remel Wellcolex* Colour Shigella Mode d'emploi

4. REACTIFS
COMPOSITION DU COFFRET
Wellcolex*
Colour Shigella
R30858401.........................50 Tests
FR
1. DOMAINE D’APPLICATION
Wellcolex* Colour Shigella est une méthode qualitative, simple
et rapide de détection et d’identification des espèces de Shigella
présentes sur des milieux de culture solides. Le test Wellcolex*
Colour Shigella a été classifié comme très complexe par le CLIA.
2. RESUME ET EXPLICATION DU TEST
Les micro-organismes du genre Shigella sont responsables de la
dysenterie bacillaire, l’une des pathologies diarrhéiques les plus
répandues dans le monde. Les symptômes, caractérisés par des
douleurs abdominales aiguës et une diarrhée sanguinolente,
sont associés à l’invasion de la muqueuse gastrique par les
micro-organismes, une pénétration systémique par la suite étant
inhabituelle. La dose infectieuse peut n’être que de 10 organismes
; elle provoque la dissémination rapide de l’infection à la suite
d’une contamination fécale de l’environnement. Dans la plupart
des cas, l’infection est relativement légère et ne nécessite qu’un
traitement d’appoint, mais certains cas sévères peuvent être
fatals si une antibiothérapie appropriée n’est pas prescrite. Il est
important d’identifier de manière précise et aussi rapidement
que possible les micro-organismes responsables de façon à
administrer une antibiothérapie adaptée, qui est indispensable
à la réduction de la prévalence des souches multi-résistantes et
au contrôle des épidémies.5
Les souches de Shigella sont classées en 4 espèces : Shigella
boydii, Shigella dysenteriae, Shigella flexneri et Shigella sonnei.
Ce groupage peut être obtenu par des tests sérologiques fondés
sur les antigènes O cellulaires qui permettent de subdiviser les
espèces en types sérologiques. Wellcolex* Colour Shigella est
une méthode sérologique simple et rapide d’identification des
espèces de la majorité des sérotypes de Shigella rencontrés en
bactériologie clinique.
3. PRINCIPE de la mÉthode
Dans le test Wellcolex* Colour Shigella, une suspension de
bactéries réagit avec 2 réactifs composés d’un mélange de
particules de latex rouges et bleues. Chaque latex coloré est
recouvert d’anticorps spécifiques des différentes espèces de
Shigella. En présence d’antigènes homologues, l’une des couleurs
du mélange va s’agglutiner et l’identité de l’antigène est indiquée
par la couleur des particules agglutinées, qui s’accompagne
d’une modification contrastée de la couleur du fond. Chaque
combinaison se distingue facilement des autres et d’un résultat
négatif pour lequel les particules restent en suspension homogène
de couleur violette et des résultats non spécifiques occasionnels
pour lesquels toutes les particules s’agglutinent en agrégats violets
sur un fond éclairci.
Wellcolex* Colour Shigella 50 tests (ZC51/R30858401)
1.Réactif Latex 1
2.Réactif Latex 2
3.Contrôle positif rouge
4.Contrôle positif bleu
1 flacon compte-gouttes (bouchon blanc)
1 flacon compte-gouttes
(bouchon blanc)
1 flacon compte-gouttes
(bouchon rouge)
1 flacon compte-gouttes
(bouchon bleu)
Contrôle positif rouge
Suspension bactérienne de germes
tués représentatifs de Shigella sonnei
et Shigella dysenteriae, contenant
0,05% de Bronidox ® et 0,5% de
formaldéhyde comme conservateurs.
Contrôle positif bleu
Suspension bactérienne de germes
tués représentatifs de Shigella
flexneri et Shigella boydii, contenant
0,05% de Bronidox ® et 0,5% de
formaldéhyde comme conservateurs.
