 2 × 500 µL −30°C à −10°C 2°C à 8°C 4a – EPC PMT (Tube marron) External Positive Control : Contrôle positif en Pasteurella multocida. Il s’agit d’acides nucléiques déjà extraits à amplifier lors de la PCR temps réel. 90 µL −30°C à −10°C −30°C à −10°C Article Description Témoins d’extraction et d’amplification Le VetMAX™ Toxinogenic P. multocida Kit contient 1 témoin permettant la validation de l’amplification des ADN bactériens : 4a - EPC PMT : contrôle positif en Pasteurella multocida toxinogène Contrôle positif déjà extrait à amplifier lors de la PCR temps réel. Un résultat positif compris dans l’intervalle accepté de Ct permet de valider l’amplification de la cible Pasteurella multocida toxinogène par PCR temps réel. Réservé à l’usage vétérinaire. Usage in vitro exclusivement. La validation de l’extraction des acides nucléiques pour chaque échantillon s’effectue grâce à la détection d’un IPC endogène (Internal Positive Control), présent dans chaque échantillon. Un résultat IPC positif avec une valeur comprise dans l’intervalle accepté de Ct dans un échantillon permet de valider l’extraction de cet échantillon qu’il soit positif ou négatif pour le pathogène recherché : élimination des faux négatifs et vérification de l’effet des inhibiteurs. Il est recommandé de réaliser deux contrôles négatifs pour valider le bon déroulement de l’analyse : NCS : contrôle négatif d’extraction C’est un témoin composé des réactifs utilisés lors de l’extraction, sans ajout d’échantillon (le volume d’échantillon peut être remplacé par le tampon utilisé lors de la préparation des échantillons ou par de l’eau DNase/RNase-free), qui subit le même traitement que les échantillons : extraction des acides nucléiques puis PCR temps réel. Un résultat négatif en Pasteurella multocida toxinogène et en IPC endogène permet de valider l’absence de contamination au cours de l’extraction et de la PCR temps réel. NC : contrôle négatif d’amplification Il s’agit du mix d’amplification déposé dans la plaque au moment de la préparation de la PCR temps réel, complété de 5 µL d’eau DNase/RNase-free pour ajuster la réaction à 25 µL. Un résultat négatif pour Pasteurella multocida toxinogène et IPC permet de valider l’absence de contamination au cours de la préparation des réactions pour la PCR temps réel. Matériel et réactifs requis pour la PCR temps réel non fournis dans le kit Sauf indication contraire, tous les produits sont disponibles sur thermofisher.com. • Micropipettes de précision (gamme de 1 µL à 1000 µL) avec pointes DNase/RNase-free à filtre • Eau DNase/RNase-free • Tampon TE 1X • Tampon PBS 1X • Un thermocycleur de PCR temps réel capable de détecter les fluorophores suivants : – FAM™ (maximum d’émission : λ515 nm) – VIC™ (maximum d’émission : λ554 nm) • Consommables de qualité optique compatibles avec le thermocycleur utilisé : – – Plaques PCR 96 puits, barrettes PCR (8 ou 12 puits), microtubes ou capillaires Films ou bouchons adaptés à la fermeture Procédure d’analyse Le volume réactionnel de la PCR temps réel est de 25 µL : • 3 - Mix PMT : 20 µL par analyse • ADN extrait : 5 µL par analyse Extraction des ADN bactériens Il est nécessaire d’isoler les ADN à partir des échantillons pour l’analyse par PCR temps réel. NOTE : Pour connaître des méthodes d’extractions compatibles et validées avec le VetMAX™ Toxinogenic P. multocida Kit, merci de contacter le Support Technique. Préparation de la PCR temps réel 1. Créer un plan d’analyse pour la distribution des mix et échantillons. Éloigner si possible le contrôle positif (EPC) des autres échantillons. 2. Décongeler le tube 3 - Mix PMT entre 2°C et 8°C, sur glace ou sur un portoir réfrigérant. 3. Homogénéiser le tube 3 - Mix PMT par agitation douce, puis centrifuger brièvement. 4. Distribuer 20 µL de 3 - Mix PMT par puits de la plaque PCR, barrette PCR ou capillaire utilisé. 5. Ajouter les ADN des échantillons et contrôles au mix réactionnel, selon le plan d’analyse prédéfini : Type d’analyse Echantillon pour analyse Composant Volume d’échantillon ADN extraits de l’échantillon 5 µL Contrôle positif d’amplification 4a - EPC PMT 5 µL Contrôle négatif d'extraction (NCS) NCS extrait 5 µL Contrôle négatif d’amplification (NC) Eau DNase/RNase-free 5 µL 6. Fermer la plaque PCR, les barrettes PCR ou les capillaires avec un film adhésif ou des bouchons adaptés. 2 VetMAX™ Toxinogenic P. multocida Kit Notice d’Utilisation Amplification par PCR en temps réel 1. Créer les détecteurs suivants sur le thermocycleur : Reporter Quencher PMT FAM ™ TAMRA™(1) IPC PMT VIC™ TAMRA™(1) Référence passive : ROX™(1) (1) Les fluorophores TAMRA™ et ROX™ sont à renseigner obligatoirement pour l’analyse par PCR temps réel si le thermocycleur est capable de les détecter. Pour les autres thermocycleurs, l’absence de détection de ces fluorophores ne remet pas en cause l’analyse par PCR temps réel. 2. Attribuer pour chaque échantillon le détecteur PMT et le détecteur IPC PMT dans le puits utilisé pour l’analyse. 