Biocides oxydants
Kit de test
Mode d'emploi
56I012801 Version P1
BIOCIDES OXYDANTS
Test de chlore disponible
1
3
1
À l'aide de la seringue, verser un échantillon du
volume adapté (voir tableau) dans la fiole.
2
Ajouter une mesure de KP148 – CL1P (acide
sulfamique). Mélanger jusqu'à dissolution puis
ajouter une pastille KT26 – CL2A (pastille de
chlore HR) pour un échantillon de 10 ml.
En présence d'une substance halogène, l'échantillon
vire au jaune/marron foncé.
2
3
4
Ajouter une mesure rase de KP148 – CL2B
(indicateur d'iode) et agiter pour mélanger.
L'échantillon vire au bleu/noir.
Ajouter le réactif KS425 – CL3 ou KS413 – C4 ou
KS150 – CL5 en comptant le nombre de gouttes
nécessaires pour que la coloration bleue/noire
disparaisse.
Calcul :
Chlore disponible (ppm) =
F = Facteur selon tableau
56I012801 Version P1
gouttes de solution titrante x facteur
BIOCIDES OXYDANTS
Tableau de chlore disponible
Plage attendue
Plage de valeurs
attendue
(ppm)
1 – 30
20 – 70
50 – 150
100 – 300
200 – 600
400 – 1200
500 – 1500
1000 – 3000
2000 – 6000
4000 – 12000
10000 – 30000
20000 – 60000
Taille de
l'échantillon
(ml)
80
40
40
20
10
5
40
20
10
5
2
1
Solution
Facteur (F)
KS425
KS425
KS413
KS413
KS413
KS413
KS150
KS150
KS150
KS150
KS150
KS150
1
2
5
10
20
40
50
100
200
400
1000
2000
Remarques :
1.
Les échantillons d'un volume inférieur à 10 ml doivent être complétés
jusqu'à environ 10 ml avec de l'eau propre.
2.
10 000 ppm = 1,0 %.
56I012801 Version P1
BIOCIDES OXYDANTS
Test d'iode disponible
3
1
Prélever un échantillon de 100 ml de solution utilisée.
2
Ajouter une mesure de KP148 – CL1P (acide
sulfamique). Mélanger jusqu'à dissolution puis
ajouter une pastille KT26 – CL2A (pastille de
chlore HR) pour un échantillon de 10 ml. En
présence d'une substance halogène, l'échantillon vire
au jaune/marron foncé.3
3
4
Ajouter une mesure rase de KP148 – CL2B
(indicateur d'iode) et agiter pour mélanger.
L'échantillon vire au bleu/noir.
Ajouter du réactif KS413 – C4 en comptant le nombre
de gouttes nécessaires pour que la coloration
bleue/noire disparaisse.
Calcul :
Iode disponible (ppm) = nombre de gouttes de réactif KS413 – C4
utilisées x 2,3
56I012801 Version P1
BIOCIDES OXYDANTS
Peroxyde d'hydrogène (partie 1)
3
1
À l'aide de la seringue, verser un échantillon du
volume adapté (voir tableau) dans la fiole.
2
Ajouter 25 gouttes de réactif KS415 – HP1 (tampon
de peroxyde d'hydrogène) puis remuer pour
mélanger.
3
Ajouter la solution KS199 – HP2 (solution titrante de
peroxyde) au goutte à goutte. Bien mélanger après
chaque goutte versée jusqu'à ce que l'échantillon
adopte une teinte rose pâle. Ne pas dépasser la
quantité de solution KS199 nécessaire. Mélanger
pendant encore 30 secondes pour s'assurer que la
coloration rose ne se dissipe pas. Compter le nombre
de gouttes nécessaires.
Calcul :
Peroxyde d'hydrogène (ppm) = nombre de gouttes de solution KS199
utilisées X facteur applicable (F)
F = Facteur selon tableau
Plage attendue
Plage de valeurs
attendue (ppm)
15 - 125
25 - 250
50 - 500
56I012801 Version P1
Volume de
l'échantillon (mls)
40
20
10
Facteur (F)
4,5
9
18
BIOCIDES OXYDANTS
Acide peracétique (partie 2)
3
4
AUSSITÔT après l'étape 3, ajouter 2 pastilles de
KT26 – CL2A (pastilles de chlores HR) puis
mélanger jusqu'à dissolution. Un virage du jaune
pâle au marron foncé/noir indique la présence d'acide
peracétique.
5
Ajouter une mesure comble de poudre KP148 –
CL2B (indicateur d'iode) et mélanger.
L'échantillon vire au bleu.
6
Ajouter la solution KS425 – CL3. Bien mélanger
après chaque goutte versée jusqu'à ce que la
coloration disparaisse définitivement. Noter le nombre
de gouttes de solution KS425 – CL3 utilisées.
Calcul :
Acide peracétique (ppm) = nombre de gouttes de KS425 – CL3 utilisées x
facteur (F)
Plage de valeurs attendue (ppm) Taille de l'échantillon Facteur (F)
F = Facteur selon tableau ci-dessous :
P
Plage de valeurs
attendue (ppm)
15 - 125
25 - 250
50 - 500
56I012801 Version P1
Volume de
l'échantillon (mls)
40
20
10
Facteur (F)
5
10
20
">
