Thermo Scientific ZM23/R30166301 Mode d'emploi

FR
Sérums d’agglutination
de Haemophilus
influenzae
1.
DOMAINE D’APPLICATION
Les sérums d’agglutination de Haemophilus influenzae sont
destinés à être utilisés lors des tests qualitatifs d’agglutination
sur lame et lors de la contre-immunoélectrophorèse (CIEP)
pour une identification sérologique du type de structure des
souches pathogènes d’H. influenzae (types a à f) à des fins
épidémiologiques et diagnostiques.
2.
RESUME ET EXPLICATION DU TEST
Les souches pathogènes possèdent des capsules et sont
classifiées en 6 types sérologiques selon la structure chimique
des antigènes capsulaires.1 Les souches possédant ces antigènes
sont spécifiquement agglutinées par l’antisérum homologue, et le
type d’une culture encapsulée peut donc être défini par des tests
d’agglutination sur lame. Une technique alternative de typage, la
contre-immunoélectrophorèse (CIEP), exploite le fait que, sous
des conditions appropriées, les anticorps migrent vers la cathode
sous l’influence d’un champ électrique alors que les antigènes
migrent vers l’anode. Des suspensions de bactéries provenant
d’une culture solide ou liquide et des antisérums sont placés dans
des puits creusés dans une couche de gélose, de façon à ce que,
lorsque la gélose est exposée à un champ électrique, les antigènes
et les anticorps migrent les uns vers les autres, et forment un
précipité visible en relativement peu de temps.2 Dans certaines
circonstances, par exemple en cas de méningite bactérienne, il
est important de parvenir à l’identification de l’agent infectieux
probable le plus rapidement possible, afin de commencer
un traitement antimicrobien adapté. L’antigène libre peut
souvent être identifié dans les prélèvements de liquide céphalorachidien par la technique sensible de CIEP.3,4 Cette technique
d’identification est particulièrement utile quand la concentration
bactérienne du liquide céphalo-rachidien est trop faible pour
permettre une isolation ou lorsque la viabilité des organismes a
été affectée par un traitement antibiotique préalable.
3.
PRINCIPE DE LA METHODE
Les tests sérologiques sont basés sur le fait que les anticorps
contenus dans le sérum, produits en réponse à l’exposition à
des antigènes bactériens, agglutinent les bactéries portant les
antigènes homologues.
4.
4.1.
REACTIFS
COMPOSITION DU COFFRET
Sérums d’agglutination de Haemophilus influenzae
Type a
(ZM20/R30166001)
1 flacon compte-gouttes
Type b
(ZM21/R30166101)
1 flacon compte-gouttes
Type c
(ZM22/R30166201)
1 flacon compte-gouttes
Type d
(ZM23/R30166301)
1 flacon compte-gouttes
Type e
(ZM24/R30166401)
1 flacon compte-gouttes
Type f
(ZM25/R30166501)
1 flacon compte-gouttes
4.2.
DESCRIPTION, PREPARATION ET
CONSERVATION RECOMMANDEES
5.1.3
2 ml
CONDITIONS
5.1.4
DE
Voir également le paragraphe Précautions et restrictions
d’emploi.
Les sérums doivent être conservés entre 2 et 8°C pour maintenir
leur activité au moins jusqu’à la date inscrite sur le flacon.
5.
Sérums d’agglutination de
Haemophilus influenzae
Les sérums d’agglutination H.
influenzae sont produits par des
lapins et sont conservés avec du
phénol à 0,5%. Chaque flacon, doté
d’un compte-gouttes et d’une tétine,
contient 2 ml de liquide et est fourni
prêt à l’emploi.
Lors de leur conservation, il arrive
que certains sérums se troublent
légèrement. Ceci n’indique pas
nécessairement leur détérioration
et ne provoque normalement pas
d’interférences avec les résultats ;
les sérums peuvent cependant être
clarifiés par centrifugation ou par
filtration à travers une membrane
(0,45 µm) avant l’emploi. Les sérums
fortement troubles sont contaminés
et doivent être jetés.
PRECAUTIONS ET RESTRICTIONS D’EMPLOI
Destiné exclusivement au diagnostic in vitro.
Réservé exclusivement à un usage professionnel.
Attention : Ce produit contient du caoutchouc naturel sec.