5.Bâtonnets d’échantillonnage jetables
2 paquets
6.Cartes de réaction jetables
1 paquet
7.Distributeurs d’échantillons jetables
2 paquets
6. PRECAUTIONS ET RESTRICTIONS D’EMPLOI
8.Tubes de suspension jetables
1 paquet
Destiné exclusivement au diagnostic in vitro.
Réservé exclusivement à un usage professionnel.
9.
Notice d’utilisation1
10.Guide de lecture
1
5. DESCRIPTION DES REACTIFS, PREPARATION POUR
UTILISATION ET CONDITIONS DE CONSERVATION
RECOMMANDEES
Voir également la section Précautions et restrictions d’emploi
Une fois ouvert, cartes de réaction doit être conservé à
température ambiante (18 à 30 ° C).
Réactif Latex 1
1 flacon compte-gouttes contenant
une suspension violette de particules
de latex polystyrène dans du tampon
contenant 0,05% de Bronidox ®
comme conservateur. Les particules
de latex sont recouvertes d’un
anticorps de lapin présentant les
spécificités suivantes :
Latex rouge Shigella sonnei (formes l & ll)
Latex bleu
Shigella flexneri (types 1 à 6, X & Y)
Réactif Latex 2
1 flacon compte-gouttes contenant
une suspension violette de particules
de latex polystyrène dans du tampon
contenant 0,05% de Bronidox ®
comme conservateur. Les particules
de latex sont recouvertes d’un
anticorps de lapin présentant les
spécificités suivantes :
Latex rouge Shigella dysenteriae (types 1 à 12)
Latex bleu
Shigella boydii (types 1 à 15)
6.2.1
e pas utiliser les réactifs au-delà de la date de
N
péremption indiquée.
6.2.2
ne contamination microbiologique des réactifs doit
U
être évitée car elle peut réduire la durée d’utilisation
du produit et provoquer des résultats erronés.
6.2.3
mener tous les réactifs et les échantillons à
A
température ambiante (18 à 30°C) avant l’emploi.
Replacer les réactifs à la température de conservation
recommandée immédiatement après emploi. Les
réactifs latex montrant des signes d’agrégation lors de
leur première utilisation peuvent avoir été congelés et
ne doivent pas être utilisés.
6.2.4
onserver les réactifs latex entre 2 et 8°C, en position
C
verticale. Après une conservation prolongée, quelques
agrégats ou un assèchement du haut du flacon peuvent
se produire. Dans ce cas, les agiter vigoureusement
pendant quelques secondes jusqu’à ce que la
resuspension soit complète.
6.2.5
L es personnes atteintes de troubles de la vision
des couleurs devraient être capables de voir les
agglutinations mais pourraient avoir des difficultés
à différencier les réactions colorées ; dans ce cas, la
lecture devra être confiée à une personne ayant une
vision normale des couleurs.
6.2.6
Il est important de tenir les flacons compte-gouttes
verticalement et que la goutte se forme à l’extrémité de
l’embout. Si l’embout du compte-gouttes est mouillé,
un volume incorrect se forme autour de l’extrémité et
non pas à la pointe ; si cela se produit, sécher l’embout
avant de continuer.
6.2.7
L ’utilisation d’un agitateur rotatif monté sur un plateau
est indispensable. Pour obtenir des performances
optimales, s’assurer que l’agitateur rotatif est à
l’horizontale et que sa vitesse a été calibrée sur 150 ± 5
tr/mn.
6.2.8
e pas toucher les surfaces de réaction des cartes. Il est
N
important de s’assurer que les cartes de réaction sont
parfaitement à plat sur le plateau de l’agitateur, sinon
les agglutinations seront difficiles à voir.
6.2.9
S ’assurer que les contrôles positifs sont remis
en suspension en les agitant ou en les passant
vigoureusement au Vortex pendant 10 secondes. NE
PAS passer au Vortex les réactifs latex.
Ne touchez pas les zones de réaction sur les cartes.