3. Créer le programme de PCR temps réel suivant pour l’analyse : Répétitions de l’étape Température Durée Etape 1 ×1 50°C 2 minutes Etape 2 ×1 95°C 10 minutes Etape 3 ×45 95°C 15 secondes 60°C(1) 1 minute (1) Collecte des données de fluorescence durant la phase 60°C – 1 minute. 4. Placer la plaque PCR, les barrettes PCR ou les capillaires dans le thermocycleur et démarrer la PCR temps réel. Analyse des résultats Analyse des données brutes Se référer aux recommandations du fournisseur du thermocycleur pour l’analyse des données brutes. 1. Placer les lignes seuils (threshold) de manière indépendante pour chaque cible de la PCR temps réel. 2. Interpréter les résultats en fonction des valeurs de Ct obtenues pour les échantillons pour chaque détecteur selon les recommandations ci-après. Validation du test La validation du test passe par l’acceptation des critères suivants : Détecteur PMT Détecteur IPC PMT Validation Ct = Ct QC PMT de 4a- EPC PMT ± 3Ct(1) Ct < 45 ou Ct > 45(2) PCR validée NCS Ct > 45 Ct > 45 Extraction validée NC Ct > 45 Ct > 45 Réactifs PCR validés EPC PMT (1) (2) Se référer aux valeurs indiquées dans le paragraphe 2.1 « EPC » du Certificat d’Analyse du lot utilisé pour l’essai. Ne pas prendre en compte la valeur d’IPC dans l’EPC pour la validation du test. Interprétation des résultats Pour chaque échantillon analysé, interpréter les résultats comme décrit ci-dessous : (1) Détecteur PMT Détecteur IPC PMT Interprétation Ct < 45 Ct < 45 ou Ct > 45 Pasteurella multocida détecté Ct > 45 Ct < 45 Pasteurella multocida non détecté Ct > 45 Ct > 45 Non validé(1) L’échantillon sera rendu comme non validé en raison de la négativité de l’IPC. Conduite à tenir pour les échantillons non validés 1. Diluer l’ADN de l’échantillon non validé au 1:10 en tampon TE 1X. 2. Faire une nouvelle analyse PCR sur 5 µL de cette dilution. 3. Si l’ADN dilué est positif en Pasteurella multocida toxinogène ou négatif en Pasteurella multocida toxinogène avec un résultat IPC conforme, le résultat obtenu est alors validé. 4. Si l’ADN dilué est négatif en Pasteurella multocida toxinogène avec un résultat IPC non conforme, le résultat obtenu est toujours non validé. Dans ce cas, renouveler l’extraction de l’échantillon en le pré-diluant au 1:10 dans du tampon PBS 1X avant extraction. 5. Si le résultat est toujours non validé, répéter l’analyse sur un nouveau prélèvement. VetMAX™ Toxinogenic P. multocida Kit Notice d’Utilisation 3 Documentation et support Service clientèle et assistance technique Garantie produit limitée Support technique : rendez-vous sur thermofisher.com/askaquestion Visiter thermofisher.com/support pour avoir accès aux dernières nouveautés relatives aux services et à l'assistance technique, notamment : • Numéros de téléphone partout dans le monde • Commande et Support web • Guides de l’utilisateur, manuels et protocoles • Certificats d’analyse • Fiches de Données de Sécurité (FDS, également appelées FS (Fiches Signalétiques)) Life Technologies Corporation et ses filiales garantissent leurs produits selon les termes et conditions générales de ventes disponibles sur le site www.thermofisher.com/us/en/home/ global/terms-and-conditions. Si vous avez des questions, vous pouvez prendre contact avec Life Technologies à l'adresse web suivante : thermofisher.com/support. Remarque : Pour les FDS relatives aux réactifs et aux produits chimiques d'autres fabricants, contacter chaque fabricant. Laboratoire Service International (LSI) | 6 Allée des Écureuils | Parc Tertiaire du Bois-Dieu | 69380 Lissieu, France Les informations contenues dans ce guide sont susceptibles d’être modifiées sans préavis. CLAUSE DE NON-RESPONSABILITÉ : DANS LA MESURE PERMISE PAR LA LOI, LIFE TECHNOLOGIES ET/OU SA OU SES FILIALE(S) NE SAURAIENT ÊTRE TENUES RESPONSABLES DE DOMMAGES SPÉCIAUX, ACCESSOIRES, INDIRECTS, PUNITIFS, MULTIPLES OU CONSÉCUTIFS LIÉS AU PRÉSENT DOCUMENT OU A SON USAGE OU EN RÉSULTANT. Historique des révisions : Pub. Nº MAN0008845 (français) Révision Date B.0 6 juin 2017 A.0 04 décembre 2013 Description Mise à jour sur le modèle du document en cours, avec mises à jour associées à la garantie, aux marques et aux logos. Base de référence pour l’historique de révision Licence à Usage Limité Nº 460 : Diagnostic vétérinaire PCR. Avis aux acheteurs : destiné à des services de diagnostic vétérinaire, notamment l’établissement de rapports de diagnostic payants et pour les besoins de la recherche uniquement. Le diagnostic chez l’homme nécessite une licence séparée de Roche. ©2017 Thermo Fisher Scientific Inc. Tous droits réservés. Toutes les marques sont la propriété de Thermo Fisher Scientific et de ses filiales, sauf indication contraire. TaqMan est une marque déposée de Roche, utilisée sous autorisation et licence. thermofisher.com/support | thermofisher.com/askaquestion thermofisher.com 6 juin 2017 ">
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