Pour de plus amples informations sur les composants potentiellement
dangereux, se référer à la fiche de sécurité fournie par le fabricant et
à l’étiquetage du produit.
5.1. informations de securite
5.1.1
5.1.2
Manipuler toutes les bactéries conformément aux
directives appropriées en vigueur.
L’équipement non jetable doit être stérilisé en utilisant
une procédure appropriée après l’emploi, bien que
la méthode la plus appropriée soit la stérilisation par
autoclave pendant au moins 15 minutes à 121°C. Le
5.1.5
5.1.6
5.2.
matériel à usage unique doit être stérilisé par autoclave
ou incinéré.
Les éclaboussures de matériaux potentiellement
infectieux doivent être éliminées immédiatement à
l’aide d’un papier absorbant et les surfaces contaminées
doivent être nettoyées avec un désinfectant antibactérien standard ou de l’alcool à 70%. Le matériel
utilisé pour le nettoyage des éclaboussures, y compris
les gants, doit être éliminé comme s’il s’agissait de
déchets biologiquement dangereux.
Ne pas effectuer les pipetages à la bouche. Pour
manipuler les échantillons et effectuer le test, porter
des gants à usage unique et une protection des yeux.
Une fois le test terminé, se laver soigneusement les
mains.
Ces réactifs contiennent du phénol. Bien que sa
concentration soit faible, le phénol est connu comme
étant toxique par ingestion et par contact avec la peau.
Ne pas avaler les réactifs. Si l’un d’entre eux entre en
contact avec la peau ou les yeux, laver la surface en
rinçant immédiatement et abondamment à l’eau.
6.Conformément aux bonnes pratiques de laboratoire,
il est fortement recommandé de traiter les échantillons
et réactifs comme s’ils étaient potentiellement
infectieux et de les manipuler avec toutes les
précautions nécessaires.
Precautions d’analyse
5.2.1
Ne pas utiliser les antisérums au-delà de la date
de péremption indiquée. Eviter la contamination
microbienne des antisérums, ceci pouvant provoquer
des résultats erronés et réduire la durée de vie du
produit.
5.2.2
Ne pas modifier la procédure du test ni le temps
d’incubation ou les températures. Ne pas diluer les
sérums d’agglutination.
5.2.3
Après emploi, replacer les sérums à la température de
conservation recommandée.
5.2.4
Ne pas utiliser d’anse bactériologique pour distribuer
l’antisérum. Utiliser le compte-gouttes fourni.
6.
PRELEVEMENT, TRANSPORT ET CONSERVATION DES
ECHANTILLONS
Le sérotypage ne donne des résultats fiables que si la culture
contient des capsules. Il est conseillé de sérotyper une souche
dès que possible après son isolation car la capacité à produire
des capsules disparaît avec le temps. Les souches encapsulées
sont reconnaissables par l’iridescence caractéristique visible
lorsqu’une forte lumière blanche oblique est projetée sur une
culture en roissance sur gélose de Lévinthal.1
Pour de plus amples informations sur le prélèvement et la
réparation des échantillons, se référer à un manuel standard. Il
est recommandé d’utiliser des cultures récentes, en croissance
sur une gélose de Lévinthal.
7.
PROCEDURE
MATERIEL FOURNI
Voir le paragraphe Composition du coffret.
MATERIEL NECESSAIRE MAIS NON FOURNI
1. Sérum physiologique à 0,85%.
2. Lames de verre.
3. Anse bactériologique et bec bunsen.
4. Source de lumière sur fond sombre.
5.Chronomètre.
6. Pipette Pasteur.
7. Tampon barbital-HCl, pH 8,6
Dissoudre 8,25 g de diéthylbarbiturate de sodium dans 1 litre
d’eau distillée et ajouter 38,2 ml d’acide chlorhydrique 0,2N
afin d’obtenir un pH de 8,6.
ATTENTION : Le barbital-HCl est nocif par ingestion. Se laver
soigneusement les mains après manipulation.
8. Agarose à 1%
Ajouter 1 g d’agarose à 100 ml de tampon barbital-HCl et
dissoudre en chauffant dans un bain-marie en ébullition
pendant 5 à 10 minutes. Mélanger doucement en évitant la
formation de bulles d’air et s’assurer que l’agarose se dissout
en totalité et se répartit de façon uniforme. Les flacons de
gel peuvent se conserver à température ambiante (18 à 30°C)
pendant 4 semaines maximum.