Pour des informations sur les composants potentiellement
dangereux, se référer aux fiches de sécurité fournies par le
fabricant et aux étiquettes du produit.
6.1. informations DE SECURITE
6.1.1
Sauf indication contraire, tous les éléments doivent être conservés
entre 2 et 8°C pour conserver leurs propriétés actives jusqu’à la
date de péremption indiquée sur le coffret.
6.2. PRECAUTIONS D’ANALYSE
6.1.2
onformément aux bonnes pratiques de laboratoire,
C
il est fortement recommandé de manipuler tous
les échantillons cliniques et les réactifs comme s’ils
étaient potentiellement infectieux et de les utiliser
avec toutes les précautions nécessaires. Idéalement, la
procédure doit être réalisée sous une hotte de sécurité
microbiologique adaptée.1
L’équipement non jetable doit être stérilisé en
utilisant une procédure appropriée après l’emploi,
bien que la méthode la plus recommandée soit la
stérilisation par autoclave pendant 15 minutes à 121°C
; le matériel à usage unique doit être stérilisé par
autoclave ou incinéré. Les éclaboussures de matériaux
potentiellement infectieux doivent être essuyées
immédiatement à l’aide d’un papier absorbant et les
surfaces de travail contaminées doivent être nettoyées
avec un désinfectant efficace. Le matériel utilisé pour
le nettoyage des éclaboussures, y compris les gants,
doit être éliminé comme s’il s’agissait de déchets
potentiellement dangereux. Ne pas autoclaver le
matériel contenant de l’hypochlorite de sodium.
6.1.3
e pas effectuer de pipetages à la bouche. Pour
N
manipuler les échantillons et effectuer le test, porter
des gants à usage unique, une blouse et des lunettes
de protection. Une fois le test terminé, se laver
soigneusement les mains.
6.1.4
S i l’un des réactifs entre en contact avec la peau ou
les yeux, laver immédiatement la zone concernée avec
beaucoup d’eau.
6.1.5
Ne pas avaler les réactifs.
7. PRELEVEMENT DES ECHANTILLONS ET PREPARATION
DES CULTURES
Pour de plus amples informations sur le prélèvement des
échantillons et la préparation des cultures, se référer à un manuel
classique de bactériologie.2,3,4 Le test peut être pratiqué sur des
colonies ne fermentant pas le lactose poussant en culture primaire
sur des milieux sélectifs (par exemple gélose MacConkey, gélose
entérique Hektoen ou gélose xylose lysine désoxycholate), en
sous-culture sur ces milieux dans un bouillon d’enrichissement ou
en culture pure (par exemple gélose nutritive à plat ou inclinée).
S’il est nécessaire de confirmer les résultats du test, la suspension
bactérienne utilisée pour le test coloré peut être remise en
culture pour identification ultérieure ; la même suspension peut
également être utilisée pour l’analyse avec le test Wellcolex*
Colour Salmonella (ZC50/R30858301).
8. Procedure
MATERIEL FOURNI
Le test Wellcolex* Colour Shigella ZC51/R30858401 contient
suffisamment de réactifs pour la réalisation de 50 tests. Voir la
section Contenu du coffret.
MATERIEL NECESSAIRE MAIS NON FOURNI
1.
Sérum physiologique stérile à 0,85%.
2.
Le test doit être réalisé à l’aide l’un agitateur rotatif plan
dont le diamètre orbital est égal à 38 mm (1,5 in)/32 mm
(1,25 in) et la vitesse de fonctionnement à environ 150 tr/
mn. La vitesse et le diamètre de rotation sont essentiels
à la bonne réalisation du test.
Aucun autre matériel ou équipement n’est nécessaire.
PROCEDURE DU TEST
ATTENTION : Prendre toutes les précautions requises pour la
manipulation de cultures vivantes au cours du test.