9. Lames recouvertes d’agarose
Faire fondre le contenu d’un flacon de gel d’agarose à 1%
dans un bain-marie en ébullition et distribuer sur des lames
en verre propres posées sur une surface plane. La couche de
gel doit avoir 1 à 1,5 mm d’épaisseur ; pour une lame de 26
x 76 mm, 3 ml d’agarose suffisent, alors qu’une lame de 81 x
81 mm nécessite 10 ml d’agarose. Les lames inutilisées, une
fois solidifiées, peuvent être conservées 24 heures entre 2 et
8°C en chambre humide.
10. Appareil d’électrophorèse approprié pour une électrophorèse
sur gélose. Un tel équipement est disponible auprès de
nombreux fournisseurs.
11.Peigne (tube à extrémité tranchante, 3 mm de diamètre) et
appareil d’aspiration.
8.
8.1.
PROCEDURE DU TEST
Test d’agglutination sur lame
Etape 1
Déposer deux gouttes séparées (40 µl chacune)
de sérum physiologique sur une lame de verre.
Emulsionner les parties de la culture à tester
avec une anse, dans chaque goutte de sérum
physiologique pour obtenir une suspension
homogène et assez dense.
Etape 2
ans l’une des suspensions utilisées, ajouter une
D
goutte (40 µl) de sérum physiologique comme
témoin et homogénéiser. Dans l’autre suspension,
ajouter une goutte (40 µl) d’antisérum non dilué
et homogénéiser.
Etape 3
Faire osciller la lame pendant une minute et
observer s’il se produit une agglutination, plus
facilement visible sur un fond sombre éclairé par
une lumière indirecte. Eliminer la lame utilisée
selon les règles de désinfection et d’élimination
appropriées.
8.2.
Contre-immunoélectrophorèse
Etape 1
Remplir la cuve de l’appareil d’électrophorèse avec la
solution tampon barbital-HCl jusqu’au niveau requis.
Etape 2
Creuser des puits dans l’agarose avec le peigne, en aspirant
soigneusement un échantillon de chaque puits à l’aide
d’une pipette Pasteur reliée à un système d’aspiration.
Veiller à ne pas endommager les parois des puits. Une
unité de test est constituée de deux puits de 3 mm
de diamètre séparés de 5 mm et placés le long de l’axe
d’électrophorèse. Plusieurs de ces unités peuvent être
découpées sur chaque lame : une lame de 81 x 81 mm
peut accueillir 18 paires de puits (voir la figure 1, qui peut
servir de calibre).
Figure 1
Etape 3
A l’aide d’une pipette Pasteur fine, remplir le puits
anodique de chaque paire avec une quantité suffisante
d’antisérum, sans faire déborder.
Etape 4
De la même façon, remplir le puits cathodique de chaque
paire avec l’échantillon à tester.
Etape 5
Placer rapidement la lame dans la cuve de l’appareil
d’électrophorèse et établir les connexions entre les
extrémités de la lame et les compartiments de la solution
tampon à l’aide de mèches de papier filtre doux imbibées
de solution tampon. Seuls les 10 derniers millimètres
d’agarose doivent être couverts par les mèches. Lisser
doucement de façon à chasser les bulles d’air. Remettre le
couvercle de la cuve en place.
Etape 6
Vérifier la polarité des connexions à la source de courant
(l’antisérum est dans les puits anodiques). Brancher le
courant et le stabiliser à 2,5 mA/cm de largeur de gel.
Etape 7
Au bout d’une heure, débrancher le courant et retirer la
lame de la cuve. Observer avec un éclairage sur fond noir
ou un éclairage oblique sur fond noir. La lecture est souvent
plus aisée si la lame reste immergée dans une boîte de Petri
contenant du sérum physiologique pour l’observation.
9.
RESULTATS
Agglutination sur lame
L’agglutination doit être forte et nettement visible au bout d’une
minute. Il ne doit se produire aucune agglutination visible dans
la suspension témoin ; dans un tel cas, la suspension n’est pas
appropriée pour une analyse par cette méthode.