Identification des colonies
Etape 1Distribuer environ 200 µl de sérum physiologique dans un
tube à suspension. Il est possible d’utiliser le distributeur
d’échantillon jetable qui est gradué à environ 200 µl.
Etape 2Après une nuit de culture, prélever de la plaque de
culture, 1 ou 2 colonies de taille moyenne (1 à 2 mm)
présumées de Shigella avec l’extrémité plate du bâtonnet
d’échantillonnage, et les mettre en suspension avec
précaution dans le sérum physiologique. Si les colonies sont
petites, en prélever davantage ; recouvrir l’extrémité du
bâtonnet d’échantillonnage. Jeter le bâtonnet selon les règles
de sécurité appropriées.
Etape 3Remettre en suspension les réactifs latex 1 et 2 en les agitant
vigoureusement pendant quelques secondes. Le flacon tenu
verticalement, distribuer une goutte de chacun des réactifs
latex dans un cercle différent de la carte de réaction posée à
plat. Eliminer les bulles d’air avec l’extrémité du bâtonnet.
Etape 4A l’aide d’un distributeur d’échantillon jetable tenu
verticalement, laisser tomber d’elle-même une goutte (40 µl)
de suspension bactérienne dans chacun des 2 cercles. Eviter la
formation de bulles d’air. Jeter le distributeur selon les règles
de sécurité appropriées.
Etape 5A l’aide d’un bâtonnet d’échantillonnage, mélanger le contenu
de chaque cercle en l’étalant sur toute la surface du cercle. Le
même bâtonnet peut être utilisé pour les 2 cercles ; le jeter
ensuite selon les règles de sécurité appropriées.
Etape 6Placer la carte sur un agitateur rotatif sur plateau et agiter
pendant 2 minutes à 150 ± 5 tr/mn (voir le paragraphe
« Précautions d’analyse »). Eteindre l’appareil et observer
l’apparition éventuelle d’une agglutination sans retirer la
carte de l’agitateur. La carte doit être observée directement
du dessus, à une distance normale de lecture (25 à 35 cm).
Ne pas utiliser de loupe. Les images obtenues sont franches
et peuvent être reconnues facilement dans des conditions
normales d’éclairage. S’il y a des doutes sur la présence
d’agglutination, le test doit être répété en utilisant une
goutte de sérum physiologique de 40 µl. Il ne doit pas y avoir
d’agglutination visible. Cette image doit être utilisée comme
base pour la comparaison.
Etape 7Jeter les cercles de réaction utilisés selon les règles de sécurité
appropriées. Vérifier que les réactifs latex ont bien été remis
au réfrigérateur.
9. RESULTATS
LECTURE DES RESULTATS
Se référer au guide de lecture Wellcolex* Colour Shigella.
Positif
Un changement de couleur du produit dû à l’agglutination de l’une
des suspensions colorées de latex dans le mélange se produit au
cours de la réaction, induisant un changement de contraste dans
la couleur du fond (figures 1 et 2). Généralement, l’agglutination
est d’une seule couleur pour un réactif latex mais, avec une culture
mixte de Shigella, on peut néanmoins observer l’agglutination de 2
couleurs pour un réactif latex (dans ce cas, il faut entreprendre des
procédures d’isolement complémentaires) ou d’une seule couleur
pour les 2 réactifs. Ces divers cas de figure se distinguent sans
difficulté. En cas de réactions différentes de celles présentées
aux figures 1 et 2, vérifier et ajuster si nécessaire la vitesse de
l’agitateur.
Négatif
Aucun réactif latex ne s’agglutine et l’aspect violet homogène
demeure pratiquement inchangé tout au long du test (figure 3).
Noter cependant que de faibles traces de granularité peuvent
être détectées dans les images négatives, selon l’acuité visuelle
de l’opérateur.
Non spécifique
Toutes les particules s’agglutinent, donnant des amas violets sur
un fond éclairci (figure 4). Il est possible que quelques amas violets
apparaissent lors d’une réaction positive ou négative. Si ceci se
produit avec un net changement de couleur au cours du test ou
si le fond reste violet uniformément, il ne faut pas tenir compte
de ces agrégats violets.
10. CONTROLE QUALITE
Inspection visuelle
Toujours vérifier que les réactifs latex ne produisent pas
d’aggrégation lorsqu’ils sont distribués sur les cercles de réaction.
En cas d’agglutination avant l’ajout de l’échantillon de culture ou
de la suspension bactérienne, ne pas utiliser le réactif.
Procédures pour les contrôles
Les tests de contrôle qualité doivent être réalisés sur chaque kit
à la réception du numéro de lot de kit. Chaque laboratoire doit
appliquer les réglementations nationales et locales.
Procédure pour les contrôles positifs
Les contrôles positifs fournis permettent de valider la performance
des réactifs latex.
Etape 1Distribuer deux gouttes de réactif latex 1 et deux gouttes
de réactif latex 2 sur quatre cercles de réaction différents (1
goutte par cercle).
Etape 2 Ajouter une goutte de contrôle positif dans deux des cercles
de réaction (l’un contenant le réactif latex 1 et l’autre le réactif
latex 2).
Etape 3 Mélanger les réactifs à l’aide d’un bâtonnet d’échantillonnage
jetable différent pour chaque contrôle positif.
Etape 4Placer la carte sur un agitateur mécanique et agiter pendant
deux minutes à 150 ± 5 tr/mn. Ceci fait, l’agglutination doit
être visible sur les quatre cercles de réaction.
Etape 5Mettre les cartes de réaction au rebut selon la méthode
appropriée.
La couleur du latex agglutiné avec le réactif 1 et avec le réactif
2 doit correspondre à celle du contrôle positif (bleu ou rouge).
Des cultures d’espèces connues de Shigella en stock peuvent se
substituer au contrôle positif.
Procédure pour les contrôles négatifs
Recommencer la procédure de test en utilisant du sérum
physiologique à la place d’un échantillon de test. Aucune
agglutination significative ne doit être observée.
11. Interpretation des resultats
Un résultat positif (agglutination colorée) indique la présence
de Shigella et identifie les différentes espèces présentes dans
l’échantillon comme décrit dans le tableau suivant :
Couleur
Réactif
de
l’agglutination
du fond
1
2
Rouge
Bleu
Shigella
sonnei.
Shigella
dysenteriae
Bleu
Rose
Shigella
flexneri
Shigella
boydii
Aucune
Violet
Négatif
Violet
Clair
Non interprétable
(procédures d’isolement
complémentaires
nécessaires)
Les réactifs permettent de détecter Shigella sonnei (formes l et
ll), Shigella flexneri (sérotypes 1 à 6 et variants X et Y), Shigella
dysenteriae (sérotypes 1 à 12) et Shigella boydii (sérotypes 1 à 15).
Un résultat négatif indique que les germes testés ne font pas partie
des sérotypes de Shigella couverts par les réactifs. Si nécessaire,
ils peuvent être identifiés par des méthodes conventionnelles.3,4
Des croissances mixtes de germes ne fermentant pas le lactose
étant souvent présentes dans les coprocultures, il peut s’avérer
nécessaire, en cas de résultat négatif, de répéter le test sur une
autre sélection de colonies négatives pour le lactose avant de
considérer la culture comme négative.
En cas de réaction non spécifique, le résultat n’est pas
interprétable; il faut employer des méthodes d’identification
conventionnelles.3,4
12. LIMITES DE LA METHODE
12.1.Wellcolex* Colour Shigella identifie les isolats de Shigella
jusqu’au niveau de l’espèce. Si l’on désire procéder à
l’identification sérologique complète des types au sein des
espèces, il faut utiliser des méthodes conventionnelles ; la
sélection des antisérums appropriés peut être facilitée par
les résultats du test Wellcolex*.