Contre-immunoélectrophorèse
En cas de résultat positif, un précipité blanc linéaire est visible
entre chaque paire de puits, perpendiculairement à l’axe
d’électrophorèse (figure 2). En cas de réaction négative, aucun
précipité n’est visible entre les puits.
Figure 2
sur lame et une précipitation linéaire dans le test par CIEP avec
les antigènes capsulaires de H. influenzae de type a, b, c, d, e et
f respectivement.
15.
BIBLIOGRAPHIE
1
2
3
10.
CONTROLE QUALITE
Agglutination sur lame
Il est recommandé, de temps en temps, de tester les antisérums
comme décrit avec des cultures connues comme étant positives
et négatives.
Il est conseillé d’utiliser les cultures homologues comme témoins
positifs. Utiliser Neisseria lactamica en tant que culture témoin
négative. Il est possible de se procurer des souches dotées des
sérotypes appropriés dans une souchothèque reconnue telle
que NCTC ou ATCC.
11.
INTERPRETATION DES RESULTATS
Agglutination sur lame
L’agglutination des souches de type « e » est généralement plus
fine que celle des autres.
Les réactions d’agglutination sur lame de faible intensité ou qui
ont un délai d’apparition supérieur à une minute ne sont pas
significatives. Si une agglutination est observée dans la suspension
témoin, la culture n’est pas adaptée au test.
Contre-immunoélectrophorèse
Si la concentration d’antigène est faible, le précipité peut être
peu visible et l’interprétation sera alors facilitée par l’utilisation
d’une loupe. Les réactions sont suffisamment stables pour que
les résultats restent inchangés pendant plusieurs heures, mais
les lames doivent être lues immédiatement après l’arrêt de
l’électrophorèse. Si l’on souhaite conserver une trace durable,
les lames peuvent être lavées, colorées et séchées selon les
techniques classiques.
12.
LIMITES DE LA METHODE
L’absorption des sérums d’agglutination de H. influenzae a été
effectuée de façon à assurer leur spécificité pour l’espèce H.
influenzae. Toutefois des réactions croisées ont été observées
avec des organismes d’autres espèces.1,5,6 Il est important de
confirmer l’espèce de l’organisme isolé par les techniques
classiques de morphologie, de culture et de biochimie. Cette
réserve s’applique toutes les méthodes de tests sérologiques
et rappelle que la CIEP doit compléter les techniques classiques
plutôt que les remplacer.
Si la concentration d’antigène n’est pas suffisante dans
l’échantillon, le résultat obtenu sera alors négatif.
Les antisérums fournissent uniquement une identification
sérologique ; l’identification complète d’un organisme doit se faire
uniquement en association avec un test biochimique.
13.
RESULTATS ATTENDUS
Agglutination ou précipitation visible en présence de cultures et
antigènes homologues.
14.
CARACTERISTIQUES SPECIFIQUES
Les antisérums ZM20/R30166001 à ZM25/R30166501 doivent
donner une agglutination visible dans les tests d’agglutination
4
5
6
Turk, D.C. and May, J.R. (1967). Haemophilus influenzae. London, English
Universities Press.
Myhre, E.B. (1974). Typing of Haemophilus influenzae by counterimmunoelectrophoresis. Acta path. microbiol. scan. B., 82, 164.
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by counterimmunoelectrophoresis. J. Lab. Clin. Med., 60, 449.
Myhre, E.B. (1974). Rapid diagnosis of bacterial meningitis. Scand. J.
Infect. Dis., 6, 237.
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Haemophilus influenzae type b produced by immunization with
Escherichia coli strain ‘Easter’. J. Biol. Stand., 2, 25.
Argaman, M., Liu, T.Y. et al. (1974). Polyribitol-phosphate: an antigen
of four gram-positive bacteria cross-reactive with the capsular
polysaccharide of Haemophilus influenzae type b. J. Immunol., 112, 649.
16.
CONDITIONNEMENT
ZM20/R30166001............................................2 ml
ZM21/R30166101............................................2 ml
ZM22/R30166201............................................2 ml
ZM23/R30166301............................................2 ml
ZM24/R30166401............................................2 ml
ZM25/R30166501............................................2 ml
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Référence de catalogue
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conservation)
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fabriqué par
IFU X7809A, révisée Octobre 2013
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Dartford, Kent, DA2 6PT
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