12.2.Le genre Shigella est très proche d’autres membres de
la famille des entérobactéries et beaucoup d’antigènes
somatiques sont partagés avec des organismes provenant
d’autres espèces, en particulier Escherichia coli, mais aussi
Hafnia alvei, Plesiomonas shigelloides et d’autres espèces.
Ceux-ci représentent des antigènes communs et non pas
des réactions croisées ; on peut les différencier sur la base
de tests biochimiques. Beaucoup de ces espèces, mais pas
toutes, fermentent le lactose.
12.3.
Certaines souches de Shigella portent des antigènes
d’enveloppe inhibant l’agglutination « O » des suspensions.
Ceci ne s’est pas produit lors des essais des réactifs mais
l’enveloppe peut être inactivée, si nécessaire, en chauffant
la suspension à 100°C pendant 2 heures.2 Si un isolat bien
caractérisé sur le plan biochimique ne réagit toujours pas
avec les réactifs, il doit être envoyé à un laboratoire de
référence pour des études complémentaires.
12.4.La qualité de l’image d’agglutination obtenue dépend de la
vitesse et du diamètre orbital de l’agitateur rotatif ainsi que
de l’utilisation d’une carte de réaction bien plane.
13. RESULTATS ATTENDUS
Les souches appartenant aux sérotypes communs à S. sonnei,
S. flexneri, S. dysenteriae et S. boydii produisent une agglutination
rouge ou bleue avec le composant correspondant du réactif
latex 1 ou 2.
14. CARACTERISTIQUES SPECIFIQUES
Evaluation externe
Une étude effectuée dans plusieurs centres, faisant intervenir un
laboratoire de santé publique au Royaume-Uni, trois laboratoires
hospitaliers aux Etats-Unis, deux dans la péninsule Arabique
et trois en Asie du Sud-Est, a été réalisée pour évaluer le test
Wellcolex* Colour Shigella sur des cultures de routine pour
Shigella.
A partir de chaque échantillon fécal, chacun des laboratoires a
effectué des tests sur 1 ou plusieurs des échantillons suivants :
1.
Colonies négatives pour le lactose directement à partir
des géloses primaires sélectives (MacConkey, XLD, DCA,
SS et Hektoen).
2.
Colonies négatives pour le lactose directement à partir
des sous-cultures de bouillon d’enrichissement sur géloses
sélectives.
3.
Sous-cultures pures de colonies négatives pour le lactose
sur gélose nutritive.
L’agitateur rotatif a été utilisé pour l’intégralité du test. Les
résultats sont présentés dans le tableau 1.
La performance du test Wellcolex* Colour Shigella a été
déterminée par comparaison avec les résultats obtenus par des
analyses bactériologiques classiques des échantillons.
Dans cette étude, la sensibilité du test Wellcolex* Colour
Shigella était de 98,9% (88/89) à partir de cultures primaires sur
gélose, de 100% (58/58) à partir de sous-cultures de bouillon
d’enrichissement et de 100% (299/299) à partir de cultures pures
(voir le tableau 1).
La spécificité du test Wellcolex* Colour Shigella dans cette
étude était de 99,4% (521/524) à partir de cultures primaires sur
gélose, de 100% (320/320) à partir de sous-cultures de bouillon
d’enrichissement et de 95,2% (60/63) à partir de cultures pures.
La valeur prédictive d’un résultat positif à partir de cultures sur
gélose était de 98,7% (445/451) et celle d’un résultat négatif de
99,9% (901/902).
L’incidence de Shigella dans les échantillons étudiés était de
33,0% (446/1353).
La fréquence des réactions non spécifiques avec le test Wellcolex*
Colour Shigella était de 3,0% (19/632) pour les cultures primaires
sur gélose, de 2,1% (8/385) pour les sous-cultures de bouillon
d’enrichissement et de 1,8% (7/385) pour les cultures pures. Ces
échantillons ont été exclus du tableau 1.
Les autres germes testés avec Wellcolex* Colour Shigella et
trouvés négatifs comprenaient : Escherichia coli, Proteus spp.,
Salmonella spp., Campylobacter jejuni, Enterobacter spp. et
Citrobacter freundii.
De plus, 208 cultures de référence de Shigella, incluant jusqu’à 5
souches de chacun des sérotypes de chaque espèce de Shigella,
ont été testées lors d’une étude indépendante.6 Wellcolex*
Colour Shigella a correctement identifié 195 cultures et a donné
le résultat négatif attendu avec 13 isolats de Shigella boydii des
sérotypes 16 à 18.
REMARQUE : Pour plus de détails sur les méthodes de tests
sérologiques et biochimiques d’identification de Shigella, se
référer au manuel de EWING, W.H. (1986). Edwards and Ewing’s
Identification of Enterobacteriaceae, 4th Ed. Elsevier Science
Publishing Co., Inc., New York.
Tableau 1
5
6
WHO Scientific Working Group. (1980). Bulletin of the World Health
Organisation, 58, 519-537.
Données sur fichier.
CONDITIONNEMENT
ZC51/R30858401.................................50 tests
Légende des symboles
Référence de catalogue
Dispositif médical de diagnostic in vitro
Consulter le mode d’emploi
Limite de température (température de
conservation)
Code de lot (numéro de lot)
Identification de Shigella à partir de cultures sur gélose
Wellcolex*
Colour Shigella
Résultat
Culture
primaire
Sous-culture
de bouillon
Sous-culture
pure
A utiliser avant (date d’expiration)
Examen de
routine
Fabricant
Positifa
Négatif
Total
Positif
88
3
91
Négatif
1d
521
522
Positif
58
0
58
Négatif
0
320
320
Positif
299
3b,f
302
Négatif
0
60
60
Total
446
907g
1353
b,c
e
33 Shigella boydii, 15 Shigella dysenteriae, 247 Shigella
flexneri et 151 Shigella sonnei.
2 Plesiomonas shigelloides (1 réaction Shigella boydii et 1
réaction Shigella sonnei).
c
Hafnia alvei (réaction Shigella boydii).
d
Shigella sonnei.
e
comprend 7 cultures pour lesquelles les Shigella ont
été isolées à partir de la culture primaire sur gélose
uniquement.
f
Escherichia coli (réaction Shigella dysenteriae).
g
comprend Escherichia coli, Proteus spp., Salmonella spp.,
Campylobacter jejuni, Enterobacter spp. et Citrobacter
freundii
a
b
BIBLIOGRAPHIE
1
2
3
4
Advisory Committee on Dangerous Pathogens. (1984).
Categorisation of Pathogens According to Hazard and Categories
of Containment, H.M.S.O., London.
Ewing, W.H. (1986). Edwards and Ewing’s Identification of
Enterobacteriaceae, 4th Ed., Elsevier Science Publishing Co., Inc,
New York. Pages 166-167.
Isenberg, H.D., Washington, J.A., et al (1985). Manual of Clinical
Microbiology, 4th Ed., Edited by Lennette, E.H., Balows, A., Hausler,
W.J. and Shadomy, H.J. American Society for Microbiology,
Washington D.C. Pages 73-98.
Kelly, M.T., Brenner, D.J., et al (1985). Manual of Clinical
Microbiology, 4th Ed., Edited by Lennette, E.H., Balows, A.,
Hausler, W.J. and Shadomy, H.J. American Society for Microbiology,
Washington D.C. Pages 263-277.
Bronidox® est une marque déposée de Cognis UK Ltd.
*Marque de commerce
IFU X7798, Révisé août 2012
Remel Europe Ltd.
Clipper Boulevard West,
Crossways Dartford, Kent,
DA2 6PT Royaume-Uni
Pour tout support technique, contacter le distributeur local.
">